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白芍总苷调控NF-κB/NLRP3 信号通路对急性痛风性关节炎大鼠的影响 机制研究①

2023-03-17畅秀丽张安兵湖北文理学院附属医院襄阳市中心医院风湿免疫科襄阳441021

中国免疫学杂志 2023年2期
关键词:秋水仙碱步态滑膜

畅秀丽 张安兵 (湖北文理学院附属医院,襄阳市中心医院风湿免疫科,襄阳 441021)

急性痛风性关节炎(acute gouty arthritis,AGA)是一种常见的炎症性关节炎,其主要特征为尿酸增加和关节内尿酸钠晶体(monosodium urate,MSU)积累,表现出强烈疼痛、关节肿胀及活动性炎症等症状,具有高发病率和致残率[1-2]。目前用于治疗AGA的药物会导致患者中枢神经系统、胃肠道、肝肾功能损伤,因此有必要寻找新的有效治疗药物,减少药物副作用[3]。白芍总苷(total glucosides of paeony,TGP)作为白芍提取物具有抗炎和免疫调节的作用,已被广泛用于治疗类风湿关节炎等自身免疫性疾病[4]。有研究表明TGP 可能通过抑制促炎因子水平,对MSU 诱导的AGA 大鼠具有治疗作用[5]。核因子-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)/含NLR 家族Pyrin 域蛋白3(NLR family,Pyrin domain containing protein 3,NLRP3)信号通路与MSU 晶体诱导的炎症细胞因子释放有关[6]。研究发现,TGP 可通过抑制NLRP3 和NF-κB 表达抑制MSU 诱导的THP-1 巨噬细胞炎症[7]。目前,关于TGP 是否可通过调控NFκB/NLRP3通路影响AGA 模型大鼠炎症反应还未可知,因此本研究通过对其探究以期为TGP 在AGA 中的治疗机制研究提供参考。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验动物 华中科技大学动物实验中心提供的60 只SPF 级SD 大鼠(245~290 g),许可证号:SCXK(鄂)2016-0009,适应性饲养于12 h/12 h 明暗交替的环境中1 周,期间自由饮水、采食,实验前禁食12 h。

1.1.2 主要试剂与仪器 TGP(南京景竹生物科技有限公司,货号:JZ20130101);秋水仙碱(上海宝曼生物科技有限公司,货号:D0123);尿酸钠(上海一研生物科技有限公司,货号:EY-5948);TNF-α、IL-6、IL-1β ELISA 试剂盒(武汉菲恩生物科技有限公司,货号:ER1393、ER0042、EH0185);HE 染色试剂盒(北京索莱宝科技有限公司,货号:G1120-100);蛋白提取试剂盒(武汉纯度生物科技有限公司,货号:CD-13559-ML);BCA 蛋白检测试剂盒、HRP 标记的山羊抗兔IgG 二抗抗体(北京百奥莱博科技有限公司,货号:HR0329-ZHV、JN0200-GLH);兔抗β-actin、p-NF-κB p65、NF-κB p65、p-IκBα、IκBα、NLRP3、Caspase-1 抗 体(Cell Signaling Technology,货 号:4970、3033、8242、2859、9242、15101、2225)。Invitrogen 凝胶成像系统购自赛默飞世尔;RT2100C 全自动酶标仪购自德国IFP公司。

1.2 方法

1.2.1 分组与模型构建 60只SD大鼠以每组10只随机分为对照组、AGA组、秋水仙碱组(0.65 mg/kg)、TGP-L 组(10 mg/kg)、TGP-M 组(20 mg/kg)、TGP-H组(40 mg/kg)[8-9]。对照组和AGA 组于每天9:00 灌胃生理盐水,秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M组、TGP-H组每天分别灌胃0.65 mg/kg 秋水仙碱及10、20、 40 mg/kg TGP,进行7 d,第5 天给药1 h 后,除对照 组外其余大鼠右侧踝关节背侧注射0.2 ml MSU (100 mg/ml),诱导AGA模型,肉眼可见关节处僵硬、红肿及行动受限则表明造模成功,对照组注射等量生理盐水,造模结束后,再灌胃2 d,观察大鼠一般情况[10]。

1.2.2 大鼠步态及关节炎症指数评价 造模24 h后进行大鼠步态分级:0 级,行走正常;1 级,下肢微弯、跛行;2 级,下肢仅接触地面、中度跛行;3 级, 三足行走,跛行严重。关节炎症指数评价:0 级,关节正常;1级,骨标志明显、关节轻度红肿;2级,骨标志不明显、关节红肿明显;3 级,出现关节外红肿 现象[11]。

1.2.3 大鼠关节肿胀程度检测 于造模前及造模后6 h、12 h、24 h、48 h检测大鼠右侧踝关节容积,肿胀程度(%)=(造模前关节容积-测试时间点关节容积)×100%。

1.2.4 HE 染色观察大鼠踝关节滑膜组织病理学变化 随机选取5 只大鼠,颈椎脱臼处死后于关节腔中注射生理盐水(1 ml),活动关节后收集关节液,随后取踝关节滑膜组织于多聚甲醛(4%)中固定24 h,乙醇脱水(5 min)、石蜡包埋后进行常规切片(4 µm)、二甲苯脱蜡、梯度乙醇水化、苏木精-伊红染色、梯度乙醇脱水,封片后显微镜观察(n=5)。

1.2.5 ELISA 法检测大鼠关节液中炎症因子水平 通过ELISA检测试剂盒检测所得关节液中肿瘤TNF-α、IL-1β、IL-6水平,按试剂盒说明书操作。

1.2.6 Western blot 检测大鼠踝关节滑膜组织各蛋白表达情况 取余下5 只大鼠踝关节滑膜组织,使用组织裂解液裂解组织后提取总蛋白,根据BCA 试剂盒说明书检测组织总蛋白含量;取上样缓冲液与蛋白混匀后100 ℃变性5 min,进行SDS-PAGE 凝胶电泳(40 µg/孔),低温转至PVDF膜,经过5%脱脂奶粉封闭1 h 后,加入兔抗β-actin、p-NF-κB p65、NFκB p65、p-IκBα、IκBα、NLRP3、Caspase-1(1∶1 000)一抗4 ℃孵育过夜,PBS 清洗3 次,添加HRP 标记的山羊抗兔IgG二抗(1∶3 000)孵育2 h,添加发光试剂(ECL Reagent)显色,蛋白凝胶成像仪观察后进行定量分析(n=5)。

1.3 统计学分析 SPSS20.0 统计学软件进行数据分析,以±s描述计量资料,采用单因素方差分析进行多组间比较,采用SNK-q检验多组间的两两比较,P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 各组大鼠一般情况比较 对照组大鼠关节无肿胀现象、皮毛光亮、运动灵活;AGA 组大鼠关节肿胀、跛行、皮毛无光泽、精神倦怠、活动量及进食量减少;秋水仙碱组、TGP-L 组、TGP-M 组、TGP-H 组大鼠关节肿胀、皮毛光泽度、饮食、精神状态及行动均得到有效改善。

2.2 TGP 对AGA 大鼠步态与关节炎症指数的影响 与对照组相比,AGA 组大鼠步态级别与关节炎症指数显著升高(P<0.05);与AGA 组相比,秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M组和TGP-H组大鼠步态级别与关节炎症指数显著降低,存在TGP剂量依赖性(P<0.05);与秋水仙碱组相比,TGP-H 组大鼠步态级别与关节炎症指数差异无统计学意义(P>0.05),见表1。

表1 TGP 对AGA 大鼠步态与关节炎症指数的影响(±s, n=10)Tab.1 Effects of TGP on gait and arthritis index of AGA rats (±s,n=10)

表1 TGP 对AGA 大鼠步态与关节炎症指数的影响(±s, n=10)Tab.1 Effects of TGP on gait and arthritis index of AGA rats (±s,n=10)

Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with AGA group, 2)P<0.05; compared with TGP-L group, 3)P<0.05; compared with TGP-M group, 4)P<0.05.

2.3 TGP 对AGA 大鼠关节肿胀的影响 AGA 组、秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M组和TGP-H组大鼠关节肿胀程度在6 h 时最大,随着时间的增加,肿胀程度逐渐减轻;与对照组相比,AGA 组大鼠各时间点关节肿胀程度显著提高(P<0.05);与AGA 组相比,秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M组和TGP-H组各时间点大鼠关节肿胀程度显著降低,存在TGP 剂量依赖性(P<0.05);与秋水仙碱组相比,TGP-H 组各时间点大鼠关节肿胀程度差异无统计学意义(P>0.05),见图1。

图1 TGP对AGA大鼠关节肿胀的影响Fig.1 Effect of TGP on joint swelling in AGA rats

2.4 大鼠踝关节滑膜组织病理学观察 对照组大鼠关节滑膜结构正常,无炎症细胞浸润现象发生;AGA 组滑膜水肿、充血、增生现象明显,炎症细胞浸润严重;秋水仙碱组、TGP-L 组、TGP-M 组和TGP-H组滑膜水肿、增生现象减轻,炎症细胞浸润程度得到改善,见图2。

图2 大鼠踝关节滑膜组织病理学观察(HE,×200)Fig.2 Histopathological observation of synovium of ankle joint in rats (HE, ×200)

2.5 TGP 对AGA 大鼠膝关节腔冲洗液炎症因子 水平的影响 与对照组相比,AGA 组大鼠关节腔冲洗 液中TNF-α、IL-6 和IL-1β 水 平显 著 升 高(P<0.05);与AGA组相比,秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M组和TGP-H 组TNF-α、IL-6 和IL-1β 水平显著降低,存在TGP 剂量依赖性(P<0.05);与秋水仙碱组相比,TGP-H 组TNF-α、IL-6 和IL-1β 水平差异无统计学意义(P>0.05),见表2。

表2 TGP 对AGA 大鼠膝关节腔冲洗液炎症因子水平的 影响(±s,n=5,ng/L)Tab.2 Effect of TGP on inflammatory factors in knee joint irrigation fluid of AGA rats (±s,n=5,ng/L)

表2 TGP 对AGA 大鼠膝关节腔冲洗液炎症因子水平的 影响(±s,n=5,ng/L)Tab.2 Effect of TGP on inflammatory factors in knee joint irrigation fluid of AGA rats (±s,n=5,ng/L)

Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with AGA group, 2)P<0.05; compared with TGP-L group, 3)P<0.05; compared with TGP-M group, 4)P<0.05.

2.6 TGP 对AGA 大鼠关节滑膜组织NF-κB/NLRP3通路相关蛋白表达的影响 与对照组相比,AGA 组大鼠关节滑膜组织p-NF-κB p65/NF-κB p65、NLRP3、Caspase-1 表达显著增加,而p-IκBα/IκBα 表达显著降低(P<0.05);与AGA 组相比,秋水仙碱组、TGP-L组、TGP-M 组和TGP-H 组p-NF-κB p65/NF-κB p65、NLRP3、Caspase-1 表达显著降低,p-IκBα/IκBα 表达显著增加,存在TGP剂量依赖性(P<0.05);与秋水仙碱组相比,TGP-H组p-NF-κB p65/NF-κB p65、p-IκBα/IκBα、NLRP3、Caspase-1 表达水平差异无统计学意义(P>0.05),见表3、图3。

表3 TGP 对AGA 大鼠关节滑膜组织NF-κB/NLRP3 通路相关蛋白表达的影响(±s,n=5)Tab.3 Effect of TGP on expression of NF-κB/NLRP3 pathway related proteins in synovial tissue of AGA rats (±s,n=5)

表3 TGP 对AGA 大鼠关节滑膜组织NF-κB/NLRP3 通路相关蛋白表达的影响(±s,n=5)Tab.3 Effect of TGP on expression of NF-κB/NLRP3 pathway related proteins in synovial tissue of AGA rats (±s,n=5)

Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with AGA group, 2)P<0.05; compared with TGP-L group, 3)P<0.05; compared with TGP-M group, 4)P<0.05.

Caspase-1/β-actin 0.53±0.10 1.51±0.281)0.56±0.112)1.26±0.212)0.89±0.152)3)0.57±0.092)3)4)Groups Control AGA Colchicine TGP-L TGP-M TGP-H p-NF-κB p65/NF-κB p65 0.49±0.10 1.58±0.341)0.58±0.112)1.30±0.212)0.96±0.182)3)0.60±0.132)3)4)p-IκBα/IκBα 1.66±0.36 0.63±0.121)1.41±0.232)0.81±0.122)1.15±0.182)3)1.40±0.242)3)4)NLRP3/β-actin 0.70±0.12 1.45±0.241)0.78±0.142)1.24±0.212)1.01±0.192)3)0.80±0.162)3)4)

图3 TGP 对AGA 大鼠关节滑膜组织NF-κB/NLRP3 通路相关蛋白表达的影响Fig.3 Effect of TGP on expressions of NF-κB/NLRP3 pathway related proteins in synovial tissue of AGA rats way

3 讨论

AGA 是一种在男性中较为常见的炎症性关节炎,由高尿酸血症及MSU 晶体在关节和关节周围组织沉积所引起,且高尿酸血症作为AGA 发生的最主要因素,与心血管疾病、慢性肾脏病等多种合并症相关[6-12]。降低炎症反应是AGA 临床治疗的主要目的,目前用于治疗AGA 的常用药物秋水仙碱和非甾体抗炎药疗效有限,且长期使用可导致胃肠道出血、肾毒性等副作用[6-12]。由于天然中草药植物来源广泛、疗效好、副作用少,越来越多的研究人员将注意力逐渐集中到对其活性成分的研究中,以期寻找到有效替代药物,提高疗效,减少副作用发生[6]。

TGP作为白芍活性成分,具有镇痛、抗炎和免疫调节的作用,已被用于多种免疫性疾病的治疗[13]。TGP 通过抑制Ⅱ型胶原所诱导的关节炎模型小鼠STAT3信号通路抑制骨质破坏[13]。TGP在类风湿关节炎大鼠中可能通过下调Toll 样受体-2(Toll-like receptor-2,TLR-2)/TNF受体关联因子6(TNF receptor associated factor 6,TRAF6)/NF-κB 通路及调节T 细胞亚群发挥抗炎作用[14]。定痛汤合白芍总苷胶囊在痛风性关节炎中临床疗效甚佳,可缩短病程,改善疾病症状[15]。还有研究发现,TGP 可降低AGA 大鼠血清中TNF-α、IL-6 及IL-1β 水平,抑制炎症反应[5]。本研究发现,TGP 不仅可改善关节肿胀、跛行、皮毛无光泽、精神倦怠等症状,还可显著降低AGA 大鼠步态级别、关节炎症指数、关节肿胀程度、组织病理学程度,该结果表明,TGP 对AGA 大鼠不良症状及关节病理学程度具有改善作用。本研究还发现TGP 可显著降低TNF-α、IL-6、IL-1β 表达水平,与既往研究结果相一致,该结果表明,TGP 可有效抑制AGA大鼠关节炎症反应。

NF-κB 是炎症和能量衰竭的中介,控制促炎因子的产生[1]。IκBα 是NF-κB 抑制剂,在正常状态下,NF-κB 与IκBα 在胞质中相互结合,当炎症发生时,IκBα 快速降解并与NF-κB 分离,NF-κB 转位至胞核内调节促炎因子的转录,从而促进NLRP3 信号通路的激活[1]。NLRP3 是MSU 晶体所诱导的炎症反应的关键因素,因此,阻断其激活或影响其活性可抑制AGA的发生[6-16]。当MSU晶体在关节腔内沉积后,会引发强烈的炎症反应,激活NLRP3 炎症小体和Caspase-1,刺激IL-1β 等炎症体依赖性细胞因子的释放,从而进一步激活免疫细胞释放TNF-α、IL-6 等其他促炎症细胞因子,加重炎症反应[17-18]。NF-κB 信号通路及NLRP3 炎症体轴在AGA 中被激活[19]。研究发现,TGP可通过抑制人肺腺癌转移相关转录本1(metastasis associated in lung denocarcinoma transcript 1),MALAT1/微小RNA 876-5p(microRNA 876-5p,miR-876-5p/NLRP3 抑制MSU 诱导的THP-1巨噬细胞炎症[7]。本研究发现TGP 可显著降低 p-NF-κB p65/NF-κB p65、NLRP3 和Caspase-1 水平,显著提高p-IκBα/IκBα 水平。该结果表明,TGP 可能通过抑制NF-κB/NLRP3 信号通路激活从而降低炎症因子的表达,以此抑制AGA大鼠炎症反应。

综上所述,TGP 可能通过抑制NF-κB/NLRP3 信号通路达到改善AGA 大鼠炎症状态的效果。本研究为TGP 在AGA 疾病治疗机制中的研究提供参考,但关于TGP 在AGA 中是否还通过调控其他通路发挥治疗作用还需进一步探究。

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