聚乙二醇沉淀法与凝胶色谱层析法检测巨泌乳素的相关性研究
2013-11-20刘金玲
王 霞, 刘金玲, 高 硕
(1.天津市血液中心,天津300110;2.天津市医科大学总医院,天津300052)
泌乳素(prolactin,PRL)是垂体前叶分泌的一种多肽类激素。PRL的正确检测关系到临床正确诊断、合理治疗和预后的判断。文献报道[1-2]巨泌乳素(macroprolactin,MPRL)的存在是导致高PRL的重要原因之一。MPRL能被某些免疫检测仪误认为PRL报告给临床,给高泌乳素血症(hyperprolactinemia,HPRL)的诊断带来很大干扰。如何排除干扰,提高PRL检测的准确性已成为临床和实验室关注的重点。
目前,凝胶色谱层析(gel filtration chromatograpy,GFC)法被公认为检测MPRL的金标准[3],但因检测技术较复杂,检测时间长且费用昂贵而不适合临床常规筛查。相比较而言,聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)沉淀法经济、简便、易行。我们对PEG沉淀法与GFC法进行比较,初步探讨PEG沉淀法检测MPRL的可行性。
材料和方法
一、标本来源
选自2009年1月至2010年1月就诊于天津医科大学总医院妇产科及内分泌科的HPRL患者26例,均为女性,年龄18~46岁。所有标本经Bayer ACS180化学发光免疫分析仪测定血清PRL后,留取血清-70℃保存待检,同时搜集该病例的临床诊断及影像学资料,根据临床诊断、影像学资料及实验室检测分为真性HPRL组(简称真泌组)11例及MPRL血症组(简称巨泌组)15例。
二、GFC法分离血清PRL
1.凝胶色谱柱 规格1.6 cm×80 cm凝胶色谱柱购自天津嘉悦玻璃制品有限公司。
2.填充介质 Sephadex G100购自美国法玛西亚生物有限公司。
3.组分定标 兰葡聚糖(相对分子质量2.5×103),乙醇脱氢酶(相对分子质量150×103),牛血清白蛋白(相对分子质量66×103),碳酸酐酶(相对分子质量29×103),以上标准品均购自美国Sigma-aldrich公司。根据定标体积收集目标组分。
4.洗脱缓冲溶液配制 10 mmol/L Tris缓冲液(pH 值 7.4),含 10 mmol/L Tris、140 mmol/L NaCl、1.25 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2及0.02%NaN3。使用前用0.4 μm 滤膜抽滤,4 ℃保存待用。
5.仪器 BS-100A型自动部分收集器及自动恒流泵均购自上海沪西分析仪器有限公司。UV-2501型紫外分光光度检测仪购自日本岛津公司。
6.标本预处理 血清自-70℃取出融化后平衡至室温,混匀后2 000×g离心10 min,取血清中段,用0.2μm滤膜过滤,吸取血清待用。
7.GFC法上机分离参数 流速0.5 mL/min,上样量1.0 mL。洗脱相为10 mmol/L Tris缓冲液(pH 值7.4)。
8.收集组分 每收集1.5 mL为一管,每份标本收集100管,经Bayer ACS180化学发光免疫分析仪检测PRL浓度。将检测结果录入EXCEL表格并绘制PRL层析图。
三、PRL及MPRL检测
1.PRL检测 Bayer ACS180化学发光免疫分析仪及其配套试剂均购自美国拜耳公司,高、中、低值质控品均购自美国伯乐公司。PRL检测灵敏度为0.3 ng/mL,批内变异系数(CV)为2.5%~3.8%,批间 CV为3.6%~4.5%。
2.MPRL筛查 25%PEG(相对分子质量为6 000)购自北京鼎国生物技术有限公司,溶液4℃保存用作 MPRL的沉淀剂。AllegraTMCentrifuge超速冷冻离心机购自美国贝克曼公司。
3.MPRL筛查方法 每份血清取250μL,加等量的25%PEG溶液,充分混匀后室温放置30 min,4℃ 2 000×g离心30 min,取上清液分别检测PRL值。PRL测定回收率=[(PEG沉淀后PRL值×2)/PEG沉淀前PRL值]×100%,回收率≤40%提示该标本含有MPRL[4-6]。
四、统计学分析
采用SPSS11.5软件进行统计处理。因数据呈偏态分布,故采用中位数(P2.5~P97.5)表示。多组数据比较采用Wilcoxon符号秩检验,组间比较采用非参数Kruskal-Wallis H检验,线性回归分析采用Spearman相关系数。P<0.05为差异有统计学意义。
结 果
一、GFC法分离MPRL与真性HPRL的PRL层析谱
混合标准品分离结果见图1。根据目标PRL相对分子质量大小,依据定标体积收集相应组分。MPRL血症色谱分离结果见图2,HPRL色谱分离结果见图3。
图1 GFC法混合标准品分离结果
图2 GFC法分离MPRL血症各组分PRL
图3 GFC法分离HPRL各组分PRL
二、真泌组与巨泌组PEG处理前、后PRL浓度比较
真泌组与巨泌组血清处理前总PRL浓度差异无统计学意义(P=0.113),而处理后真泌组明显高于巨泌组(P<0.05),结果见表1。
表1 真泌组和巨泌组PEG处理前、后PRL浓度比较 (ng/mL)
三、GFC法与PEG沉淀法检测真泌组与巨泌组单体PRL浓度的比较
采用GFC法与PEG沉淀法检测真泌组和巨泌组单体PRL浓度差异无统计学意义(P<0.05),结果见表2。
表2 GFC法与PEG沉淀法检测真泌组与巨泌组单体PRL浓度 (ng/mL)
四、GFC法与PEG沉淀法检测真泌组与巨泌组单体PRL回收率比较
GFC法与PEG沉淀法检测真泌组与巨泌组单体PRL回收率差异无统计学意义(P>0.05),结果见表3。
表3 GFC法与PEG沉淀法检测真泌组与巨泌组单体PRL回收率 (%)
五、GFC法与PEG沉淀法检测26例HPRL血清单体PRL的相关性比较
PEG沉淀法与GFC法的相关性良好[相关系数(r)=0.844,P=0.000],见图4。
图4 GFC法与PEG沉淀法检测单体PRL的相关性比较
讨 论
垂体前叶嗜酸性细胞合成的PRL含有199个氨基酸,其中包括6个半胱氨酸。经GFC法确认,主要存在3种不同相对分子质量的PRL,即有活性的23×103的单体PRL、无或低生物活性而有免疫反应性的(45~60)×103的大PRL及>100×103的 MPRL。正常人血清中单体 PRL约占85%~95%,MPRL 仅约占1%[7]。
GFC法作为MPRL血症经典的确证试验,最大的优点是能很好的区分MPRL、大PRL及单体PRL,直接证明血清中MPRL的存在,并能通过色谱洗脱曲线峰下面积计算PRL各种分子形式的比例和含量。
本研究中真性HPRL患者与MPRL患者血清总PRL浓度在PEG处理前差异无统计学意义(P=0.113),表明MPRL血症与真性HPRL在生化指标上很难区分,而PEG处理后真泌组明显高于巨泌组(P<0.05),提示MPRL具有免疫反应性,对某些检测系统免疫检测造成干扰[8]。本研究利用GFC法证实的MPRL血症与真性HPRL患者单体PRL比例不同,真性HPRL中单体PRL占46.12%~81.73%,MPRL血症中单体 PRL仅占7.43%~35.95%,二者比较有明显差异(P=0.000)。
本研究表明PEG沉淀法与GFC法具有良好的相关性(r=0.844,P=0.000),与Lucille 等[3]报道的研究结果相一致(r=0.80),且本研究结果也表明PEG沉淀法具有良好的稳定性。
Quinn等[9]报道在PRL增高患者中有25%存在MPRL,真性HPRL和MPRL血症不能仅仅根据临床表现区分。因此,正确诊断HPRL,避免不必要的检查和不恰当的治疗、随访,对PRL增高的患者进行筛查是有必要的。尽管GFC法是检测MPRL的金标准[10],但由于技术复杂、检测时间长、费用昂贵,限制了其在实验室中的常规使用。本研究对PEG沉淀法与GFC法进行方法学比较,初步结果表明PEG法与GFC法具有良好的相关性,且简便、易行。可考虑作为实验室MPRL血症的常规筛查方法。
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