低氧肺动脉高压形成机制的研究进展
2017-06-27严国森雷桅
严国森+雷桅
【摘要】 慢性低氧可使肺动脉内皮细胞(PAEC)及肺动脉平滑肌细胞(PASMC)损伤而发生炎症反应并诱导低氧相关增殖信号通路激活, 表现为肺动脉内皮及平滑肌细胞增殖、迁移、分化、抑制凋亡, 以肺小血管细胞增殖、管壁增厚、管腔闭塞及胞外基质增多为特征, 在低氧肺动脉高压肺血管重构的发生发展有重要作用, 而对其调控的miRNA可能是新的治疗手段。
【关键词】 低氧;肺动脉高压;机制
DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2017.14.109
肺动脉高压(PAH)是一种高度恶性的慢性进行性血管病, 发病时PASMC增殖, 引起肺血管肥厚, 导致肺血管阻力增加, 最终右心衰竭, 甚至死亡。慢性缺氧可引起肺动脉内皮损伤和功能紊乱, 诱导炎症反应, 进一步引起肺血管的收缩和PASMC异常增殖, 促进了PAH形成。有研究表明[1], 肺血管的重构是引起低氧性PAH特征性病理改变的首要因素。因此, 维护肺动脉细胞增殖和凋亡之间的平衡, 延缓甚至逆转肺血管重构, 已成为治PAH的重要目标。
1 PAH发生发展中炎症反应有着重要的作用
炎症是PAH的一个重要病理特征, 表现为炎性细胞对肺血管浸润, 包括T和B 淋巴细胞。T细胞参与炎症启动与维持, 提示其可能对PAH发病机制有作用。通过基因敲除重组激活基因1(RAG1), 小鼠右心室收缩压和动脉重构显著降低。同时重组激活基因1缺陷(RAG1 -/-)小鼠接受T17辅助细胞处理后, 可发展成PAH[2]。可以预见, T17辅助细胞的抑制剂的发展, 可能会成为抑制肺血管重构进而抑制PAH的新手段。
炎症中产生的胞内活性氧(ROS)通过改变细胞增殖和细胞内的变化促进PAH发生发展。小鼠缺氧处理后右心室收缩压增加, 右心室肥大, 肺组织中ROS增加[3]。白藜芦醇被证明具抗炎和抗氧化应激。实验表明白藜芦醇可显著抑制PASMC增殖并缓解大鼠心室收缩压升高和肺动脉重构。白藜芦醇抑制HIF-1α表达和肺动脉周围炎性细胞浸润, 并降低ROS的产生[4]。由上述内容可知, 低氧导致肺血管炎症浸润, 白藜芦醇可通过抗炎和抗氧化来抑制肺动脉平滑肌的增殖, 进而抑制PAH。
2 HIF-1α在PAH中的重要作用
HIF-1由α和β两个亚基构成, HIF-1为氧调控蛋白, 对氧浓度变化异常敏感, 所以被称作“缺氧基因表达开关”[5]。缺氧可造成大量内源性细胞因子失衡、一氧化氮(NO)释放异常等, 造成肺血管收缩和舒张失衡, 进而导致肺血管重构, 最终形成PAH。有研究表明, HIF-1α对于低氧PAH形成有重要作用, 持续缺氧可致大鼠PAH的形成, 在低氧诱导的PAH模型证实:低氧刺激后肺动脉压力明显升高, HIF-1α蛋白在肺动脉中表达明显增加, 表明HIF-1α的过表达可能在PAH形成起到重要的作用[6]。HIF-1α可促进PASMC的收缩和细胞活性, 在PAH的的患者中, PAEC中的HIF-1α的表达量也是增加的[7]。
3 增殖相关信号通路被激活导致肺血管重构
Rho家族属于GTP酶超家族, RhoA 可激活下游靶分子Rho激酶, 进而调节细胞收缩、分化、迁移、凋亡、增殖等生物学功能和行为。RhoA/Rho激酶信号通路在COPD引起的PAH中发挥显著作用。研究发现PAH时血清应答因子(SRF)及其mRNA表达上调, 细胞增殖的增加, 细胞凋亡有明显抑制作用, 同时沉默SRF后得到相反效果;SRF基因敲除后则可降低PAH发生[8]。SRF / EGR-1通路激活增加PASMC增殖并抑制凋亡, 导致PAH的发生发展。这可为日后在治疗PAH治療上提供了新渠道。
在细胞的增殖、分化的过程中EGFR信号通路发挥重要作用。低氧会使人肺微血管的增殖内皮细胞增殖, 需EGFR介导的细胞外信号调节激酶ERK激活, ERK表达上调, 在使用EGFR抑制剂和ERK通路抑制剂后可明显抑制[9]。由上可知, 激活增殖相关信号通路确实可导致肺血管重构。
4 凋亡被抑制在PAH进展担任重要角色
细胞凋亡是生物体内新陈代谢重要生理过程, 表现为PASMC减少, 抑制血管重构, 进而降低肺动脉压。PASMC过度增殖和凋亡减少, 肺血管管壁增厚、缩窄, 进而PAH。Bcl-2 是目前已知最重要的细胞凋亡调控因子, 并在凋亡调节信号通路中担任重要角色。研究表明缺氧诱导血清反应因子的上调参与了其下游的Bcl-2凋亡效应, Bcl-2上调随着SRF增加而增加, 在使用SRF的siRNA后SRF和PBcl-2蛋白表达明显抑制;SRF的siRNA和Bcl-2的siRNA显著降低低氧PASMC活力, 增强细胞凋亡[10]。这表明Bcl-2被抑制会促进肺血管重构, SRF的siRNA和Bcl-2的siRNA或许会成为抑制PAH新的途径。
5 miRNA在调控PAH中发挥重要作用
PAH特点是PASMC过度增殖进而肺小动脉闭塞重构, 目前没有有效方法治疗PAH[11]。在慢性缺氧诱导下miR-143 / 145基因敲除小鼠肺动脉压力得到有效抑制[12], 表明miR-143 / 145基因在低氧性PAH发生发挥重要作用。
新生儿持续性PAH是一种临床综合征, 表现为血管内外膜厚度增加。研究用肺组织microRNA芯片分析miRNA影响细胞转化的作用。在低氧条件下, 肺血管内皮细胞的mir-126a-5p表达量增加, 同时其平滑肌肌动蛋白α表达增加。同时发现PI3K p85和Akt比对照组表达上调[13]。由上可知, mir-126a-5p参与调节了PAH中的PI3K/Akt信号通路。
6 小结
综上所述, 在PAH的发生发中, 有众多影响因素和机制, 大部分研究侧重低氧诱导细胞增殖、血管再生与重构、动脉狭窄、调控因子变化等, 随着未来对PAH机制的进一步研究与实践, 对新的治疗靶点、干预手段的探究, 诊治PAH就会取得突破性进展, 进一步降低PAH发生率及死亡率。
參考文献
[1] 刘斌. 白藜芦醇甲基化衍生物BTM-0512抗肺动脉高压心血管重构作用及机制. 中南大学, 2012.
[2] Hu H, Zharikov S, Patel JM. Novel peptide for attenuation of hypoxia-induced pulmonary hypertension via modulation of nitric oxide release and phosphodiesterase -5 activity. Peptides, 2012, 35(1):78-85.
[3] Resar R1, Pronovost P, Haraden C, et al. Hypoxia Inhibits Expression and Function of Mitochondrial Thioredoxin 2 to Promote Pulmonary Hypertension. Jt Comm J Qual Patient Saf, 2005 , 31(5):243-248.
[4] Yi L. Resveratrol alleviate hypoxic pulmonary hypertension via anti-inflammation and anti-oxidant pathways in rats. International Journal of Medical Sciences, 2016, 13(12):942-954.
[5] Barnes EA, Chen CH, Sedan O, et al. Loss of smooth muscle cell hypoxia inducible factor-1α underlies increased vascular contractility in pulmonary hypertension. Faseb Journal Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology, 2016, 31(2):650.
[6] Chen T, Zhou Q, Tang H, et al. miR-17/20 Controls Prolyl Hydroxylase 2 (PHD2)/Hypoxia-Inducible Factor 1 (HIF1) to Regulate Pulmonary Artery Smooth Muscle Cell Proliferation. Journal of the American Heart Association Cardiovascular & Cerebrovascular Disease, 2016, 5(12):e004510.
[7] Shields K J, Verdelis K, Passineau M J, et al. Three-dimensional micro computed tomography analysis of the lung vasculature and differential adipose proteomics in the Sugen/hypoxia rat model of pulmonary arterial hypertension. Pulmonary Circulation, 2016, 6(4):586-596.
[8] Shi Z, Wu H, Luo J, et al. STARS knockout attenuates hypoxia-induced pulmonary arterial hypertension by suppressing pulmonary arterial smooth muscle cell proliferation. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2017(87):397-404.
[9] Chen X, Sakamoto K, Quinn FD, et al. Lack of intracellular replication of M. tuberculosis and M. bovis BCG caused by delivering bacilli to lysosomes in murine brain microvascular endothelial cells. Oncotarget, 2015, (32):32456-32467.
[10] Sievert W, Trott KR, Azimzadeh O, et al. Late proliferating and inflammatory effects on murine microvascular heart and lung endothelial cells after irradiation. Radiother Oncol, 2015,117(2):376-381.
[11] Hsu PY, Hsi E, Wang TM, et al. MicroRNA let-7g possesses a therapeutic potential for peripheral artery disease. J Cell Mol Med, 2017,21(3):519-529.
[12] Lin D, Baker AH, Bradshaw AC. MicroRNA delivery strategies to the lung in a model of pulmonary hypertension. New York: Springer New York, 2017: 325-338.
[13] Ku?nierz-Cabala B, Nowak E, Sporek M, et al. Serum levels of unique miR-551-5p and endothelial-specific miR-126a-5p allow discrimination of patients in the early phase of acute pancreatitis. Pancreatology, 2015, 15(4):344-351.
[收稿日期:2017-03-10]