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3,5-二硝基水杨酸法测定蔓菁中还原糖和总糖含量*

2020-05-21高文军李卫红王喜明乔丽芳

中国药业 2020年9期
关键词:总糖蒸馏水光度

高文军,李卫红,王喜明,乔丽芳

(山西省医药与生命科学研究院,山西 太原 030006)

蔓菁Brassica rapaL. 为十字花科芸薹属植物蔓菁的根,具有开胃消食、下气宽中、止咳化痰、利湿解毒、温和脾胃之功效[1]。其根富含多种糖类[2-3]、有机酸、甾体、三萜、生物碱[4]等化合物,以及核黄素、烟酸、维生素C及钙、磷、铁[5]等无机元素,具有抗缺氧、提高免疫力[6]、抗辐射、滋补等功效。蔓菁在新疆、西藏、四川、陕西、山西等地多有种植。《食疗本草》《本草纲目》《千金方》《本草从新》《名医别录》《药物宝库》等古代文献均有记载,其中《本草纲目》有“辛、苦、平,无毒,可升可降,能汗能吐,能下能利小便,又能明目解毒,其效甚伟”的描述。蔓菁的藏药名为“妞玛”,具有解毒、滋补功效,主治各种中毒症、“龙”病、身体虚弱等;维吾尔族名为“恰玛古”,是维吾尔族人喜爱并有较长历史的药食同源之品,且以藏药、维药的形式收载于卫生部药品标准中[7]。山西晋南地区出产的蔓菁应用广泛,在当地已有上百年的食用历史,其形似人参,在当地有“小人参”之称。对其物质基础的研究有助于进一步开发利用该产品,为当地蔓菁资源的利用提供依据。目前,仅对晋南蔓菁化学成分分析及蛋白质含量测定有报道[8],此外未见其他文献对晋南蔓菁有研究。晋南蔓菁多糖含量较多,而植物多糖具有免疫调节、抗疲劳、抗氧化、降血糖等作用[9]。为此,本研究中建立了测定晋南蔓菁中糖含量的方法,为蔓菁的产品开发提供参考。现报道如下。

1 仪器与试药

1.1 仪器

Biomate 3S 型紫外可见分光光度计(Thermo Fisher公司);AUW220D 型电子天平(Shimadzu 公司,精度为十万分之一);WB-4 型恒温水浴锅(常州峥嵘仪器有限公司);SB-500DTY 型超声波多频清洗机(宁波新芝生物科技有限公司);XF-100 型粉碎机(江苏杰瑞尔电器有限公司);Vortex-2 型涡旋混匀仪(上海沪析实业有限公司)。

1.2 试药

蔓菁(采自山西运城,批号分别为20181220,20181230,20190105);D-无水葡萄糖(中国食品药品检定研究院,批号为110833-201205,含量不低于99.5%);盐酸(国药集团化学试剂有限公司),3,5-二硝基水杨酸(上海科丰化学试剂有限公司),苯酚(天津市申泰化学试剂有限公司),均为分析纯;DNS 试剂(将6.9 g 结晶重蒸馏酚溶于15.2 mL 10%氢氧化钠溶液中,稀释至69 mL 后加入6.9 g 亚硫酸氢钠,作为A 液;将255 g 酒石酸钾钠加入300 mL 10%氢氧化钠溶液中,再加入880 mL 1%3,5-二硝基水杨酸溶液,作为B 液;将A液、B 液混合,得黄色溶液,贮于棕色瓶中备用,常温下放置1 周后使用[10]);其他试剂均为分析纯,水为纯净水。

2 方法与结果

2.1 溶液制备

对照品贮备溶液:精密称取D-无水葡萄糖对照品8.53 mg,用水溶解并定容至10 mL 容量瓶中,摇匀,作为对照品贮备溶液(质量浓度为0.849 mg/mL)。

还原糖供试品溶液:取样品粉末(过20 目筛)约0.1 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入蒸馏水25 mL,密塞,称定质量,超声处理20 min,取出,放至室温,再称定质量,补足减失质量,摇匀,滤过,即得。

总糖供试品溶液:取样品粉末(过20 目筛)约0.1 g,精密称定,置具塞刻度大试管中,加6 mol/L 盐酸10 mL,沸水浴水解10 min,取出,流水冷却至室温,用40%氢氧化钠溶液调至中性,加蒸馏水至25 mL,摇匀,过滤,精密移取滤液1 mL 置5 mL 容量瓶中,加蒸馏水定容至刻度,摇匀,即得。

2.2 样品含量测定方法

精密量取以上还原糖供试品溶液、总糖供试品溶液各2 mL,置25 mL 具塞刻度大试管中,空白对照组加蒸馏水至2 mL,各加入2 mL DNS 试剂,摇匀,90 ℃水浴显色6 min,取出,流水冷却至室温,加水至25 mL,摇匀,于540 nm 波长处检测吸光度。

2.3 检测条件确定

检测波长:采用DNS 法测定时波长的选择方法不一,但多集中在400 ~800 nm[11-13]。考虑到显色剂、紫外分光光度计相关因素的影响,本研究中对DNS 法测定还原糖含量的最佳波长进行了筛选,在400 ~800 nm 波长范围内对试验样品进行了扫描。精密量取稀释的对照品贮备溶液和蒸馏水各2.0 mL,分别置25 mL 具塞试管中,各加入2 mL DNS 试剂,摇匀,90 ℃水浴加热6 min,迅速冷却,加水定容至25 mL,分别于400 ~800 nm 波长范围内对葡萄糖显色液(以蒸馏水为空白对照)、DNS试剂(以蒸馏水为空白对照)、葡萄糖显色液(以DNS 试剂为空白对照),确定检测波长。结果见图1。可见,葡萄糖显色液(以DNS 试剂为空白对照)曲线最大吸收峰处的波长为490 nm,但在此波长下DNS 也具有一定的吸光度,选择490 nm 波长对样品的测定干扰较大。由另外2 条曲线可见,DNS 试剂以水为空白对照时,在低波长处自身的吸收较明显,但随着波长的增大吸收越来越小,当波长不短于540 nm 时,葡萄糖显色液(以DNS 试剂为空白对照)曲线和葡萄糖显色液(以蒸馏水为空白对照)曲线近乎重合。可见,当波长不短于540 nm 时,DNS 试剂自身的吸收对葡萄糖显色液的干扰可忽略,故将540 nm 作为检测波长。

图1 葡萄糖溶液吸收光谱图

显色剂用量:分别精密量取2 mL 还原糖供试品溶液,置编号为1 ~6 号的25 mL 具塞试管中,分别加入0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 mL DNS 试剂,沸水浴中加热10 min,迅速冷却,用蒸馏水定容至25 mL,在540 nm波长下测定吸光度。结果见图2 A。可见,当DNS 试剂用量为2mL 时,用量继续增加,吸光度浮动较小。为了减小DNS 试剂对吸光度测定的影响,用量不应小于2.0 mL,故本试验中DNS 试剂用量选择2.0 mL。

显色时间:分别精密量取2 mL 还原糖供试品溶液,置编号为1 ~5 号的25 mL 具塞试管中,分别加入2.0 mL DNS 试剂,沸水浴分别加热4,6,8,10,12 min,迅速冷却,用蒸馏水定容至25 mL,在540 nm 波长下测定吸光度。结果见图2 B。可见,沸水浴显色4,6,8,10,12 min 时的吸光度变化不明显,较稳定;当显色时间长于4 min 时,显色时间对于试验的影响不明显。考虑到4 min 时间过于短暂,显色时间过短操作较局促,故本试验中最终选择6 min 为显色时间。

显色温度:分别精密量取2 mL 还原糖供试品溶液5 份,置编号为1 ~5 号的25 mL 具塞试管中,分别加入2.0 mL DNS 试剂,分别在60,70,80,90,100 ℃水浴中加热6 min,迅速冷却,用蒸馏水定容至25 mL,在540 nm 波长下测定吸光度。结果见图2 C。可见,显色温度达90 ℃时,结果趋于稳定,故本试验中选择90 ℃为显色温度。

总糖水解时间:分别取蔓菁粉末(过20 目筛)6 份,每份约0.1 g,精密称定,置编号为1 ~5 号的具塞刻度大试管中,加6 mol / L 盐酸10 mL,分别沸水浴水解5,10,20,30,40 min,取出,流水冷却至室温,用40%氢氧化钠溶液调至中性,加水至25 mL,摇匀,过滤,精密量取滤液1 mL,置5 mL 容量瓶中,加水定容至刻度,摇匀,即得总糖供试品溶液,按拟订检测方法测定。结果见图2 D。可见,水解时间为10 min 时吸光度最高,10 min 后吸光度开始下降,趋势图同文献[14]报道一致,猜测可能水解液又发生了新的反应,故本试验中选择10 min 为总糖的水解时间。

2.4 方法学考察

标准曲线绘制:分别精密吸取对照品贮备溶液0.25,0.50,1.00,2.00,3.00 mL,置5 mL 容量瓶中,蒸馏水定容至刻度,摇匀,即得系列质量浓度溶液。精密量取对照品溶液2 mL,置具塞刻度大试管中,加入2 mL DNS 试剂,摇匀,90 ℃水浴显色6 min,取出,流水冷却至室温,加水至25 mL,摇匀,在540 nm 波长处检测吸光度。以质量浓度(C,mg/mL)为横坐标、吸光度(A)为纵坐标绘制标准曲线,得回归方程A=1.112 7C+0.019 1,r=0.998 9(n=5)。结果表明,葡萄糖质量浓度在0.042 45 ~0.509 4 mg/mL 范围内与吸光度线性关系良好。

图2 检测条件考察结果

精密度试验:分别取蔓菁原料的还原糖、总糖供试样品溶液,按样品测试方法连续测定6 次,记录吸光度。结果还原糖的吸光度分别为0.300 4,0.300 4,0.300 4,0.300 5,0.300 5,0.300 5,总糖的吸光度分别为0405 6,0.405 7,0.405 3,0.405 2,0.405 6,0.406 1,还原糖和总糖的RSD分别为0.02%和0.08%(n =6),表明仪器精密度良好。

稳定性试验:分别取蔓菁原料的还原糖、总糖供试样品溶液,按样品测定方法测定,显色反应完成后,每隔10 min 测定1 次。结果见表1,表明样品在50 min 内稳定性良好。

重复性试验:分别制备6 份蔓菁原料的还原糖、总糖供试品溶液,按样品测试方法测定,记录吸光度,并计算含量。结果还原糖平均含量为6.29% 、RSD为1.13% (n =6),总 糖 平 均 含量 为44.51% 、RSD为2.06%(n =6),表明方法重复性良好。

表1 稳定性试验结果( n =6)

加样回收试验:分别称取6 份还原糖、总糖蔓菁样品,每份约0.05 g,精密称定,分别准确加入无水葡萄糖对照品适量,依法制备供试品溶液,按拟订样品测试方法测定,记录吸光度,并计算含量。结果见表2。

表2 加样回收试验结果(n =6)

2.5 样品含量测定

取3 批次样品,按拟订样品测定方法测定还原糖和总糖含量,根据葡萄糖标准曲线,分别计算蔓菁样品中还原糖和总糖含量。结果见表3。可见,晋南蔓菁还原糖和总糖的百分含量分别为5.86% ~6.93%,44.65% ~46.50%,还原糖和总糖含量均较高。由于糖类成分在晋南蔓菁中占比较高,不同的糖对人体有重要的生理作用,为下一步研究糖的组成和活性奠定了基础。

表3 3 批样品含量测定结果(%)

3 讨论

测定样品中糖的含量经常采用的方法有苯酚-硫酸法[15]、蒽酮-硫酸法[16]、3,5-二硝基水杨酸(DNS)法[17],但前2 种方法用的硫酸腐蚀性较强,会造成一定的安全隐患。另外,前2 种方法不能对样品中单糖进行测定,有一定局限性。DNS 法是半微量定糖法[18],该方法操作简单、便捷、杂质干扰较少,便于批量测定,是一种常用方法。该方法的原理是在碱性条件下,还原糖将3,5-二硝基水杨酸中的硝基还原成氨基,生成橘红色化合物,在一定范围内,还原糖含量与颜色成正比。本研究中同时考察了DNS 试剂用量、显色温度和反应时间,保证了反应的可靠性。经方法学考察,DNS 法重复性好、操作简便、快速、准确、灵敏,可用于测定晋南蔓菁中多糖的含量。

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