扇贝裙边糖胺聚糖体外抗HSV2病毒的实验研究
2022-05-30于囡,韩建建,刘赛
于囡,韩建建,刘赛
[摘要]目的 探讨扇贝裙边糖胺聚糖(SS-GAG)对单纯疱疹病毒2型(HSV-2)的体外抗病毒作用。 方法 观察病毒对宿主细胞(Vero细胞)的形态影响和毒性反应。采用噻唑蓝法检测SS-GAG对Vero细胞的毒性作用以及不同浓度SS-GAG对HSV-2的直接灭活、抑制复制活性及综合作用等。结果 SS-GAG在实验浓度范围内对Vero细胞均无毒性。与病毒对照组相比,SS-GAG各浓度组(50、100、200 mg/L)能有效保护经HSV-2感染的Vero细胞,使细胞活性增强(F=20.061、39.947,P<0.01),并减弱HSV-2导致的病变效应,抑制病毒的复制,但是SS-GAG对HSV-2没有直接灭活作用。结论 SS-GAG在体外实验中显示出保护宿主细胞及抵抗HSV-2感染的活性作用,提示其在抗HSV-2活性方面具有进一步研究的潜力。
[关键词]扇贝科;多糖类;疱疹病毒2型,人;抗病毒药;Vero细胞
[中图分类号]R343;R373.9
[文献标志码]A
[文章编号]2096-5532(2022)04-0611-04
doi:10.11712/jms.2096-5532.2022.58.140
[开放科学(资源服务)标识码(OSID)]
[网络出版]https://kns.cnki.net/kcms/detail/37.1517.R.20220822.1545.009.html;[JY]2022-08-2310:26:29
ANTIVIRAL EFFECT OF GLYCOSAMINOGLYCAN FROM SCALLOP SKIRT AGAINST HERPES SIMPLEX VIRUS TYPE 2 IN VITRO: AN EXPERIMENTAL STUDY
YU Nan, HAN Jianjian, LIU Sai
(Scientific Research Department, Qingdao Eighth Peoples Hospital, Qingdao 266121, China)
[ABSTRACT] Objective To investigate the antiviral effect of glycosaminoglycan from scallop skirt (SS-GAG) against herpes simplex virus type 2 (HSV-2) in vitro.
Methods The influence of HSV-2 on the morphology of host cells (Vero cells) and the toxicity of HSV-2 on cells were observed. MTT assay was used to observe the toxicity of SS-GAG on Vero cells and the effect of different concentrations of SS-GAG on HSV-2 in terms of direct inactivation, inhibition of replication activity, and comprehensive effect.
Results SS-GAG had no toxicity to Vero cells within the experimental concentration range. Compared with the virus control group, the SS-GAG treatment groups (50, 100, and 200 mg/L) showed effective protection of Vero cells infected with HSV-2 and significantly improved their viability (F=20.061,39.947;P<0.01), and meanwhile, SS-GAG treatment reduced the cytopathic effect induced by HSV-2 and inhibited virus replication, while SS-GAG had no direct inactivation effect on HSV-2.
Conclusion SS-GAG has the activity of protecting host cells and defending against HSV-2 infection in vitro, suggesting that further studies are needed to investigate its anti-HSV-2 effect.
[KEY WORDS] pectinidae; polysaccharides; herpesvirus 2, human; antiviral agents; vero cells
单纯疱疹病毒2型(HSV-2)属于α疱疹病毒类型,为线性双链DNA病毒,该病毒引起的生殖器疱疹越来越受到关注,严重影响了人类公共卫生健康[1-3]。同时研究表明,HSV-2感染者感染人类免疫缺陷病毒的概率也会大大增加[4]。目前临床上常用的抗 HSV 药物有阿昔洛韦、喷昔洛韦等[5-6],但随着耐药株的出现,寻找具有对抗 HSV 活性的新药物极其重要[7]。近年来,关于海洋多糖的研究及开发利用成为研究热点[8-11]。扇贝裙边糖胺聚糖 (SS-GAG)是从青岛渤海湾栉孔扇贝裙边中提取、纯化得到的酸性黏多糖 (即硫酸多糖),又称为氨基多糖,其红外线光谱图与透明质酸较为接近[12]。海洋多糖具有多种药理活性,包括抗凝血[13-14]、抗粥樣硬化[15-18]、抗病毒[19-21]、增强免疫[22]、抗肿瘤[23]等作用。目前尚未有关于SS-GAG的抗HSV-2作用的文献报道。本实验将首次在细胞水平上探讨SS-GAG对HSV-2的抗病毒作用,以期为临床治疗疱疹提供依据以及为海洋多糖药物的研发提供新的思路。现将结果报告如下。
1材料与方法
1.1实验材料
1.1.1试剂与仪器SS-GAG为青岛大学药学院扇贝多糖课题组采用酶解、醇沉、精制的方法提取分离并干燥的粉末制剂,实验时应用无血清DMEM培养液配制成不同浓度的溶液。细胞生长液为含体积分数0.10胎牛血清(FBS)的高糖DMEM培养液,细胞生长维持液为含体积分数0.02 FBS的高糖DMEM培养液。试剂二甲基噻唑二苯基四唑溴盐(MTT)为Sigma公司产品。DMEM干粉培养基以及FBS为上海生工生物工程股份有限公司产品。ELx 800型酶联免疫检测仪购自美国BioTek公司;TC2323型CO2培養箱购自美国Forma Scientific公司;超净工作台购自苏净集团安泰公司;XDP-1型倒置显微镜购自日本Olympus公司。
1.1.2细胞株及病毒株非洲绿猴肾细胞(Vero细胞)和标准HSV-2病毒,均由青岛大学微生物与病原生物学教研室友情惠赠。病毒在Vero细胞中传代培养,-80 ℃保存。
1.2实验方法
1.2.1病毒毒力测定[24-25]将Vero细胞以每孔2×104个的密度接种于96孔板,于37 ℃、体积分数0.05的CO2培养箱中培养过夜,弃去原培养液,加入梯度稀释的HSV-2病毒液(10-9~10-1),吸附2 h后更换细胞生长维持液继续培养。每天通过倒置显微镜观察细胞病变情况(CPE)。当CPE达50%以上计为病变孔,记录病变程度和孔数,待细胞病变稳定后判定结果。根据Reed-Muench方法计算病毒的半数组织培养感染剂量(TCID50),以其表示病毒毒力。
1.2.2药物对细胞毒性测定将Vero细胞悬液稀释成108/L接种于无菌96孔板,置37 ℃、体积分数0.05的CO2培养箱中培养36 h,弃去原培养液,换为含有不同浓度SS-GAG(50、100、200、400、800、1 600 mg/L)的维持液,每个浓度设6个复孔,另设正常细胞对照组(正常对照组)。置37 ℃、体积分数0.05的CO2培养箱中培养72 h。通过倒置显微镜观察细胞CPE。细胞培养结束前4 h,每孔加入20 μL的MTT,当孔内出现甲瓒结晶时,弃去MTT染液,每孔加入150 μL的二甲基亚砜(DMSO),充分混匀后在酶联仪570 nm波长处测定每孔吸光度(A值),并计算Vero细胞存活率。公式如下:Vero细胞存活率(%)=SS-GAG组平均A值/正常对照组平均A值×100%,以其反映SS-GAG对Vero细胞增殖活性的影响。
1.2.3SS-GAG对HSV-2的直接灭活作用[26]将不同浓度的SS-GAG(50、100、200 mg/L)与100 TCID50的HSV-2病毒液等量混合后,37 ℃作用4 h。将孵育后的混合液加入单层Vero细胞孔中(每孔200 μL),37 ℃吸附2 h,弃上清换为体积分数0.02的DMEM维持液培养72 h。每日在倒置显微镜下观察由病毒引起的CPE,并记录结果。同时设病毒对照组、正常细胞对照组,每组设6个复孔。当病毒对照组细胞病变达到75%以上时,采用MTT方法测定各组细胞A值。判断标准:0细胞病变率以“-”标示;1%~25%细胞病变率以“+”标示;26%~50%细胞病变率以“”标示;51%~75%细胞病变率以“”标示;76%~100%细胞病变率以“”标示。
1.2.4SS-GAG 对HSV-2感染Vero细胞后效应的抑制作用[26]将100 TCID50的HSV-2病毒液接种到单层Vero细胞孔中(每孔100 μL),37 ℃吸附2 h,弃病毒液换含不同浓度SS-GAG(50、100、200 mg/L)的维持液(每孔200 μL),继续培养72 h,每日在倒置显微镜下观察CPE并记录结果。分组同1.2.3。当病毒对照组细胞病变达75%以上时,采用MTT法测定各组细胞A值,并分别计算各组SS-GAG抗病毒有效率(ER)。ER=(SS-GAG组平均A值-病毒对照组平均A值)/病毒对照组的平均A值×100%。
1.2.5SS-GAG对HSV-2的综合作用将100 TCID50的HSV-2病毒液与含不同浓度的SS-GAG(50、100、200 mg/L)维持液等量混合后直接接种到单层Vero细胞孔中(每孔200 μL),37 ℃吸附2 h,弃上清液,加入含有原浓度的SS-GAG的维持液继续培养72 h,每日在倒置显微镜下观察CPE并记录结果。分组同1.2.3。测定方法以及ER计算方法同1.2.4。
1.3统计学处理
采用SPSS软件进行统计学处理。计量资料数据以[AKx-D]±s表示,多组均数间比较采用单因素方差分析,两两比较采用q检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
2结果
2.1病毒毒力测定
按照Reed-Muench方法测得病毒的TCID50为10-4.2/100 μL。实验用病毒浓度为100 TCID50。
2.2药物对细胞毒性测定
结果显示,正常Vero细胞呈梭形,细胞膜完整且边界清晰;经SS-GAG处理过的细胞形态规则,排列紧密有序,无脱落、融合等现象发生,与正常细胞的形态无明显差别。同时MTT检测结果也显示,SS-GAG各浓度组细胞增殖活性与正常对照组差异无显著性 (P>0.05),表明SS-GAG在100~1 600 mg/L浓度范围内对Vero细胞无毒性作用。见表1。
2.3SS-GAG对HSV-2的直接影响
经不同浓度的SS-GAG预先与HSV-2混合后再感染Vero细胞,各组细胞均出现了典型的CPE特征,表现为细胞肿胀、细胞间融合、碎裂等。MTT检测结果显示,不同浓度SS-GAG组细胞增殖活性与病毒对照组差异无显著性(P>0.05)。以上结果提示SS-GAG没有直接灭活HSV-2病毒的活性。见表2。
2.4SS-GAG对HSV-2感染Vero细胞后效应的抑制作用
结果显示,与正常对照组细胞比较,病毒对照组细胞出现了典型的CPE特征,细胞增殖活性明显减弱(q=7.42,P<0.01)。与病毒对照组相比,SS-GAG各组CPE特征明显减弱,细胞活性随着药物浓度增加而增强(F=20.061,P<0.01),药物对病毒的抑制作用有效率达46.8%以上。以上结果提示SS-GAG能明显抑制HSV-2的复制,抗病毒活性呈现剂量依赖性。见表3。
2.5SS-GAG对HSV-2的综合作用
结果显示,與正常对照组细胞比较,病毒对照组细胞出现典型的CPE特征,细胞增殖活性明显低于正常对照组细胞(q=7.38,P<0.01)。与病毒对照组相比较,SS-GAG各组均能有效地保护感染的细胞,使细胞活性增强(F=39.947,P<0.01),而且随着药物浓度的增加,SS-GAG抗病毒有效率逐渐增加。其中浓度为200 mg/L的SS-GAG抗病毒有效率达到51.2%。见表3。
3讨论
HSV病毒为嗜神经性的有包膜双链DNA病毒,分为2个血清型,即HSV-1和HSV-2。HSV-2主要通过性行为传播,多数生殖器疱疹由HSV-2病毒引起。SS-GAG是扇贝多糖课题组人员从青岛渤海湾栉孔扇贝裙边中提取纯化的硫酸多糖成分,其与肝素的理化性质相似[27-28]。课题组前期已经初步对SS-GAG抗HSV-1活性进行了体内外实验,结果表明SS-GAG具有抗HSV-1的活性[22]。本研究是通过建立HSV-2在Vero细胞上的病毒感染模型,采用CPE观察法结合MTT法来评价SS-GAG对HSV-2的抗病毒活性,通过SS-GAG对病毒的直接影响、抑制作用和综合作用等3种方式来初步探讨其作用机制。本文实验结果表明,SS-GAG对HSV-2没有直接杀伤作用,但对HSV-2感染有抑制作用,而且随着药物浓度的增加其抑制作用也增强,因此可推测其抗病毒作用可能与干扰HSV-2病毒复制有关。
病毒在细胞内复制是复杂但又程序化的过程,影响复制循环中任一环节均可能起到抗病毒作用。SS-GAG在多种作用方式下均可发挥不同程度的抗病毒活性[25],可作为多途径、多靶点药物进行开发研究。至于本实验中的SS-GAG通过何种机制阻断病毒感染细胞并抑制病毒的复制,尚有待进一步研究和观察。
[参考文献]
[1]兰晶,杨阳,齐瑞群,等. 单纯疱疹病毒的致病特点及人体抗单纯疱疹病毒免疫[J]. 国际皮肤性病学杂志, 2016,42(6):468-471.
[2]张昊,刘涛,邱源旺,等. HSV-2感染的发病机制及诊疗进展[J]. 中国艾滋病性病, 2021,27(11):1322-1325.
[3]YU X L, HE S D. The interplay between human Herpes simplex virus infection and the apoptosis and necroptosis cell death pathways[J]. Virology Journal, 2016,13:77.
[4]綦鲁博,张保平. 2型单纯疱疹病毒研究进展[J]. 世界最新医学信息文摘, 2018,18(92):28-29,34.
[5]中国医师协会皮肤科医师分会临床诊疗指南委员会. 生殖器疱疹临床诊疗指南(2009)[J]. 中华皮肤科杂志, 2009,42(12):877-878.
[6]樊建勇,赵阳,杨慧兰. 单纯疱疹病毒的潜伏、复发感染与防治[J]. 中国医学文摘(皮肤科学), 2017,34(1):9-17,4.
[7]李娇,彭芳. 抗单纯疱疹病毒中药的研究进展[J]. 医学综述, 2012,18(5):753-755.
[8]张善文,黄洪波,桂春,等. 海洋药物及其研发进展[J]. 中国海洋药物, 2018,37(3):77-92.
[9]曾洋洋,韩章润,杨玫婷,等. 海洋糖类药物研究进展[J]. 中国海洋药物, 2013,32(2):67-75.
[10]向维,姜玉新,李朝品. 海洋贝类多糖的抗病毒作用[J]. 国际流行病学传染病学杂志, 2010,37(1):57-60.
[11]蔡超,于广利. 海洋糖类创新药物研究进展[J]. 生物产业技术, 2018(6):55-61.
[12]李珊,刘赛. 扇贝裙边中糖胺聚糖的气相色谱定性定量分析及红外光谱分析[J]. 中国海洋药物, 2004,23(6):8-11.
[13]LIU X X, HAO J J, SHAN X D, et al. Antithrombotic activities of fucosylated chondroitin sulfates and their depolymerized fragments from two sea cucumbers[J]. Carbohydrate Polymers, 2016,152:343-350.
[14]LI Q Y, CAI C, CHANG Y G, et al. A novel structural fucosylated chondroitin sulfate from Holothuria Mexicana and its effects on growth factors binding and anticoagulation[J]. Carbohydrate Polymers, 2018,181:1160-1168.
[15]黄翠丽,刘赛,于树君,等. 扇贝裙边提取物抗动脉粥样硬化作用及其机理研究[J]. 中国海洋药物, 2002,21(4):11-19.
[16]孙福生,鞠传霞,刘赛. 扇贝裙边糖胺聚糖对U937泡沫细胞形成过程中TNF-α、IL-6和IL-8表达的影响[J]. 中国药科大学学报, 2008,39(6):563-565.
[17]沙丽颖,杨英,殷毅,等. 栉孔扇贝裙边糖胺聚糖对增殖的血管平滑肌细胞c-myc和TNF-α mRNA水平的影响[J]. 中国海洋药物, 2008,27(5):41-45.
[18]鞠传霞,侯琳,丛培阳,等. 扇贝糖胺聚糖对OX-LDL诱导血管内皮细胞氧化应激损伤的抑制作用机制研究[J]. 中国药房, 2015,26(28):3938-3941.
[19]王长云,管华诗. 多糖抗病毒作用研究进展Ⅱ.硫酸多糖抗病毒作用[J]. 生物工程进展, 2000,20(2):3-8.
[20]王长云,管华诗. 多糖抗病毒作用研究进展Ⅰ.多糖抗病毒作用[J]. 生物工程进展, 2000,20(1):17-20.
[21]王姝垚,刘志纯,秦玲,等. 海洋硫酸多糖PAE的结构和抗病毒活性研究[J]. 中国海洋药物, 2019,38(1):17-22.
[22]于囡,韩建建,王海桃,等. 扇贝裙边糖胺聚糖对HSV-Ⅰ感染小鼠保护作用的研究[J]. 海峡药学, 2014,26(11):38-41.
[23]高翔,王悦怡,袁长吉,等. 海参糖胺聚糖的提取及抗肿瘤活性的研究[J]. 食品工业科技, 2008,29(6):117-119,123.
[24]傅继华. 病毒学实用实验技术[M]. 济南:山东科学技术出版社, 2001.
[25]于囡,刘赛,王海桃,等. 扇贝裙边糖胺聚糖體外抗Ⅰ型单纯疱疹病毒实验研究[J]. 中国药理学通报, 2008,24(2):210-213.
[26]候亚林,杜立行,欧柏生,等. 参芪止疱颗粒抗HSV-2的体外实验研究[J]. 陕西中医, 2018,39(1):10-13.
[27]王长云,管华诗,林洪. 海湾扇贝肝素样多糖分离方法的研究[J]. 海洋与湖沼, 1995,26(S1):66-69.
[28]范丹丹. 扇贝裙边糖胺聚糖提取分离与生物活性研究[D]. 大连:大连海洋大学, 2019.
(本文编辑于国艺)