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TAZ、DKK-1在激素性骨质疏松患者血清中的表达及意义

2020-10-15雷长喜王金虎万坚波

广东医学 2020年19期
关键词:明显降低髋部骨密度

雷长喜, 王金虎, 万坚波

鹰潭市人民医院 1核医学科, 2检验科(江西鹰潭 335000)

激素性骨质疏松(glucocorticoid induced osteoporosis,GIOP)属于继发性骨质疏松,是一种主要由糖皮质激素(glucocorticoids,GCs)引起的,以骨量减少、骨的微细结构破坏、骨强度下降、骨脆性增加为特征的,容易发生骨折的代谢性骨病,其发病率在骨质疏松症中已上升至第3位,仅次于绝经后骨质疏松及老年性骨质疏松[1-2],对患者的生命健康造成严重威胁。转录联合激活因子(transcriptional coactivator with PDZ-binding motif,TAZ)可与通路内转录效应因子YAP(yesassociated protein)共同参与Hippo信号通路,感知并响应生物力学信号过程,参与骨组织细胞增殖、分化、代谢等调控过程[3]。Dickkopf-1蛋白(DKK-1)属于富含半胱氨酸蛋白家族分泌蛋白,能结合低密度脂蛋白受体相关蛋白5/6参与抑制Wnt信号转导通路,其含量与骨密度呈负相关,在骨相关疾病的新骨形成过程中发挥着关键作用[4-5]。虽然TAZ、DKK-1在骨的新陈代谢方面有很多研究,但在GIOP患者体内表达、调控情况的研究相对较少。因此本研究将通过检测GIOP患者血清中TAZ、DKK-1表达水平,探讨TAZ、DKK-1与GIOP发病中的作用及临床意义。

1 资料与方法

1.1 一般资料 选取2017年8月至2019年5月在本院收治的GIOP患者95例,根据30 d后骨折与否将其分为骨质疏松组(46例)和骨折组(49例)。其中,骨质疏松组:男24例,女22例;年龄27~85岁,平均(56.32±9.45)岁;体质指数23~28 kg/m2,平均(25.04±2.63)kg/m2。骨折组:男25例,女24例;年龄29~87岁,平均(58.53±10.04)岁;体质指数为22~29 kg/m2,平均(25.94±3.66)kg/m2。同期健康体检者(对照组)50例,男26例,女24例;年龄30~85岁,平均(57.59±9.97)岁;体质指数为23~28 kg/m2,平均(25.64±2.42)kg/m2。3组性别、年龄、体质指数差异均无统计学意义(P>0.05),具有可比性。

GIOP纳入标准:(1)符合国内诊断骨质疏松的标准[6],即骨密度t值<-2.0SD;(2)激素治疗引发骨质疏松者;(3)经本院伦理委员会审核批准;(4)患者及其家属知情并签署纸质版知情同意书。

排除标准:(1)慢性肝肾病、心脏疾病、全身身免疫性疾病、感染性疾病等者;(2)降钙素、雌激素等影响骨代谢或影响TAZ、DKK-1水平的药物者;(3)原发性骨质疏松者;(4)依从性差、不能按时复诊者。

1.2 试剂与仪器 人TAZ、DKK-1酶联免疫(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)检测试剂盒(货号分别为:JK-SJ-36707、JK-EA01830)购自上海晶抗生物工程有限公司;双能X线骨密度测定仪(型号:OSTEOCORE2)购自法国迈迪公司;罗氏电化学发光分析仪及其试剂、校准品、质控品(型号:cobas e 601)购自瑞士罗氏公司。

1.3 血清中TAZ、DKK-1表达水平检测 清晨抽取GIOP患者及健康体检者空腹外周静脉血10 mL,4℃低温条件下3 000 r/min离心10 min,吸取上层血清分成两份置于无菌Eppendorf管中,一份用于检测骨代谢标志物,另一份用于检测目的因子,-70℃低温冰箱中冻存备用。

从-70℃冰箱中取出样品,ELISA法检测患者血清中TAZ、DKK-1的表达水平,试验方法均按照相应试剂盒说明书进行。使用酶标仪于450 nm波长处测定吸光度值,根据标准液浓度与标准液吸光度结果绘制出标准曲线,并得出换算方程,计算TAZ、DKK-1的表达水平。

1.4 骨密度和血清中骨代谢标志物表达水平检测 使用双能X线骨密度测定仪检测受检者左髋部和腰椎的骨密度。从-70℃冰箱中取出样品,使用罗氏Cobas e 411电化学发光分析仪检测血清中总Ⅰ型胶原氨基端前肽(total procollagen type 1 amino-terminal propeptide,tP1NP)、N端骨钙素(N-MID osteocalcin,N-MID)、β-胶原降解产物(cross-linked C-terminal telopeptide of type Ⅰ collagen,β-CTX)、总维生素D(vitamin D3,Vit-D)和甲状旁腺激素(parathyroid hormone,PTH)这5项骨标志物指标。

2 结果

2.1 3组血清中TAZ、DKK-1水平 3组TAZ、DKK-1水平差异均有统计学意义(P<0.05)。与对照组相比,骨质疏松组、骨折组患者血清中TAZ水平明显降低(P<0.05),DKK-1水平明显升高(P<0.05);与骨质疏松组相比,骨折组患者血清中TAZ水平明显降低(P<0.05),DKK-1水平明显升高(P<0.05)。见表1。

项目例数TAZ(pg/mL)DKK-1(ng/mL)对照组5076.36±15.461.32±0.12骨质疏松组4647.72±13.27*1.61±0.18*骨折组4937.39±11.89*△1.79±0.24*△F值108.37480.245P值0.0000.000

注:*与对照组比较P<0.05;△与骨质疏松组比较P<0.05

2.2 3组骨密度比较 3组左髋部骨密度、腰椎骨密度差异均有统计学意义(P<0.05)。与对照组相比,骨质疏松组、骨折组患者左髋部骨密度、腰椎骨密度明显降低(P<0.05);与骨质疏松组相比,骨折组患者左髋部骨密度、腰椎骨密度明显降低(P<0.05)。见表2。

表23组骨密度比较

项目例数左髋部骨密度腰椎骨密度对照组500.75±0.150.99±0.21骨质疏松组460.67±0.12*0.76±0.18*骨折组490.61±0.10*△0.62±0.17*△F值15.55449.028P值0.0000.000

注:*与对照组比较P<0.05;△与骨质疏松组比较P<0.05

2.3 3组血清中骨代谢标志物水平 3组血清中tP1NP、N-MID、β-CTX、Vit-D和PTH水平差异均有统计学意义(P<0.05)。与对照组相比,骨质疏松组、骨折组患者血清中tP1NP、N-MID、β-CTX、PTH水平明显升高(P<0.05),Vit-D水平明显降低(P<0.05);与骨质疏松组相比,骨折组患者血清中tP1NP、N-MID、β-CTX、PTH水平明显升高(P<0.05),Vit-D水平明显降低(P<0.05)。见表3。

项目例数tP1NP(μg/L)N-MID(μg/L)β-CTX(ng/mL)Vit-D(nmol/L)PTH(pmol/L)对照组5046.82±14.409.34±2.530.46±0.1271.26±22.474.35±1.16骨质疏松组4651.28±14.62*16.13±5.36*0.60±0.14*61.81±18.23*5.79±1.48*骨折组4960.46±18.31*△28.79±8.11*△0.72±0.14*△47.15±15.64*△6.61±1.85*△F值13.261143.30747.09020.12427.997P值0.0000.0000.0000.0000.000

注:*与对照组比较P<0.05;△与骨质疏松组比较P<0.05

2.4 GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平与骨密度的相关性分析 相关性分析结果显示,GIOP患者血清中TAZ水平与左髋部骨密度、腰椎骨密度均呈明显正相关(P<0.05),DKK-1水平与左髋部骨密度、腰椎骨密度均呈明显负相关(P<0.05)。见表4。

表4 GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平与骨密度的相关性分析

2.5 GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平与骨代谢标志物水平的相关性分析 相关性分析结果显示,GIOP患者血清中TAZ水平与tP1NP、N-MID、β-CTX水平均呈明显负相关(P<0.05),与Vit-D水平呈明显正相关(P<0.05),与PTH水平相关性不明显(P>0.05);DKK-1水平与tP1NP、β-CTX、PTH水平均呈明显正相关(P<0.05),与N-MID水平相关性不明显(P>0.05),与Vit-D水平呈明显负相关(P<0.05)。见表5。

表5 GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平与骨代谢标志物水平的相关性分析

2.6 GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平预测骨折的效能分析 GIOP预测是否发展为骨折,血清中TAZ水平的ROC曲线下面积为0.746(95%CI:0.647~0.845),截断值为38.45 pg/mL,敏感度为57.1%,特异度为87.0%;血清中DKK-1水平的ROC曲线下面积为0.715(95%CI:0.611~0.819),截断值为1.78 ng/mL,敏感度为51.0%,特异度为89.1%;两者联合预测曲线下面积为0.826(95%CI:0.741~0.910),敏感度为65.3%,特异度为87.0%。见图1。

图1 血清中TAZ、DKK-1水平的ROC曲线分析

3 讨论

继发性骨质疏松症是由于药物或疾病等原因导致的骨量减少、骨脆性增加、骨微结构破坏的代谢性疾病[7]。临床上GCs应用非常广泛,在呼吸系统、自身免疫性、血液系统和肾脏等疾病中均有应用,据报道美国人群长期服用GCs率可达1%,大剂量GCs长期使用会引发不良反应,GIOP是其最严重的不良反应之一,使用者的骨折发生率可达30%~50%[8]。研究表明,GCs无最小安全剂量,但骨质疏松的风险会随剂量的增大而增大,对椎体等松皮骨的影响远大于皮质骨,因而椎体骨折的GIOP患者更加常见[9-10]。虽然GCs对骨量的影响可逆,但GIOP患者一旦骨折,则骨量无法恢复正常[11]。所以,研究GIOP患者对骨折的预后十分重要。

TAZ是Hippo通路下游靶基因,在成骨细胞中促进骨形成并抑制骨吸收[12];在软骨细胞中下调软骨细胞增殖活性,促进软骨细胞成熟分化[13];脱磷酸化后通过促进骨髓基质干细胞分化成成骨细胞,从而调节成骨特异基因骨钙素的表达,并激活成骨细胞分化过程中的重要通路Wnt/β-catenin通路等[14],参与骨组织细胞的增殖、分化和代谢等过程。本研究结果显示,与对照组相比,骨质疏松组、骨折组患者血清中TAZ、Vit-D水平和左髋部、腰椎骨密度明显降低,tP1NP、N-MID、β-CTX、PTH水平均明显升高;与骨质疏松组相比,骨折组患者血清中TAZ、Vit-D水平和左髋部、腰椎骨密度明显降低,tP1NP、N-MID、β-CTX、PTH水平均明显升高。这表明随着疾病的发生及加重,骨密度降低,骨代谢水平均异常变化严重,GIOP发生率增加,且GIOP患者骨量减少的原因可能与TAZ水平较低有关。进一步研究发现,GIOP患者血清液中TAZ水平与左髋部骨密度、腰椎骨密度、Vit-D水平均明显正相关,与tP1NP、N-MID、β-CTX水平均明显负相关。这表明TAZ水平与骨密度、骨代谢标志物有紧密联系,并进一步验证了TAZ可能参与骨组织细胞的代谢过程。预后的ROC曲线下面积为0.746,截断值为38.45 pg/mL,敏感度为57.1%,特异度为87.0%。这提示TAZ水平在预测GIOP患者是否发生骨折方面具有一定价值。

DKK-1是Wnt信号转导通路的抑制剂,通过与Wnt蛋白的共受体LRP5/6结合,减少细胞膜上的LRP5/6,阻断Wnt信号向细胞内部的传递,从而改变破骨细胞和成骨细胞间的平衡,导致骨侵蚀,并抑制骨髓基质细胞分化为成骨细胞,及骨折后的修复和骨基质的矿化过程[15-16]。本研究结果显示,与对照组相比,骨质疏松组、骨折组患者血清中DKK-1明显上调;与骨质疏松组相比,骨折组患者血清中DKK-1水平明显上调;DKK-1水平与左髋部骨密度、腰椎骨密度、Vit-D水平均明显负相关,与tP1NP、β-CTX、PTH水平均明显正相关;预后的ROC曲线下面积为0.715,截断值为1.78 ng/mL,敏感度为51.0%,特异度为89.1%。这表明血清中DKK-1水平上调可能是GIOP发生的一个途径,与骨密度、骨代谢标志物相关性明显,对GIOP预后有较好的特异性。进一步研究结果显示,GIOP患者血清中TAZ、DKK-1水平联合预测曲线下面积为0.826,敏感度为65.3%,特异度为87.0%。提示与单个因子预测GIOP发展相比,两者联合预测能在保证特异性变化不大的基础上,大幅度提高曲线下面积和敏感度,对预后有更高的诊断价值。

综上所述,GIOP患者血清中TAZ水平表达明显下调,DKK-1水平表达明显上调,与GIOP的发展程度密切相关,且与骨密度、骨代谢标志物关系密切,对GIOP预后具有重要意义。但本研究未能结合患者激素治疗的时间一起分析。

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