猪脑心肌炎病毒2B蛋白与RACK1蛋白相互作用的鉴定
2014-09-10崔尚金李江南杨春梅于会彬郭东伟张元峰夏雪山翁长江
王 岩,黄 丽, 崔尚金,李江南,杨春梅,于会彬,郭东伟,张元峰,夏雪山,翁长江*
(1.昆明理工大学生命科学与技术学院,云南昆明 650500;2.中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/动物病原监测与流行病学研究创新团队,黑龙江哈尔滨 150001)
猪脑心肌炎病毒2B蛋白与RACK1蛋白相互作用的鉴定
王 岩1,2,黄 丽2, 崔尚金2,李江南2,杨春梅2,于会彬2,郭东伟2,张元峰2,夏雪山1*,翁长江2*
(1.昆明理工大学生命科学与技术学院,云南昆明 650500;2.中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/动物病原监测与流行病学研究创新团队,黑龙江哈尔滨 150001)
为筛选与猪脑心肌炎病毒(EMCV)2B蛋白相互作用的宿主蛋白,本实验利用酵母双杂交方法筛选BHK-21细胞表达文库制备与EMCV 2B蛋白相互作用的宿主蛋白RACK1蛋白。酵母共转化试验和免疫共沉淀试验表明两者可以特异性结合,激光共聚焦试验表明两者共定位于细胞质中。为定位RACK1与2B蛋白相互作用区域,本研究构建了RACK1截短表达重组质粒,并将其与pCAGGS-Flag-2B共转染HEK293细胞,利用免疫共沉淀试验验证其相互作用区域。结果显示2B蛋白与宿主细胞RACK1蛋白存在相互作用,并且证明相互作用区域位于RACK1蛋白的N端。
猪脑心肌炎病毒;酵母双杂交;2B蛋白;RACK1蛋白;相互作用
猪脑心肌炎病毒(Encephalomyocarditis virus,EMCV)属于小RNA病毒科,心病毒属,无囊膜单股正链RNA。该病毒主要引起多种哺乳动物发生心肌炎和脑炎等疾病。1958年首次在巴拿马证明EMCV为猪的一种致死性疾病的病原[1]。EMCV基因组长7.8 kb,含有一个大的开放性阅读框(ORF),编码4个结构蛋白(VP1、VP2、VP3、VP4)和7个非结构蛋白(2A、2B、2C、3A、3B、3C、3D)[2-3]。其中2B蛋白由326个氨基酸组成,编码产物的分子量为17 ku[4],含有一个或多个疏水区。2B蛋白可以增加细胞膜的渗透性,这可能对病毒感染晚期病毒粒子的释放具有重要的作用[5]。
本研究以EMCV编码的2B蛋白为“诱饵”,利用酵母双杂交方法筛选BHK-21细胞cDNA的酵母表达文库,发现蛋白激酶C1受体(Receptor of activated protein kinase C1,RACK1)与 EMCV 2B 蛋白能够相互作用。并通过酵母共转化试验、免疫共沉淀(Co-IP)试验和表达蛋白的共定位试验进一步验证了2B和RACK1之间的相互作用,本研究为进一步研究RACK1在EMCV复制和致病机制中的作用奠定了基础。
1 材料和方法
1.1 菌株、质粒、细胞和酵母表达文库E.coliDH5α感受态细胞、重组质粒 pCAGGS-Flag-2B、pCMV-HA-RACK1、 pGBKT7、 pGADT7、 pGBKT7-2B、酵母菌 Y2H、HEK293细胞、BHK细胞,BHK-21细胞酵母表达文库均由本实验室保存。
1.2 主要试剂 质粒提取试剂盒、胶回收试剂盒购自QIAGEN公司;限制性内切酶、T4 DNA连接酶购自NEB公司;抗Flag单克隆抗体(MAb)、抗HA MAb、4',6'-二脒基 -2-苯基吲哚(DAPI)、Flag-Beads、羊抗鼠IgG-HRP和羊抗兔IgG-HRP均购自Sigma-Aldrich公司;抗Flag和抗HA多克隆抗体购自艾比马特公司;羊抗鼠IgG-FITC、羊抗兔IgG-TRITC均购自北京中山金桥生物技术有限公司;ECL发光检测试剂盒购自Thermo公司。
1.3 诱饵蛋白的自激活试验 将pGBKT7-2B与pGADT7空载体共转化感受态Y2H酵母菌,分别在SD/-Ade-Trp(SD/-2)、 SD/-Ade-Trp-Leu-His(SD/-4)及SD/-Ade-Trp-Leu-His/X-α-Gal/Aba(SD/-4/X/A)平 板 上验证pGBKT7-2B是否有自激活作用。阳性对照质粒为pGBKT7-p53+pGADT7-T,阴性对照质粒为pGBKT7-Lam+pGADT7-T。
1.4 酵母双杂交试验 将pGBKT7-2B转化Y2H酵母菌,涂布于SD/-Trp琼脂培养基平板上,挑取形态规则的单菌落接种至SD/-Trp液体培养基,将菌液用SD/-Trp液体培养基重悬,加入BHK-21酵母表达文库杂交;涂布在SD/-4平板上,并将平板上生长的阳性克隆转移至SD/-4/X/A平板上做进一步筛选;得到的阳性克隆进行菌落PCR后测序并比对序列,以确定捕获的宿主蛋白;从阳性酵母菌落中提取捕获蛋白的酵母表达质粒,并转化E.coliDH5α,以提取重组质粒进行酵母共转化试验验证相互作用。
1.5 共转化试验 将pGBKT7-2B与pGADT7-RACK1共转化感受态Y2H酵母菌,验证两者间的相互作用,同时设空白对照pGBKT7+pGADT7,阴性对照 pGBKT7+pGADT7-T,阳性对照pGBKT7-p53+pGADT7-T和自激活对照pGBKT7+pGADT7-RACK1。
1.6 真核重组表达质粒的构建 以全长pCMVHA-RACK1为模板扩增RACK1截短质粒,引物序列见表1。扩增产物与pCAGGS-HA载体分别EcoRⅠ/KpnⅠ酶切后连接,分别构建重组RACK1截短表达质粒pCAGGS-HA-RACK1-WD1-7、pCAGGSHA-RACK1-WD1-5、 pCAGGS-HA-RACK1-WD1-3、pCAGGS-HA-RACK1-WD2-7、pCAGGS-HA-RACK1-WD6-7。
表1 实验所用的引物Table 1 Primers used in this study
1.7C o-I P试验 将质粒pCAGGS-Flag、pCMVHA-RACK1、pCAGGS-Flag-2B和pCMV-HA分别共转染HEK293细胞,收集细胞样品后裂解细胞并收集细胞裂解液,取出部分加入Flag-beads,剩余部分作对照。Flag-Beads与蛋白孵育后进行western blot检测。
1.8 We s t e r nb l o t检测 Co-IP样品经SDS-PAGE分离后,湿转至PVDF膜上;5%脱脂乳室温封闭,分别以兔抗HA或抗Flag MAb(1∶1 000)为一抗,以羊抗兔IgG-HRP或羊抗鼠IgG-HRP(1∶2 000)作为二抗,通过ECL发光检测。
1.9 激光共聚焦检测 将pCAGGS-Flag-1B和pCMV-HA-RACK1共转染HEK293细胞,4%甲醛固定、0.3%Triton X-100透膜、10%的FBS血清封闭;以抗Flag MAb和兔抗HA多抗(1∶100)为一抗,羊抗鼠 IgG-TRITC(1∶100)和羊抗兔 IgG-FITC(1∶100)作为二抗;最后用终浓度为1 mM DAPI孵育,激光共聚焦显微镜下观察。
2 结 果
2.1 酵母双杂交筛选与E MC V2 B蛋白相互作用的宿主蛋白 将pGBKT7-2B诱饵质粒与pGADT7空载体共转化Y2H酵母菌,结果表明pGBKT7-2B无自激活活性。将pGBKT7-2B诱饵质粒转化Y2H酵母菌,再用Trp缺陷型固体培养基筛选得到阳性克隆与BHK-21酵母表达文库进行杂交,利用SD/-4、SD/-4/X/A培养基平板进行筛选,将阳性克隆进行PCR及测序鉴定,测序结果经序列比对,其中一部分克隆为RACK1编码序列。
2.2 2 B蛋白与R A C K 1蛋白在酵母体系中的相互作用鉴定 将pGBKT7-2B和pGBKT7空载体与pGADT7-RACK1共转化至Y2H酵母菌,在SD/-4和SD/-4/X/A均能够生长出阳性克隆并且无自激活活性,阳性对照和阴性对照均成立,表明2B和RACK1存在相互作用关系(图1)。
图1 酵母双杂交实验验证2B蛋白与RACK1蛋白的相互作用Fig.1 Identification of the interaction between 2B and RACK1 by yeast two-hybrid assay
2.3 E MC V2 B蛋白和R A C K 1蛋白在H E K 2 9 3细胞中相互作用鉴定 将pCAGGS-Flag-2B、pCMVHA-RACK1、pCAGGS-Flag和pCMV-HA空载体分别转染或共转染HEK293细胞;加入Flag beads与细胞裂解液共孵育。Co-IP样品经western blot分析。结果显示,只有在2B与RACK1共转染的细胞中,2B和RACK1存在特异性的相互作用(图2)。
图2 免疫共沉淀验证2B与RACK1的相互作用Fig.2 Interaction of 2B and RACK1 confirmed by Co-IP
2.4 E MC V2 B蛋白与R A C K 1蛋白共定位 利用激光共聚焦方法检测过表达2B和RACK1的细胞共定位。将pCAGGS-Flag-2B和pCMV-HA-RACK1共转染HEK 293细胞,24 h后,转染细胞用一抗和荧光标记的二抗孵育后,利用激光共聚焦显微镜检测2B和RACK1的共定位。结果显示,2B表达在细胞胞质和细胞核中,RACK1表达在细胞胞质中,图像经合并后呈现橙黄色,表明2B和RACK1在细胞胞质内共定位(图3)。
图3 激光共聚焦试验检测2B与RACK1的共定位Fig.3 Co-localization of 2B and RACK1 in the cytoplasma of transfected HEK293 cells under confocal microscopy
2.5 E MC V2 B蛋白和R A C K 1蛋白的相互作用区域鉴定 构建5个pCAGGS-HA-RACK1的截短重组表达质粒(图4),将其分别与pCAGGS-Flag-2B共转染HEK293细胞后进行Co-IP处理样品。Western blot检测结果显示,2B蛋白除了和RACK1全长相互作用外还与RACK1的截短区域WD1-5、WD1-3相互结合(图4),表明2B蛋白与RACK1蛋白的N端相互作用。
图4 免疫共沉淀验证2B与RACK1的相互作用区域Fig.4 The minimal domain for the interaction of 2B and RACK1 detected by Co-IP
3 讨 论
酵母双杂交是研究蛋白间相互作用最常用的方法之一,可以高通量地筛选与目的蛋白相互作用的蛋白。Co-IP是一种建立在抗原和抗体亲和作用的基础上,研究蛋白质相互作用的方法。本研究以EMCV 2B蛋白作为“诱饵”,从BHK-21 cDNA细胞文库中筛选到与之相互作用的宿主蛋白RACK1,并通过酵母共转化、Co-IP和共定位检测证明两者之间存在相互作用。构建RACK1截短重组质粒:RACK1-WD1-7、 RACK1-WD1-5、 RACK1-WD1-4、RACK1-WD2-7、RACK1-WD6-7。通过 Co-IP验证RACK1与EMCV 2B相互作用区域,WD1-7、WD1-5、WD1-3区域都与2B存在相互作用,通过Co-IP实验验证相互作用区域在N端。
RACK1属于WD40蛋白家族成员,分子量为36 ku[6],含有7个WD(色氨酸和天冬氨酸)重复基序。这些区域是在异源三聚体G蛋白的β亚基中被第一次鉴定,而异源三聚体G蛋白在蛋白与蛋白相互作用中起到重要作用[7]。1991年,RACK1首次被鉴定为蛋白激酶C(Protein kinase C,PKC)受体的结合蛋白,RACK1作为一种穿梭蛋白,协同PKC正确定位并发挥生物学功能[8-9]。RACK1能够增强PKC对脑和肌肉组织芳香羟受体核转运蛋白的类似蛋白-1(BMAL1)的磷酸化作用并抑制BMAL1-CLOCK异源二聚体的转录活性[10],流感病毒的基质蛋白1能够与RACK1相互作用,被PKC磷酸化。本研究表明EMCV 2B蛋白与RACK1蛋白存在相互作用,为进一步研究RACK1在EMCV感染和复制过程中的作用奠定了基础。
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Identification of the interaction between 2B protein of encephalomyocarditis virus and RACK1
WANG Yan1,2,HUANG Li2, CUI Shang-jin2,LI Jiang-nan2,YANG Chun-mei2,YU Hui-bin2,GUO Dong-wei2,ZHANG Yuan-feng2,XIA Xue-shan1*,WENG Chang-jiang2*
(1.College of Life Science and Technology,Kunming University of Science and Technology,Kunming 650500,China;2.State Key Laboratory of Veterinary Biotechnology,Harbin Veterinary Research Institute,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Harbin 150001,China)
To screen the host proteins interacted with the 2B protein of encephalomyocarditis virus(EMCV),we scanned the BHK-21 expression library using EMCV 2B protein as bait protein by yeast-two-hybrid,and found a potential interacting partner protein of RACK1.The interaction of the 2B and RACK1 proteins was further confirmed by co-transformation in the yeast and Co-IP assay in co-transfected HEK293 cells.In addition,they were co-localized in the cytoplasma of co-transfected HEK293 cells examined by laser confocal assays.To map the interacting domain of RACK1,a series of RACK1 truncated eukaryotic expression recombinant plasmids were construct and co-transfected with pCAGGS-Flag-2B into HEK293 cells,respectively,which were subjected to Co-IP and detected by western blot.The results suggested that EMCV 2B interacted with N terminal of RACK1.
encephalomyocarditis virus;yeast-two-hybrid;2B protein;RACK1 protein;interaction
S852.65
A
1008-0589(2014)05-0339-04
10.3969/j.issn.1008-0589.2014.05.01
*Correspondingauthor
2013-12-20
国家自然科学基金(31300139);中国农业科学院基本科研业务费预算增量项目(2013ZL034)
王 岩(1988-),女,辽宁抚顺人,硕士研究生,主要从事猪脑心肌炎病毒与宿主蛋白相互作用研究.
*通信作者:E-mail:oliverxia2000@yahoo.com.cn;wengchji@163.com
(本文编辑:赵晓岩)