肺胀2号方对COPD体外细胞模型分泌IL-8、MMP-9、TIMP-1及MMP-9/TIMP-1的影响
2022-05-05柯庚申洪春霖洪敏俐黄锦榕苏宝连陈慧暖
柯庚申,洪春霖,洪敏俐,黄锦榕,苏宝连,陈慧暖
(福建中医药大学附属漳州中医院,福建 漳州 363000)
慢性阻塞性肺疾病(COPD)是一种以进行性的、不完全可逆的气流限制为特征的慢性气道疾病,发病率高,且严重影响患者的生命质量[1]。肺胀2 号方是福建中医药大学附属漳州中医院洪敏俐主任所拟定的协定方,主要治疗COPD 稳定期肺肾气阴两虚证,具有补肺滋肾、益气养阴、纳气平喘之功。课题组前期研究显示该方具有抗氧化、改善COPD 评估测试(CAT)评分及中医证素积分、提高患者生活质量等效果[2-4]。本次研究通过香烟烟雾提取物(CSE)刺激人支气管上皮细胞(16HBE)建立体外COPD 模型,探讨肺胀2 号方对16HBE 分泌IL-8、MMP-9、TIMP-1 的影响,探讨肺胀 2 号方治疗COPD 的作用机制。
1 材 料
1.1 细胞株 16HBE(上海中乔新舟生物科技有限公司,货号:ZQ0001)。
1.2 实验药品 肺胀2 号方(漳州片仔癀药业有限公司,批号:201509001,规格:每片0.5 g,每片含生药量1.476 g);地塞米松磷酸钠注射液(广州白云山天心制药股份有限公司,批号:2101191B6,规格:5 mg/mL)。
1.3 主要试剂及仪器 玉溪牌香烟[红塔烟草(集团)有限责任公司];0.25%Trypsin-EDTA(美国Ther‑mo Fisher 公司);磷酸盐缓冲液(PBS)、RPMI-1640细胞培养基、胎牛血清(FBS)、1%青霉素/链霉素均购自美国HyClone 公司;6 孔细胞培养板(无锡耐思生物科技有限公司);细胞培养瓶(美国康宁公司);微孔滤膜(德国默克Millpore有限公司,规格:0.22µm);ELISA 试剂盒(上海酶联生物技术有限公司);生物安全柜(力康生物医疗科技控股有限公司);CO2孵育箱及低温离心机(美国Thermo Fisher 公司);酶标仪(深圳雷杜生命科学股份有限公司)。
2 方 法
2.1 肺胀2 号方溶液制备 参考本课题组前期研究的方法[5]:将肺胀2 号方药片研成粉末,溶解于PBS液中,放入离心机,以1 000 rpm 速度离心3 min,弃去无法溶解的药片残渣,取上清液,加PBS 使肺胀2 号方溶液浓度为5 mg/mL(相当于生药质量14.76 mg/mL),经微孔滤膜过滤后放置于-80℃冰箱冻存备用。
2.2 完全培养基制备 取RPMI-1640 细胞培养基500 mL,加入FBS 50 mL、1%青霉素/链霉素5.5 mL混合而成。
2.3 CSE 原液制备 参照 MARCH 等的方法[6]制备:用1 支去过滤嘴香烟,点燃后经负压吸引装置连续抽吸,吸入的烟雾导入25 mL 完全培养基中,密闭摇匀,用 5%NaHCO3调整 pH 至 7.4,经微孔滤膜过滤,得到的悬液即为100%CSE 原液。
2.4 16HBE 细胞传代培养 将16HBE 细胞放置于完全培养基中,在37℃、5%CO2培养箱中静置培养,每3 d 更换一次完全培养基。当细胞贴壁生长至80%左右的汇合度时,弃去培养液,加入0.25%Trypsin-EDTA 于培养箱中消化3 min 后,加入完全培养基终止消化,在1 000 rpm、4℃的离心机中离心3 min,弃上清液,加入适量完全培养基,并予加液枪反复轻柔吹打,制成16HBE 细胞悬液。
2.5 CSE 适合浓度筛选 将16HBE 细胞悬液以1×105/孔接入6 孔细胞培养板培养,每孔2.5 mL,当细胞贴壁生长至60%左右的汇合度时,吸掉旧的培养基,分别加入 2.5%、5%、10%、20%、50%CSE 2.5 mL,放入37℃、5%CO2培养箱中孵育 24 h,MTT法检测细胞存活率筛选合适的烟雾造模浓度。由表 1 可知:2.5%CSE 刺激的 16HBE 细胞存活率为(81.33±2.02)%,是各浓度最高,故选取2.5%CSE为适合的造模浓度。
表1 不同浓度 CSE 干预后 16HBE 细胞存活率情况()
表1 不同浓度 CSE 干预后 16HBE 细胞存活率情况()
注:与空白组比较,1)P<0.01。
细胞存活率/%94.33±0.88 81.33±2.021)32.67±1.201)12.33±1.451)4.00±0.581)1.33±0.331)CSE浓度0%2.5%5%10%20%50%
2.6 16HBE 分组培养 确定合适的烟雾造模浓度后,参照“2.4”步骤重新制成16HBE 细胞悬液,将16HBE 细胞悬液分为 6组,分别为空白组、CSE组、地塞米松组及肺胀2 号方低、中、高剂量组,每组设计 3 个复孔,每孔 2.5 mL,以1×105/孔接入 6 孔细胞培养板于37℃、5%CO2培养箱中孵育,当细胞贴壁生长至60%左右的汇合度时,吸掉旧的培养基后加入药物干预。加药方法:①空白组,加入完全培养基 2.5 mL;② CSE组,取 5 mL 100%CSE 加入完全培养基15 mL,稀释成2.5%CSE,每孔加入2.5%CSE 2.5 mL;③地塞米松组,取5 µL 地塞米松磷酸钠注射液加入25 mL 2.5%CSE中,得到终浓度为2.5%CSE、0.001 mg/mL 地塞米松磷酸钠混合液,每孔加入混合液2.5mL;④ 肺胀2 号方低、中、高剂量组,采用倍比稀释法,用完全培养基将100%CSE 及5 mg/mL肺胀2号方溶液分别稀释成浓度为5%CSE 及0.125、0.25、0.5 mg/mL 肺胀 2 号方稀释液,再将 5%CSE 分别和等体积的 0.125、0.25、0.5mg/mL 肺胀 2 号方稀释液混合,即得到终浓度为2.5%CSE 和0.0625、0.125、0.25 mg/mL 肺胀 2 号方混合液,每孔分别加入上述混合液2.5 mL。加药后继续于CO2孵育箱中静置培养24 h,收集上清液备用。
2.7 细胞形态观察及细胞存活率检测 各组收集上清液后,采用光学显微镜下观察剩余贴壁细胞的细胞形态并拍照,再采用MTT 法检测细胞存活率。
2.8 IL-8、MMP-9、TIMP-1 水平及 MMP-9/TIMP-1测定 采用双抗体夹心ELISA 法检测上清液中IL-8、MMP-9、TIMP-1 水平。
2.9 统计学方法 采用SPSS 22.0 软件进行数据分析。计量资料属正态分布以()表示,2组比较采用独立样本t检验,多组比较采用单因素方差分析检验。
3 结 果
3.1 各组光镜下细胞形态比较 见图1。空白组细胞呈不规则多边形,连接紧密;CSE组细胞部分形态变圆,间隙变大,细胞较稀疏,部分细胞皱缩成团,考虑细胞生长受抑制;地塞米松组与各剂量组细胞生长受抑制情况均较前改善,有较多细胞恢复到多边形形态,细胞存活率明显升高,特别是中剂量组,细胞形态与空白组差异不大。见图1。
图1 各组光镜下细胞形态比较(×100)
3.2 各组细胞存活率比较 见表2。
表2 各组细胞存活率比较()
表2 各组细胞存活率比较()
注:与空白组比较,1)P<0.01;与CSE组比较,2)P<0.01;与地塞米松组比较,3)P<0.05。
细胞存活率/%93.67±0.88 80.67±0.881)87.00±1.531)2)88.33±0.881)2)90.67±0.881)2)3)88.00±0.581)2)组别空 白组CSE组地塞米松组低剂量组中剂量组高剂量组
3.3 各组上清液IL-8、MMP-9、TIMP-1水平及MMP-9/TIMP-1 比较 见表3。
表3 各组上清液 IL-8、MMP-9、TIMP-1 水平及 MMP-9/TIMP-1 比较()
表3 各组上清液 IL-8、MMP-9、TIMP-1 水平及 MMP-9/TIMP-1 比较()
注:与空白组比较,1)P<0.01;与CSE组比较,2)P<0.01,3)P<0.05。
MMP-9/TIMP-1 8.73±0.88 13.80±0.731)11.06±1.59 8.61±0.942)10.08±0.363)9.46±0.702)组别空 白组CSE组地塞米松组低剂量组中剂量组高剂量组IL-8/(pg/mL)161.04±5.66 248.65±18.891)191.19±26.633)181.56±19.993)168.10±6.902)182.85±8.753)MMP-9/(ng/mL)25.00±0.41 30.03±1.221)27.48±0.73 25.39±0.953)24.66±0.752)25.11±1.882)TIMP-1/(µg/L)2.92±0.27 2.18±0.04 2.56±0.28 3.00±0.25 2.45±0.07 2.68±0.27
4 讨 论
吸烟是COPD 最重要的环境发病因素。相关研究[7]表明:CSE 中含有的数千种化学物质,除可直接对气道上皮细胞和肺泡细胞产生损伤之外,还可激活多种信号通路,趋化大量炎症因子释放,引起蛋白酶和抗蛋白酶失衡,进而导致肺实质破坏、小气道狭窄和气道重构,最终造成持续气流受限。气道上皮细胞是呼吸道最先遭受外界有害物质刺激的地方,也是各种呼吸道疾病的病理基础起始环节。因此,本研究采用烟雾刺激16HBE 细胞进行造模并进行后续相关研究。目前,国内外关于COPD 体外细胞模型的研究较少,宋雪慧等[8]采用2%~30%不同浓度的CSE 进行造模,最后结果显示CSE 浓度大于12%时细胞存活率过低,适宜造模浓度为2%~12%左右,并将细胞存活率约为70%时的4%CSE 浓度作为造模适合浓度。侯红平等[9]研究表明CSE 刺激肺泡上皮细胞的适合浓度为10%。本研究CSE 适合浓度筛选结果显示:随着CSE 浓度升高,其对16HBE 细胞的损害越大,5%以上CSE 刺激后细胞存活率太低,而2.5%CSE 刺激的16HBE 细胞存活率在80%以上,且原本连接紧密的细胞间隙变大,形态变圆,细胞较稀疏,说明烟草烟雾具有显著的细胞毒性,因此,认为COPD 体外细胞模型造模成功。
慢性气道炎症贯穿COPD 发生、发展的全过程,各种各样的细胞因子如促炎细胞因子、生长因子、趋化因子、淋巴因子等都是炎症反应的参与者[10]。IL-8 是炎症反应过程中的强效趋化因子,是引发、维持并加重气道炎症的一种重要的细胞因子[11]。它能够趋化并激活炎症细胞特别是中性粒细胞向炎症部位聚集,抑制中性粒细胞降解,加强其吞噬作用及溶酶体酶活性,促使炎症细胞释放多种炎症因子及蛋白酶,进而引发气道、肺组织损伤等一系列病理改变[12]。气道重构是COPD 发生、发展的另一重要机制,主要表现在肺实质的肺气肿和小气道阻塞,而呼吸道细胞外基质(ECM)的降解沉积失衡在气道重构的过程中发挥了重要作用。MMP-9 及其天然抑制物TIMP-1 是调节ECM 稳定的主要酶类。正常组织MMP-9 表达很少,当受到刺激时,MMP-9 在多种肺实质细胞如支气管上皮细胞、成纤维细胞、内皮细胞、平滑肌细胞等可广泛表达,降解几乎所有的ECM,并趋化炎性细胞,对肺组织产生严重的破坏[13]。TIMP-1 是 MMP-9 的天然抑制物,可特异性抑制MMP-9 的活性。两者比例失衡,无论是升高或者降低均可导致细胞外基质合成和降解失衡,引起气道重塑[14]。
肺胀2 号方具有补肺滋肾、益气养阴、化痰祛瘀之功,前期研究已证实其在临床应用中的良好疗效[2-4],本研究发现:CSE组上清液 IL-8、MMP-9 水平明显升高,TIMP-1 水平降低,MMP-9/TIMP-1 较空白组明显升高,表明16HBE 细胞群处于蛋白酶-抗蛋白酶失衡及炎症反应状态中,与COPD 的病理状态类似。药物干预后,地塞米松组及各剂量组均可有效改善16HBE 细胞形态,提高细胞存活率,降低IL-8水平;但同地塞米松组比较,各剂量组MMP-9 水平也得到有效降低,MMP-9/TIMP-1 降至接近空白组水平,提示各剂量组可以多途径、更有效地改善COPD 体外细胞模型蛋白酶-抗蛋白酶失衡及炎症反应的病理状态。其中,中剂量组IL-8、MMP-9 水平最低,细胞形态及细胞存活率最佳,提示中剂量浓度可能是肺胀2 号方最适宜的治疗浓度。
综上,肺胀2 号方治疗COPD 机制可能与下调IL-8 分泌、抑制MMP-9 过度表达、改善MMP-9/TIMP-1 平衡,从而降低COPD 慢性气道炎症,改善ECM 降解、沉积失衡,减轻气道重构有关。