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构建高效准确小鼠动脉血压测量方法的研究

2022-05-12罗岳莲刘景彭书崚

岭南急诊医学杂志 2022年2期
关键词:七氟醚插管束缚

罗岳莲 刘景 彭书崚

对实验动物的生理参数,尤其是血压进行监测是开展动物实验研究的基础[1]。目前常用的实验动物的血压测量法可分为有创和无创两类[2]。有创法,包括充液导管法和植入式遥测法,导管在动脉中直接感受血管壁的压力,读数最为准确,其中遥测法被视为“金标准”[3],但遥测法因侵入性和价格昂贵,在实际中受限;股动脉插管法价格相对低廉,却因创伤、出血等因素可能干扰血流动力学参数。此外,有创法不适用于大量动物血压测量。无创法,主要是指尾套法,原理是通过血流阻断再通时血管的振动间接获得脉搏的脉动,对动物的消耗和刺激最小,适用于短期和长期研究中反复测量动物血压[4]。但尾套法也具有无法连续监测血压及所测结果较遥测法偏高等不足。有研究提出应用低浓度麻醉药使动物处于浅麻醉状态代替清醒束缚。低浓度异氟醚(1%)对动物心输出量和血气结果影响甚微,相较于异氟醚,七氟醚具有更优的稳定性及安全性,对血流动力学参数的影响更小[5]。本研究在2%低浓度七氟醚维持小鼠浅麻醉状态下,采用尾套法测量血压,构建七氟醚-尾套法,将其分别与清醒束缚法及股动脉插管法比较,评价其测量小鼠血压和心率的效率和准确性。

1 材料与方法

1.1 实验材料(1)实验动物:SPF 级雄性C57BL/6 小鼠(10-12 周龄,体重22-29 g)购自中山大学实验动物中心。动物于室温23℃、明暗各12 h 交替的环境中饲养,自由饮水和摄食。实验操作均符合动物伦理学标准,伦理审查批准编号为:SYSUIACUC-2019-B836。

(2)主要仪器:多动物麻醉机(V703001,Harvard,USA);麻醉气体监护仪(B450,GE,Finland);体温维持仪(ThermoStar,瑞沃德,中国);多通道生理记录仪(MP160,BIOPAC ,USA);生理信号采集及处理软件(AcqKnowledge 5,BIOPAC,USA);智能无创血压计(BP-2010A,Softron,北京软隆)。

1.2 实验方法(1)实验分组。试验1:将12 只小鼠随机分2 组:CON 组(n=6),使用清醒束缚法测压和SEV 组(n=6),使用七氟醚-尾套法测压(试验2:8 只小鼠同时使用七氟醚-尾套法和股动脉插管法测量血压(Union 组,n=8)。(2)麻醉方案:将SEV 组和Union 组小鼠置于麻醉诱导箱中,以2 L/min 速率输送5%七氟醚及100%O2诱导麻醉,用气体监护仪监测麻醉浓度,待小鼠翻正反射消失、刺激脚趾无反应时视为诱导完全,迅速从诱导箱中取出,置于加热垫上并戴上气麻面罩,使用2%七氟醚持续吸入维持浅麻醉,使用反馈式加热垫维持肛温37.0℃。(3)血压测量:对CON 组小鼠使用智能无创血压计进行尾动脉血压测量。如前所述,正式实验开始前连续5 天进行预测量[6]。第6天正式测压,提前1h 将小鼠放入操作室中适应环境,引导小鼠进入鼠网中,包裹鼠袋固定,置于37℃保温筒中,ADDIN EN.CITE[6]。将加压传感器置于鼠尾根处,尾套充气加压至180 mmHg,放气超过20 s,收集收缩压(SBP)、舒张压(DBP)、平均动脉压(MBP)和心率(HR),同时记录小鼠从开始测量至达到稳定结果的时间,稳定结果定义为连续三组MBP 相差不超过15 mmHg[7]。取5 组稳定数据计算平均值用于分析。SEV 组小鼠无预测量,第6 天麻醉后经尾套测压,操作同CON 组。对Union 组小鼠进行右侧股动脉插管并使用多通道生理记录仪测量有创血压。股动脉插管流程如下:将PE-10 聚乙烯导管注满20 U/ml 肝素钠生理盐水溶液备用。小鼠麻醉后,取仰卧位,在右侧腹股沟区切开一10 mm 切口,在体式显微镜下分离股动脉,结扎远心端,用血管夹阻断近心端血流,持Vannas 剪小心剪开一“V”型破口,将导管缓慢插入股动脉内,固定,移去动脉夹,缝合后皮下注射0.5%利多卡因溶液。术毕小鼠取俯卧位,将导管连接到BIOPAC 系统采集血压信号,读数稳定5-10 min 后,以1 kHz 频率采集1 min的血压数据用于分析,同时经尾套采集无创血压数据。

1.3 统计学分析使用SPSS 23.0 统计软件包进行数据分析。数据分析方法包括两独立样本t检验、配对t检验及Bland-Altman 分析。采用Shapiro-Wilk 检验数据正态性,levene 检验方差齐性。连续性数值资料数据以(±s)形式进行统计描述。以P<0.05 为差异具有统计学意义。图表用GraphPad Prism 8.0 绘制。

2 结 果

2.1 束缚与浅麻醉对两组小鼠血流动力学的影响见表1,图1。

图1 CON 组和SEV 组测量达到稳定所需时间 (A)和血压Bland-Altman 分析图(B-D)。A:清醒束缚法与七氟醚-尾套法测定血压达到稳定结果所需的时间。(****:P<0.0001)。B-D 分别表明清醒束缚法与七氟醚-尾套法小鼠收缩压、舒张压和心率具有良好的一致性。

表1 CON 组和SEV 组小鼠的血压和心率比较(n=6, ± s)

表1 CON 组和SEV 组小鼠的血压和心率比较(n=6, ± s)

组别CON SEV P Weight(g)25.2±1.3 24.6±1.2 0.5623 SBP(mmHg)105±2 105±2 1.000 DBP(mmHg)57±10 60±12 0.631 MBP(mmHg)73±7 75±8 0.657 HR(bpm)583±20 618±56 0.180

2.2 七氟醚-尾套法与股动脉插管法血压测量结果比较见图2。

图2 Union 组中同时使用七氟醚-尾套法与股动脉插管测量血压结果。A.B.七氟醚-尾套法与股动脉插管法相比SBP、DBP、MBP 及HR 统计结果。(Tail-cuff:尾套组,Femoral:股动脉插管组。*:P<0.05,**:P<0.01,***:P<0.001) C.D.七氟醚-尾套法与股动脉插管法SBP、DBP 的散点图。两种方法测量SBP 呈正相关性(r=0.8645,P=0.0056)(C),DBP 无明显线性趋势(D)。

3 讨 论

无创尾套法是目前最常应用于动物间接血压测量的方法[8]。研究表明,多种测量相关因素会对血流动力学参数产生影响,包括小鼠是否提前训练、测量者的性别。因此,为了获得更准确的数值,应对潜在的偏倚进行控制。同时,提前进行预测量训练可以减少动物应急反应所致的血压升高,然而预测量需花费5 d 时间[9]。最近有研究初步表明1%异氟醚应用于尾套法测量时与清醒束缚法相比一致性较高[7]。本研究构建了一种新的测量方法,使用较低浓度的七氟醚(2%)维持小鼠浅麻醉状态,即七氟醚-尾套法,与传统清醒束缚法相比,两组小鼠的SBP、DBP、MBP 和HR 的数值相近(表1),Bland-Altman 分析显示较好的一致性(图1)。结果表明七氟醚-尾套法测量小鼠血流动力学参数较可靠,且七氟醚-尾套法可省略预测量步骤、节约达到稳定结果的时间,效率更高。为验证七氟醚-尾套法的准确性,本研究将其与股动脉插管法同时测量同一小鼠的血压,结果表明两种方法的SBP 差异无统计学意义(图2A),数据具有强正相关性(图2C),而股动脉插管法DBP 及MBP高于七氟醚-尾套法,原因可能是PE 导管材质较硬,顺应性较小致DBP 测量结果升高[10],而MAP也因计算而随之升高(MBP=1/3SBP+2/3DBP)。

综上所述,本研究构建的七氟醚-尾套法用于测定成年雄性C57BL/6 小鼠的血压,与清醒束缚法相比,血压评价结果具有高效性与合理的一致性。与直接法相比,SBP 结果具有良好的准确性。因此,在对实验动物进行心血管系统研究或表型筛选时,七氟醚-尾套法可高效准确地用于监测血流动力学参数。

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