吴茱萸碱对人肺癌NCI-H1299细胞抗肿瘤作用及其机制
2024-05-07雷天翔刘震超徐慧军刘光刘丽平葛科立
雷天翔 刘震超 徐慧军 刘光 刘丽平 葛科立
[收稿日期]2022-03-17; [修訂日期]2023-10-07
[基金项目]山东省重点研发计划项目(2017GSF218084)
[第一作者]雷天翔(1986-),男,硕士研究生。
[通信作者]葛科立(1984-),男,博士,讲师。E-mail:472-733278@qq.com。
[摘要] 目的
探讨吴茱萸碱(EVO)在人肺癌NCI-H1299细胞中的抗肿瘤作用及其可能机制。
方法 应用CCK-8法检测EVO(1.0、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5、15.0 μmol/L)处理24、48、72 h对NCI-H1299细胞活力的影响,采用PI单染流式法和Annexin V-FITC+PI双染流式法分别检测EVO对NCI-H1299细胞周期和细胞凋亡的影响,Western blot法检测相关蛋白表达。
结果 与二甲基亚砜(DMSO)对照组相比,EVO能显著抑制NCI-H1299细胞的增殖活性,细胞增殖活力随着EVO浓度增加呈下降趋势,不同给药浓度组间比较差异有显著性(F=5 091.83,P<0.01),不同时间点间比较差异有显著性(F=1 241.80,P<0.01),且细胞增殖活力变化呈浓度和时间依赖性。12.5 μmol/L EVO处理细胞24 h后,与DMSO对照组相比,NCI-H1299被阻滞于G2/M期,NCI-H1299细胞凋亡率显著上升(t=35.52,P<0.001),细胞周期相关蛋白Cdc2磷酸化水平及P53、CyclinB1、Cdc25C(间期)蛋白水平明显上升(F=13.55~69.14,P<0.05),细胞凋亡相关蛋白胱天蛋白酶-3(caspase-3)、胱天蛋白酶-9(caspase-9)和多聚腺苷二磷酸核糖聚合酶1(PARP1)表达增高(F=21.62~196.54,P<0.05),B细胞淋巴瘤因子-2(Bcl-2)/Bcl-2相关X蛋白(Bax)比值明显降低(F=3.86,P<0.05),受体相互作用蛋白1(RIP1)、受体相互作用蛋白3(RIP3)和混合系激酶区域样蛋白(MLKL)磷酸化水平明显上升,差异均有统计学意义(F=71.69~118.33,P<0.05)。
结论
EVO可在NCI-H1299细胞中诱导细胞增殖抑制、G2/M细胞周期阻滞、内源性凋亡和程序性坏死,从而发挥抗肿瘤作用。
[关键词] 吴茱萸碱;肺肿瘤;细胞增殖;细胞周期;细胞凋亡;坏死性凋亡
[中图分类号] R284;R734.2
[文献标志码] A
[文章编号] 2096-5532(2024)01-0057-06
doi:10.11712/jms.2096-5532.2024.60.002
[开放科学(资源服务)标识码(OSID)]
[网络出版] https://link.cnki.net/urlid/37.1517.R.20240227.0938.001;2024-02-28 14:43:38
Antitumor effect of evodiamine on human lung cancer NCI-H1299 cells and its mechanism
\ LEI Tianxiang, LIU Zhenchao, XU Huijun, LIU Guang, LIU Liping, GE Keli
\ (Institute of Integrative Medicine, Qingdao University Medical College, Qingdao 266023, China)
\; [Abstract]\ Objective\ To investigate the antitumor effect of evodiamine (EVO) on human lung cancer NCI-H1299 cells and its possible mechanism.
\ Methods\ CCK-8 assay was used to observe the effect of EVO (1.0, 2.5, 5.0, 7.5, 10.0, 12.5, and 15.0 μmol/L) on the viability of NCI-H1299 cells after 24, 48, and 72 h of treatment; PI staining and Annexin V-FITC+PI double staining were used to observe the effect of EVO on the cell cycle and apoptosis of NCI-H1299 cells; Western blot was used to mea-
sure the expression of proteins.
\ Results\ Compared with the dimethyl sulfoxide (DMSO) control group, EVO significantly inhi-
bited the proliferative activity of NCI-H1299 cells, and cell proliferative activity tended to decrease with the increase in EVO concentration; there was a significant difference between different concentration groups (F=5 091.83,P<0.01) and between different time points (F=1 241.80,P<0.01), and cell proliferative activity changed in a concentration- and time-dependent manner. After the cells were treated with 12.5 μmol/L EVO for 24 h, NCI-H1299 cells were arrested in G2/M phase compared with the DMSO control group, and there were significant increases in the apoptosis rate of NCI-H1299 cells (t=35.52,P<0.001), the phosphory-
lation level of the cell cycle-related protein Cdc2, and the levels of P53, CyclinB1, and Cdc25C (mitotic phase) proteins (F=13.55-69.14,P<0.05). There were also significant increases in the expression levels of the cell apoptosis-related proteins caspase-3, caspase-9, and PARP1 (F=21.62-196.54,P<0.05), a significant reduction in B-cell lymphoma factor-2/Bcl-2-associated X-protein ratio (F=3.86,P<0.05), and significant increases in the phosphorylation level of receptor-interacting protein 1, receptor-interacting protein 3, and mixed-lineage kinase domain-like protein (F=71.69-118.33,P<0.05).
\ Conclusion\ EVO can induce the inhibition of cell proliferation, G2/M cell cycle arrest, endogenous apoptosis, and programmed death of NCI-H1299 cells, thereby exerting an antitumor effect.
[Key words]\ evodiamine; lung neoplasms; cell proliferation; cell cycle; apoptosis; necroptosis
非小细胞肺癌(NSCLC)是一种致死率很高的恶性肿瘤[1],在肺癌的组织学类型中占比最高(约85%)[2]。近年来的临床研究显示,NSCLC发病率和病死率均呈上升趋势,其治疗主要以手术治疗、放化疗为主,但仍存在高复发、转移和耐药等问题预示了病人预后极差。迄今为止,肺癌发生发展的分子机制尚未完全明确。因此,更好地了解有关肺癌发生发展机制将有助于指导临床治疗[3]。中草药具有增效减毒、稳定瘤体、抑制复发和转移的作用。从中药中提取的活性抗肿瘤成分具有多靶点治疗的优势,逐步引起人们的重视[4]。吴茱萸碱(EVO)是从吴茱萸果实中提取的一种有效成分,具有抗肿瘤作用[5-6]。本研究旨在探讨EVO在人肺癌细胞NCI-H1299中的抗肿瘤作用及其可能的作用机制。
1 材料和方法
1.1 实验材料
1.1.1 细胞系 人肺腺癌细胞NCI-H1299购置于国家细胞资源中心。将NCI-H1299细胞放置于37 ℃、体积分数0.05 CO2培养箱内,用含体积分数0.10胎牛血清的DMEM/High Glucose培养液培养,取对数生长期细胞进行实验。
1.1.2 抗体与试剂 EVO购自Selleck,用二甲基亚砜(DMSO)配制成浓度为40 μmol/L的储存液,-80 ℃储存。DMEM/High Glucose培养液(HyClone);胎牛血清;磷酸盐缓冲液(PBS,HyClone);2.5 g/L胰蛋白酶(Gbico);DMSO、Cell Counting kit(CCK-8)试剂盒、碘化丙啶(PI)试剂盒、Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测试剂盒、细胞周期检测试剂盒(上海翊圣公司)。兔抗鼠一抗Cdc2、磷酸化Cdc2(p-Cdc2)、Cdc25C、CyclinB1、胱天蛋白酶-3(caspase-3)、胱天蛋白酶-9(caspase-9)、多聚腺苷二磷酸核糖聚合酶1(PARP1)、受体相互作用蛋白1(RIP1)、受体相互作用蛋白3(RIP3)、p-RIP1、p-RIP3、P53、β-actin(CST);山羊抗兔二抗、山羊抗小鼠二抗(Affinity)。
1.2 實验方法
1.2.1 CCK-8法检测NCI-H1299细胞增殖 取对数生长期的NCI-H1299细胞,用2.5 g/L胰酶消化,制成单细胞悬液,以每孔2×103个接种于96孔板。DMSO对照组加入含1.0 g/L DMSO的培养液,实验组EVO的终浓度分别为1.0、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5和15.0 μmol/L,每组3个复孔。分别培养24、48、72 h后,每孔以换液形式加入含有100 g/L CCK-8试剂的培养液,37 ℃孵育1 h,用酶标仪检测450 nm波长下的吸光度(A450)。
1.2.2 PI单染流式细胞术法检测EVO对NCI-H1299细胞周期的影响 取对数生长期的NCI-H1299细胞,用2.5 g/L胰酶消化,制成单细胞悬液,以每孔1×106个接种于10 cm培养皿。第2天,DMSO对照组加入含1.0 g/L DMSO的培养液,实验组EVO的终浓度为12.5 μmol/L,每组3个复孔,培养24 h。处理结束后细胞经胰酶消化,离心、弃上清,加入体积分数0.70的预冷乙醇于4 ℃下保存过夜。以PBS洗涤2次,离心,加入RNase(10 mg/L),室温孵育15 min,加入10 mg/L PI,室温避光孵育30 min,上机检测。
1.2.3 Annexin V+PI双染方法检测EVO对NCI-H1299细胞凋亡的影响 取对数生长期的NCI-H1299细胞,细胞处理同1.2.2。处理结束后细胞经胰酶消化,离心、弃上清,以PBS洗涤2次,离心,加入含5 μL Annexin V和10 μL PI的Annexin V Binding Buffer,室温避光孵育15 min,上机检测。
1.2.4 Western blot检测蛋白表达 取对数生长期的NCI-H1299细胞,细胞处理同1.2.2。用RIPA裂解液提取样品蛋白,BCA蛋白定量后取20 mg蛋白用100~150 g/L SDS-PAGE凝胶电泳分离,湿转膜。将PVDF膜浸入50 g/L BSA封闭液中,室温摇床孵育1 h。加入一抗(以含50 g/L BSA的TBST稀释,稀释比例均为1∶1 000),室温摇床孵育2 h,用TBST洗膜3次,每次10 min。加入二抗(以含50 g/L脱脂奶粉的TBST稀释,稀释比例均为1∶5 000),室温摇床孵育2 h,用TBST洗膜3次,每次10 min。显影。
1.3 统计学方法
采用Flowjo10.4软件分析PI单染流式细胞术与Annexin V+PI双染流式细胞术检测结果,绘制统计图表;采用SPSS 26.0软件进行数据统计分析。正态性分析采用Shapiro-Wilktest检验。计量资料数据采用±s形式表示,组间比较采用student t检验或单因素方差分析;重复测量数据组间比较采用重复设计多水平方差分析,事后检验采用Bonferroni校正法。由于相关线性假设无法成立,故采用stata16.0软件运用局部加权回归散点平滑法(LOWESS)观察二维变量之间的关系,分析3个时间点(处理24、48、72 h)NCI-H1299存活细胞数和给药浓度之间的变化趋势,并进一步采用Bootstrap法验证趋势的稳定性,采用局部多项式回归方法(LOESS方法)对两维散点图进行平滑分析,比较Bcl-2/Bax比值与Bcl-2和Bax的变化趋势。P<0.05为差异有显著性。
2 结 果
2.1 EVO对人肺癌NCI-H1299细胞的增殖抑制作用
CCK-8检测结果显示,与DMSO对照组相比,1.0、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5、15.0 μmol/L EVO作用于NCI-H1299細胞24、48、72 h后,能明显抑制细胞增殖,细胞增殖活力随着EVO浓度增加呈下降趋势,不同给药浓度组间比较差异有显著性(F=5 091.83,P<0.01),不同时间点比较差异有统计学意义(F=1 241.80,P<0.01),给药浓度与时间存在交互作用(F=673.46,P<0.01),且细胞增殖活力变化呈浓度和时间剂量依赖性。见图1。局部加权散点回归分析显示,3个时间点(24、48、72 h)NCI-H1299存活细胞数和给药浓度之间的变化趋势基本吻合,每个时间点的细胞存活数均随着给药浓度的增加而下降。见图2。
2.2 EVO对人肺癌NCI-H1299细胞周期的影响
PI单染流式细胞术检测结果显示,12.5 μmol/L EVO作用于NCI-H1299细胞24 h后,与DMSO对照组相比,EVO组G2/M期细胞比例显著上升(t=54.74,P<0.001)。见图3。另外,与DMSO对照组相比,EVO可以诱导p-Cdc2水平及P53、CyclinB1、Cdc25C(间期)蛋白表达上升(F=13.55~69.14,P<0.05),Cdc25C(60 000)表达下降(F=34.20,P<0.05)。见图4。
2.3 EVO对人肺癌NCI-H1299细胞凋亡的影响
Annexin V/APC+PI双染流式细胞术检测结果显示,12.5 μmol/L EVO处理24 h后,与DMSO对照组相比较,EVO组细胞凋亡率明显上升(t=35.52,P<0.001)。见图5。与DMSO对照组相比,EVO可以诱导caspase-3、caspase-9(37 000)、Bax、PARP1以及caspase-9(35 000)表达(F=21.62~196.54,P<0.05)。见图6。EVO可以诱导Bcl-2/Bax比值明显下降(F=3.86,P<0.05)。见图7。
2.4 EVO对人肺癌NCI-H1299细胞程序性坏死的影响
与DMSO对照组相比较,EVO组RIP、RIP3和MLKL磷酸化水平均显著上升,差异有统计学意义(F=71.69~118.33,P<0.05),即EVO可诱导其活化。见图8。
3 讨 论
EVO是芸香科植物吴茱萸的主要成分之一,属于吲哚喹唑啉类生物碱,具有较好的抗肿瘤作用[7]。本研究结果显示,EVO能显著抑制NCI-H1299细胞增殖,不同给药浓度组之间存在显著差异,且给药
浓度与时间存在交互作用,且细胞增殖活力变化呈浓度和时间剂量依赖性。提示EVO可能对NCI-H1299细胞增殖有抑制作用。研究显示,EVO作用于人乳癌MDA-MB-231细胞或人胃癌SGC-7901细胞后,可诱导细胞G1期阻滞和G2/M期细胞比例升高[8-9]。本文实验结果显示,EVO作用于NCI-H1299细胞后,G2/M期细胞比例明显上升。
抑癌基因p53位于人染色体17p13.1上,编码一种393个氨基酸的内磷酸化蛋白质,称为P53蛋白[10]。Cdc2基因只有与Cyclin结合并经磷酸化/脱磷酸化修饰后才能发挥其活性[11]。CyclinB持续升高可使细胞停滞于分裂期,当细胞发生G2/M期阻滞时,CyclinB不但没有快速降解,反而发生蓄积现象[12]。G2/M期的停滞是由于Cdc家族蛋白和细胞周期蛋白复合体(如Cdc2/CyclinB复合体)的顺序激活和失活所致,该复合体与有丝分裂的进入有关,从而调节G2/M期的转变。Cdc2的Tyr15磷酸化抑制了Cdc2/CyclinB1激酶复合体的活性。Cdc2中Tyr15的去磷酸化是由Cdc25C磷酸酶催化的,该反应被认为是进入有丝分裂的限速步骤[13]。本研究结果显示,EVO处理NCI-H1299细胞后,细胞周期相关蛋白Cdc2磷酸化水平及P53、CyclinB1、Cdc25C(间期)蛋白水平明显上升,提示EVO可使NCI-H1299细胞停滞于G2/M期。
細胞凋亡是一种程序性细胞死亡,细胞凋亡的失控是肿瘤细胞生长和增殖的重要机制之一[6]。抗肿瘤药物可通过内源性线粒体或内质网通路,使细胞内的caspase-9、caspase-7、caspase-3依次被激活,诱导肿瘤细胞凋亡。caspase-3是caspase家族中最重要的凋亡蛋白酶之一,活化后的caspase-3可诱导细胞程序性死亡[14]。caspase-9是线粒体凋亡通路的关键蛋白酶,一旦激活,caspase-9就会裂解并激活caspase-3和caspase-7,从而导致细胞凋亡[15]。PARP1是研究最多的PARP家族酶之一,是将凋亡诱导因子从线粒体转位到细胞核所必需的,参与了程序性细胞死亡过程[16]。本研究显示,EVO作用于NCI-H1299细胞后,caspase-9、caspase-3和PARP1蛋白剪切型明显上升,提示EVO可能在NCI-H1299细胞内诱导caspase-9、caspase-3以及PARP1的活化。Bcl-2和Bax为细胞凋亡通路中的两种重要的基因,二者的表达是决定细胞在体内受到刺激后是否发生凋亡的重要因素[17]。Bax基因可诱导细胞凋亡,而Bcl-2具有明显抑制细胞凋亡的作用。高Bax和(或)低Bcl-2以及高Bax/Bcl-2比值有利于细胞凋亡[18]。本研究结果显示,EVO作用于NCI-H1299细胞后,Bax蛋白水平明显上升,且Bcl-2/Bax比值明显下降,提示EVO可诱导NCI-H1299细胞内源性凋亡。
程序性坏死是由蛋白激酶介导的非依赖半胱天冬酶,通过受体相互作用的一种新型细胞死亡方式。由RIP1、RIP3以及MLKL组成的蛋白复合物是程序性坏死的关键调控因子[19]。当被病毒感染或者caspase-8激活受抑制时,死亡配体(包括肿瘤坏死因子、FAS配体和肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体)依次进行磷酸化和激活RIP1、RIP3,活化的RIP3使MLKL磷酸化,导致MLKL的构象变化,p-MLKL形成寡聚体,并易位至生物膜上,通过形成孔道和破坏膜完整性导致坏死[20-22]。本研究结果显示,EVO作用于NCI-H1299细胞后,RIP1、RIP3和MLKL的蛋白磷酸化水平显著上升,提示EVO在NCI-H1299细胞中能够通过诱导RIP1、RIP3和MLKL活化,引起程序性坏死。
综上所述,EVO对人肺癌细胞NCI-H1299具有明显的抗肿瘤活性,其作用机制与细胞增殖抑制、诱导G2/M期细胞周期阻滞、内源性凋亡和程序性坏死有关。然而,这需要进一步的动物体内实验进行验证。
[参考文献]
[1]AZGHADI S, DALY M E. Radiation and immunotherapy combinations in non-small cell lung cancer[J]. Cancer Treatment and Research Communications, 2021,26:100298.
[2]胥瑞婷,马音,朱炜炜. 中医药联合靶向药物治疗非小细胞肺癌的研究进展[J]. 现代中西医结合杂志, 2020,29(12):1359-1363.
[3]RUIZ-CORDERO R, DEVINE W P. Targeted therapy and checkpoint immunotherapy in lung cancer[J]. Surgical Patho-
logy Clinics, 2020,13(1):17-33.
[4]熊慧,张明霞,杨明,等. 中药抗肿瘤侵袭、转移及逆转肿瘤耐药性的作用机制研究进展[J]. 中国实验方剂学杂志, 2022,28(22):224-230.
[5]毛佳,资晓飞,谭超,等. 吴茱萸碱抗肿瘤作用研究进展[J]. 南昌大学学报(医学版), 2022,62(3):84-87.
[6]徐俊杰,杨然,杨芳景,等. 吴茱萸碱抗肿瘤机制的研究进展[J]. 上海交通大学学报(医学版), 2018,38(5):578-583.
[7]HU X, LI D H, CHU C, et al. Antiproliferative effects of alkaloid evodiamine and its derivatives[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2018,19(11):3403.
[8]DU J, WANG X F, ZHOU Q M, et al. Evodiamine induces apoptosis and inhibits metastasis in MDA-MB-231 human breast cancer cells in vitro and in vivo[J]. Oncology Reports, 2013,30(2):685-694.
[9]RASUL A, YU B, ZHONG L L, et al. Cytotoxic effect of evodiamine in SGC-7901 human gastric adenocarcinoma cells via simultaneous induction of apoptosis and autophagy[J]. Oncology Reports, 2011,27(5):1481-1487.
[10]郭瑞,李绍军. p53蛋白的结构与功能及磷酸化修饰的生物学效应研究概述[J]. 生物学教学, 2020,45(5):2-5.
[11]MEIJER L, BORGNE A, MULNER O, et al. Biochemical and cellular effects of roscovitine, a potent and selective inhibitor of the cyclin-dependent kinases cdc2, cdk2 and cdk5[J]. European Journal of Biochemistry, 1997,243(1-2):527-536.
[12]CAPPELLETTI V, FIORAVANTI L, MIODINI P, et al. Genistein blocks breast cancer cells in the G(2)M phase of the cell cycle[J]. Journal of Cellular Biochemistry, 2000,79(4):594-600.
[13]DE SOUZA C P, ELLEM K A, GABRIELLI B G. Centroso-
mal and cytoplasmic Cdc2/cyclin B1 activation precedes nuclear mitotic events[J]. Experimental Cell Research, 2000,257(1):11-21.
[14]HENTZEN N B, MOGAKI R, OTAKE S, et al. Intracellular photoactivation of caspase-3 by molecular glues for spatiotemporal apoptosis induction[J]. Journal of the American Chemical Society, 2020,142(18):8080-8084.
[15]ARAYA L E, SONI I V, HARDY J A, et al. Deorphanizing caspase-3 and caspase-9 substrates in and out of apoptosis with deep substrate profiling[J]. ACS Chemical Biology, 2021,16(11):2280-2296.
[16]CASTIGLIONE R, CALOGERO A E, VICARI E, et al. Poly (ADP-ribose) polymerase 1 protein expression in normal pancreas and pancreatic adenocarcinoma[J]. Case Reports in Gastrointestinal Medicine, 2020,2020:2717150.
[17]VARDIYAN R, EZATI D, ANVARI M, et al. Effect of L-carnitine on the expression of the apoptotic genes Bcl-2 and Bax[J]. Clinical and Experimental Reproductive Medicine, 2020,47(3):155-160.
[18]BIN-ALEE F, ARAYATAWEEGOOL A, BURANAPRADITKUN S, et al. Evaluation of lymphocyte apoptosis in patients with oral cancer[J]. Journal of Applied Oral Science, 2020,28:e20200124.
[19]XIE Y C, ZHU S, ZHONG M Z, et al. Inhibition of aurora kinase A induces necroptosis inPancreaticCarcinoma[J]. Gastroenterology, 2017,153(5):1429-1443.e5.
[20]PASPARAKIS M, VANDENABEELE P. Necroptosis and its role in inflammation[J]. Nature, 2015,517(7534):311-320.
[21]KIM S, LU H C, STEELMAN A J, et al. Myeloid caspase-8 restricts RIPK3-dependent proinflammatory IL-1β production and CD4 T cell activation in autoimmune demyelination[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2022,119(24):e2117636119.
[22]MURAI S, YAMAGUCHI Y, SHIRASAKI Y, et al. Addendum: a FRET biosensor for necroptosis uncovers two different modes of the release of DAMPs[J]. Nature Communications, 2019,10(1):1923.
(本文編辑 牛兆山)