三碘甲腺原氨酸对缺氧/复氧致乳小鼠心室肌细胞钙离子通道异常的影响及其信号通路机制
2019-11-22廖小婷
刘 磊 曾 彬 廖小婷
武汉大学人民医院心内科 武汉大学心血管病研究所 心血管病湖北省重点实验室,湖北武汉 430060
三碘甲腺原氨酸(T3)是甲状腺分泌的主要活性物质之一,T3已经证明可以改善心肌收缩功能,保护受损后心功能[1-2]。PI3K/Akt 信号通路参与心肌缺血再灌注损伤,且激活这一通道能减少缺血再灌注损伤,保护心肌[3]。T3可以激活Akt 信号通路从而发挥心脏保护作用,但T3对心肌细胞电生理的影响研究很少。本研究建立缺氧/复氧(H/R)模型,并用膜片钳全细胞技术观察T3对乳小鼠心室肌细胞L-型钙离子通道电流(ICaL)的作用,旨在探讨T3对心脏钙离子通道的影响,并且验证PI3K/Akt 信号通路是否在其中发挥作用。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 实验动物 1~2 d 新生C57BL/6 小鼠20 只,雌雄不限,合格证号:SCXK(鄂)2015-0018,由湖北省实验动物中心提供。
1.1.2 药品和试剂 DMEM-F12 培养基(Hyclone 公司);胎牛血清(Gibico 公司);胶原酶Ⅱ、甲状腺素T3、LY294002(Sigma 公司);胰酶(Beyontime 公司);兔抗鼠P-Akt、兔抗鼠P-PI3K(美国CST 公司);辣根过氧化物酶标记的羊抗兔二抗(美国ASPEN 公司);未注明者均为国产分析纯。
1.1.3 溶液配制 记录ICaL的细胞外液成分:氯化胆碱100 mmol/L,NaCl 35 mmol/L,KCl 5.4 mmol/L,MgCl21.0 mmol/L,CaCl21.8 mmol/L,NaH2PO40.33 mmol/L,HEPES 10 mmol/L,葡萄糖10 mmol/L,BaCl20.1 mmol/L,4-氨基吡啶3 mmol/L,NaOH 调整pH 值到7.35。记录ICaL电极内液成分:CsCl2120 mmol/L,CaCl21.0 mmol/L,Na2ATP 5 mmol/L,MgCl25 mmol/L,EGTA 11 mmol/L,HEPES 10 mmol/L,CSOH 调整pH 值到7.2。
1.2 方法
1.2.1 心肌细胞培养 参照之前的方法[4],取20 只1~2 d 小鼠,将心脏置于预冷PBS 液中清洗,留取心室并将心室肌组织剪碎,吸入含10 mL 的0.125%胰酶的离心管中4℃过夜。后用含0.035%胶原酶Ⅱ的消化液于37℃水浴振摇消化,待液体变混浊后停止消化,重复消化6~7 次直至消化完全。将收集的上清液1000 r/min 离心10 min,用含15%胎牛血清的完全培养液重悬细胞。接种于10 cm 培养皿中并置于培养箱(37℃、5%CO2)中差速贴壁1 h,将细胞悬液种于35 mm(1×106/mL)培养皿中培养。
1.2.2 心肌细胞H/R 模型的建立及实验分组 细胞贴壁完全且搏动良好后,将培养液换为2 mL PBS 液,于缺氧培养箱(94%N2,5%CO2,1%O2,37℃)中培养4 h。随后吸去PBS 液,更换为完全培养液并放入普通培养箱中培养24 h,即完成H/R 过程。本实验分为五组:正常对照(Control)组、H/R 组、T3+H/R 组、T3+H/R+LY 组、H/R+LY 组。T3(20 ng/mL)在H/R 前24 h 加入培养液中;LY294002(LY)为PI3K/Akt 通路阻滞剂[5],在细胞H/R 前24 h 以10 μmol/L 加入培养液中。
1.2.3 ICaL的记录 应用全细胞膜片钳技术记录细胞钙离子通道电流,微电极充灌电极内液后电阻在5~7 MΩ。室温下,将细胞放入细胞槽内,用电极外液以2~3 mL/min 的流速进行灌流。选用大小相近、细胞状态良好的细胞进行实验。待高阻封接形成后,负压脉冲破膜,补偿膜电容、串联电阻及漏电流,形成全细胞记录方式,平衡5 min,待电极内液与细胞内液交换充分后,进行膜电流记录。膜电流的大小以电流密度,即pA/pF 表示。
1.2.4 Western blot 测定PI3K/Akt 通路的蛋白表达 在培养皿中加入裂解液进行蛋白提纯,采用BCA 法进行蛋白定量,SDS-PAGE 电泳,转膜,5%脱脂牛奶室温封闭1 h,然后用兔抗鼠P-Akt、兔抗鼠P-PI3K 抗体4℃孵育过夜。次日用辣根过氧化物酶标记的羊抗兔二抗室温孵育1 h,化学发光法(ECL)显影。采用凝胶成像系统(美国UVP 公司)进行分析,以目的蛋白条带灰度值与β-actin 条带灰度值的比值反映P-Akt 和P-PI3K 的表达。
1.3 统计学方法
采用SPSS 22.0 软件进行统计学分析。计量资料采用均数±标准差()表示,多组间比较采用单因素方差分析,进一步两两比较采用LSD-t 检验。以P <0.05 为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 T3对乳鼠心肌细胞H/R 损伤ICaL的影响
形成全细胞构型后,在电压钳模式下记录电流。钳制电位固定于-40 mV,指令电压从-50 mV 以10 mV为步阶逐步阶跃至+60 mV。各组电流-电压(I-V)曲线形状近似。与Control 组比较,H/R 组ICaL峰值电流减小(P <0.01),I-V 曲线上移;与H/R 组比较,T3+H/R 组ICaL峰值电流增大(P <0.01),T3能部分恢复H/R损伤引起的I-V 曲线上移,且T3+H/R 组I-V 曲线左移,峰值电位从+10 mV 减小至-10 mV;与H/R 组比较,H/R+LY 组ICaL峰值电流减小(P <0.01);与T3+H/R 组比较,T3+H/R+LY 组ICaL峰值电流减小(P <0.01)。见图1。
2.2 T3对H/R 乳鼠心室肌细胞ICaL稳态失活曲线及稳态激活曲线的影响
采用双脉冲实验方法测定失活曲线,钳制电压-40 mV,将保持电位维持在-50 mV,从-50 mV 增加到60 mV(跃阶10 mV),记录内向峰电流,然后给测试电位0 mV,持续300 ms。以电流的相对值(I/Imax)对条件脉冲电压作图,得出ICaL稳态失活曲线(图2a)。依Boltzman 方程I/Imax=1/[1+exp(V-V1/2)/K]进行拟合。式中Imax为最大膜电流,V1/2为半数失活电压,K 为斜率参数。结果显示,与Control 组比较,H/R 组V1/2减小[(-16.10±4.03)mV 比(-25.32±1.48)mV,P <0.05],失活曲线右移,失活减慢。与H/R 组比较,T3+H/R组[(-24.49±1.58)mV]的V1/2增大(P <0.05),失活曲线左移,失活加快。各组K 值差异无统计学意义(P >0.05)。
将ICaL的I-V 曲线的结果转化为膜电导(G),对条件刺激电压作图,采用Boltzman 方程G/Gmax=1/[1+exp(V-V1/2)/K]进行拟合,得到ICaL稳态激活曲线(图2b)。Gmax为最大膜电导,V1/2为半数激活电压,K 为斜率参数。结果显示,与Control 组比较,H/R 组V1/2升高[(-24.20±0.35)mV 比(-10.04±0.33)mV,P <0.05],激活曲线左移,激活加快;与H/R 组比较,T3+H/R 组[(-16.39±0.53)mV]的V1/2减小(P<0.05),激活曲线右移,激活减慢。各组K 值差异无统计学意义(P>0.05)。
图2 各组乳小鼠心室肌细胞L-钙离子通道稳态失活曲线及稳态激活曲线
2.3 PI3K/Akt 信号通路在T3对心肌细胞H/R 损伤中的作用
与Control 组比较,H/R 组心肌细胞P-PI3K 及P-Akt 表达减少(P <0.01);与H/R 组比较,T3+H/R组心肌细胞P-PI3K 及P-Akt 表达增加(P <0.01),H/R+LY 组心肌细胞P-PI3K 及P-Akt 表达减少(P <0.01);与T3+H/R 组比较,T3+H/R+LY 组心肌细胞P-PI3K及P-Akt 表达减少(P <0.01)。见图3。
图3 Western blot 检测H/R 模型和T3对PI3K/Akt 信号通路表达的影响
3 讨论
钙离子作为第二信使,在细胞病理和生理过程中起着重要作用,心肌细胞钙离子的转运调节心肌收缩与舒张。本实验利用全细胞膜片钳技术,证实H/R可显著降低ICaL。很多文献已经报道T3对心血管的保护作用[1-2],本实验发现T3可以有效抑制H/R 诱导的钙离子通道损伤,保护心肌细胞L-型钙离子通道,且保护作用可通过激活PI3K/Akt 信号通路来实现。
急性心肌梗死后容易并发缺血再灌注损伤,后者可以诱发一系列病理过程,如线粒体膜电位的损伤,细胞内钙超载,氧化应激产物的形成等,这些会诱导心律失常、微循环障碍的发生,甚至最终造成严重的心力衰竭[6-7]。有研究表明,胞浆钙离子的释放不仅通过心肌肌浆网Ca2+-ATP 酶2a(SERCA2a),也通过Na+-Ca2+交换[8-9]。缺血再灌注损伤可导致Na+-Ca2+交换增加有关并诱导细胞内钙超载[6]。研究显示,缺血再灌注损伤时心肌细胞动作电位时程缩短,导致心肌细胞动作电位的不均一性,诱发折返性心律失常[10]。本实验利用膜片钳技术记录H/R 损伤后的细胞钙离子,发现L-型钙离子通道受到抑制,峰值电流较正常心肌细胞明显下降,I-V 曲线上移,与之前的研究一致[10-12]。
甲状腺激素可以调节心肌收缩蛋白及钙处理蛋白的表达,调节心肌细胞离子通道及交感神经兴奋系统在心血管系统中的表达[13]。既往有研究显示,急性心肌梗死常伴随着体内甲状腺激素水平的改变[13-14],大量报道也证实,急性心肌梗死后运用低剂量T3可以促进心功能恢复并减轻心室重塑[1-2],T3可以激活Akt并保护心功能[15-18]。本实验通过T3预处理证实T3可以减轻H/R 对ICaL的抑制,恢复部分上移的I-V 曲线,恢复左移的激活曲线,使激活减慢,恢复右移的失活曲线,使失活加快。PI3K/Akt 是细胞的重要信号通路,在调节细胞凋亡、细胞增殖、自噬、分化等方面均发挥重要作用[3,19],激活这一通道能保护心肌并减少缺血再灌注引起的损伤[3]。在本实验中,H/R 损伤可减少PI3K/Akt 信号通路的激活,而T3预处理可显著增加P-PI3K 和P-Akt 的表达。当加入PI3K/Akt 特异性通道阻滞剂后,T3对ICaL的作用被明显抑制,证明T3通过激活PI3K/Akt 信号通路发挥作用。有研究显示,Akt 的激活可以增加ICaL[20],本实验通过抑制PI3K/Akt 信号通路发现T3对L-型钙离子通道的作用可能是由PI3K/Akt 信号通路来发挥的。
综上,H/R 损伤导致心肌细胞ICaL下降,T3可以保护L-型钙离子通道,减少通道电流的下降,其可能是通过PI3K/Akt 信号通路来发挥作用的。