顺铂加重乳腺癌MCF-7细胞DNA损伤促凋亡的研究
2017-03-17袁立明曹交欢刘向光周纤纤匡淑雯陶晓军曾赵军
袁立明,马 楠,曹交欢,文 艺,刘向光,周纤纤, 匡淑雯, 陶晓军,曾赵军
(1.湖南师范大学医学院药物工程实验室,湖南 长沙 410013;2. 中南大学湘雅医学院分子生物学研究中心,湖南 长沙 410078)
顺铂加重乳腺癌MCF-7细胞DNA损伤促凋亡的研究
袁立明1,马 楠2,曹交欢1,文 艺1,刘向光1,周纤纤1, 匡淑雯1, 陶晓军1,曾赵军2
(1.湖南师范大学医学院药物工程实验室,湖南 长沙 410013;2. 中南大学湘雅医学院分子生物学研究中心,湖南 长沙 410078)
目的 顺铂(DDP)为广谱抗癌药物,本研究探讨其对MCF-7乳腺癌细胞DNA损伤的作用,并研究其引起细胞凋亡的机制。方法 采用DDP(0、2、4、6、8、10 mg·L-1)处理乳腺癌MCF-7细胞48 h,MTT法检测顺铂对细胞活性的抑制作用,并计算IC50; Western blot检测DNA断裂形成的标志分子γ-H2AX及直接感受DNA双链断裂(DSBs)的分子ATM、细胞凋亡信号分子cleaved caspase-3及凋亡相关的蛋白钙蛋白酶calpain的表达。结果 DDP呈浓度依赖性抑制细胞MCF-7活性,IC50为7.57 mg·L-1;与对照组(未采用顺铂处理)相比,顺铂处理组 MCF-7细胞内γ-H2AX、ATM、cleaved caspase-3、calpain的表达量增多。结论 DDP可抑制乳腺癌MCF-7细胞的活性,其机制与促进MCF-7细胞凋亡,诱导DNA双链断裂,上调促凋亡相关蛋白有关。
MCF-7细胞;顺铂;DNA损伤;乳腺癌;增殖;凋亡;IC50
乳腺癌目前已成为威胁妇女生命和健康的头号杀手,倍受世界各国瞩目[1-3]。顺铂(DDP)为广谱抗癌药物,具有细胞毒作用,其主要靶点为DNA,与DNA结合可诱导DNA严重损伤,从而导致细胞凋亡。DNA双键断裂(DSBs)是最严重的DNA损伤之一,γ-H2AX焦点数和DSBs有1 ∶1的关系,γ-H2AX目前已逐渐成为衡量DNA损伤程度的金标准之一[4]。共济失调-毛细血管扩张突变基因(ATM)主要介导DSBs诱导的H2AX的磷酸化,并且还能诱导诸多DNA损伤信号通路中的关键应激蛋白,其具有丝/苏氨酸蛋白激酶活性, 可以作用于下游靶蛋白相应丝氨酸(Ser)或苏氨酸(Thr)位点, 在DNA损伤识别和修复中处于最关键的位置[5]。Cleaved caspase-3与化疗药物作用引起细胞凋亡密切相关,cleaved caspase-3在胞质中是以无活性的酶原形式存在, 然而,当许多细胞外凋亡信号使之激活为有活性的cleaved caspase-3时, 引起细胞内关键蛋白酶的失活, 导致细胞凋亡[6]。研究表明,钙蛋白酶calpain与肿瘤细胞的凋亡关系十分密切[7]。本研究旨在分析DDP处理乳腺癌MCF-7细胞后发生DNA损伤时所引起的相关蛋白表达的变化情况,运用MTT法、Hoechst 33258荧光染色及Western blot检测DDP处理MCF-7细胞后对细胞凋亡、细胞形态学及凋亡相关蛋白表达的影响, 为顺铂作用乳腺癌MCF-7细胞的DNA损伤反应的研究提供相关的实验依据。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 细胞培养 人乳腺癌细胞株MCF-7细胞,来源于1位69岁高加索妇女乳腺癌(腺癌)患者胸膜渗出液中的癌细胞,该细胞株由中南大学分子生物学研究中心提供。培养体系为含10%小牛血清的DMEM培养基,在37℃、5% CO2孵箱中培养。
1.1.2 试剂 DMEM干粉和小牛血清购于美国Gibco公司;二甲基亚砜(DMSO)购自Sigma;PVDF膜购于罗氏;30% Acr-Bis、1 mol·L-1Tris-HCl pH 8.8、1 mol·L-1Tris-HCl pH 6.8购自碧云天;预染蛋白Marker购自碧云天;100 bp ladder DNA Marker购自Fermentas。
1.1.3 抗体 ATM鼠抗人单抗购于Abcam公司;γ-H2AX(Ser139)兔抗人单抗购于Bioworld公司;cleaved caspase-3(Asp 175)鼠抗人单抗购于Cell Signaling Technology公司; calpain兔抗人单抗、DAB显色剂均购自北京中杉生物技术有限公司;二抗羊抗兔IgG、羊抗鼠IgG均购自碧云天生物有限公司。
1.2 MTT测定DDP作用于MCF-7细胞的的IC50值 将对数生长期的MCF-7细胞接种于96孔培养板中, 每孔加入200 μL,按不同浓度的DDP进行处理(0、2、4、6、8、10 mg·L-1),每孔加入100 μL无血清的DMEM和20 μL浓度为5 g·L-1的MTT试剂,37℃继续培养4 h,每孔加入150 μL DMSO,采用490 nm和630 nm波长在酶标仪上检测各孔吸光度, 记录结果。用各组不同浓度的细胞抑制率及浓度制作标准曲线, 计算IC50值。细胞抑制率/%=(1-实验组的平均OD值/对照组的平均OD值)×100%。
1.3 Hoechst 33258荧光染色观察MCF-7细胞凋亡 将对数生长期MCF-7细胞分别接种于混有不同培养液的培养皿中,分别为空白对照组(0 mg·L-1的DDP)、含5%胎牛血清的DMEM、含10%胎牛血清的DMEM、顺铂组(7.57 mg·L-1DDP的培养基2 mL),接种96孔培养板,每孔600 μL(1.0 ×105细胞/孔),48 h后,PBS洗涤细胞,加0.5 mL 10 mg·L-1Hoechst 33258荧光染色,37℃ 孵育8 min,PBS洗涤3次,每次5 min, 荧光显微镜下观察细胞形态,重复3次。
1.4 Western blot 把待处理的MCF-7细胞分为实验组和对照组,实验组即DDP组(2、4、6、8、10 mg·L-1),对照组即空白对照(DDP为0 mg·L-1)。Western blot具体步骤如下:取等质量的各组蛋白质与5×SDS混匀,热变性5 min后点样;用Bio-Rad电泳仪在60 V和浓缩胶中电泳1 h,之后在100 V和分离胶中电泳2~4 h(ATM蛋白分子质量为350 ku,SDS-PAGE凝胶电泳采用7.5%的分离胶,同样的电压下电泳6 h);Bio-Rad湿转膜仪在80 V、200 mA条件下转膜2~3 h(ATM蛋白转膜6 h);用含3%脱脂奶粉的TBST溶液4℃封闭2~16 h; 用含3%脱脂奶粉的TBST溶液适当稀释一抗,4℃孵育过夜;用含3%脱脂奶粉的TBST溶液适当稀释二抗,室温孵育1.5 h; 用ECL发光试剂盒对PVDF膜蛋白信号曝光显色,ImageQuant350化学发光系统照相保存实验图片。
1.5 统计学处理 用Image J图像扫描分析系统分析目标条带的净光密度值,以SPSS13.0统计软件进行One-way ANOVA方差分析。
2 结果
2.1 DDP对MCF-7细胞生长的影响 Fig 1结果显示,与对照组(0 mg·L-1的DDP)相比较,DDP对MCF-7细胞生长的抑制作用具有浓度依赖性,但最终浓度升高时,抑制作用相对减弱,这可能与细胞产生耐药性有关。本实验测得DDP处理MCF-7细胞48 h的IC50为7.57 mg·L-1。
Fig 1 Effect of DDP on cell growth of MCF-7 cell measured by MTT after 48 h(n=3)
2.2 Hoechst 33258荧光染色观察MCF-7细胞凋亡 Fig 2结果可见,对照组细胞核呈圆形,淡蓝色,染色质分布均匀,而DDP处理组细胞核固缩,分叶或碎片状(即凋亡小体出现),从结果看,顺铂处理组细胞凋亡增加。
Fig 2 DDP effect on apoptosis morphology of MCF-7 cell
A:NC group;B:DMEM+5% FBS group;C:DMEM+10% FBS group;D:5% glucose group;E:Cisplatin group
2.3 Western blot检测DDP处理MCF-7细胞后对相关蛋白表达的影响 使用DDP药物浓度分别为0、2、4、6、8、10 mg·L-1,处理MCF-7细胞48 h,运用Western blot检测γ-H2AX、ATM、caspase-3、calpain的表达变化。结果显示(Fig 3~5),γ-H2AX、ATM、cleaved caspase-3、calpain的表达随DDP浓度升高而增多。
Fig 3 Protein expressions related toDNA damage,after MCF-7 cells were treated with DDP of different concentrations for 48 h
Fig 4 Protein expressions related tocell apoptosis,after MCF-7 cells were treated with DDP of different concentrations for 48 h
Fig 5 Calpain expressions related tocell apoptosis,after MCF-7 cells were treated with DDP of different concentrations for 48 h
3 讨论
乳腺癌是临床上发病率较高的恶性肿瘤,化疗是众多治疗乳腺癌的重要方式之一[8-9]。DDP是临床治疗肿瘤的广谱抗癌药,DNA 是DDP的主要靶点,DDP结合会导致 DNA 损伤并诱发细胞凋亡。DSBs是DNA损伤的重要表现形式之一,相关研究表明,γ-H2AX可用于检测DSBs, 与同类方法相比具有较好的实用价值[4]。ATM是DNA损伤的直接感受器,DNA在损伤之后,ATM因自身磷酸化而被迅速激活,即使只有少量的DSBs也会促使ATM发生结构的改变[5]。
本次实验中, DDP处理MCF-7细胞48 h后,随药物浓度升高,γ-H2AX与ATM表达量均升高,造成其损伤,进一步影响了一些基因的表达与蛋白的改变。 经7.57 mg·L-1DDP作用 48 h 后, 在排除其他培养基相应成分干扰的前提下,Hoechst 33258染色结果显示, MCF-7细胞的细胞核固缩,分叶或碎片状,核内染色质因为浓集而呈亮蓝色,从形态学角度可以知道, 顺铂明显诱导MCF-7细胞发生了凋亡,超过了其自身修复的能力。
Western blot结果显示,不同浓度的DDP作用MCF-7细胞后,作为细胞凋亡必不可少的关键酶cleaved caspase-3被激活,通过caspase级联反应,促使与细胞凋亡相关的重要蛋白降解,从而引起细胞凋亡。细胞内的钙蛋白酶calpain是一类Ca2+依赖性的半胱氨酸蛋白酶,可催化多种底物限制性水解。研究者们多数认为钙蛋白酶与caspase家族共同介导细胞凋亡。有研究发现,钙蛋白酶可以通过水解caspase-7、caspase-10和caspase-12产生活性更强的水解底物,从而促进caspase诱导的细胞凋亡[10]。 近来研究也证实了钙蛋白酶可以通过裂解凋亡相关的Bcl-2家族,以及通过水解途径激活其他促凋亡途径物质如CDK5、APAF1、JNK、JUN、FOS等介导细胞凋亡[11]。这与本实验得到的calpain表达量在MCF-7细胞被给予DDP之后随浓度升高而增多相一致,进一步证实了钙蛋白酶calpain与细胞凋亡有关。这提示我们,抑制细胞内calpain的表达可能对于肿瘤的治疗有促进作用,也为研究calpain的功能提供了科学依据。
综上所述,DDP通过诱导乳腺癌MCF-7细胞DNA损伤,上调与细胞凋亡相关的蛋白表达,从而引起细胞凋亡。
(致谢:本实验在中南大学湘雅医学院分子生物学研究中心实验室完成。)
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Study of cisplatin aggravating DNA damage and causing a high apoptosis rate on breast cancer MCF-7 cells
YUAN Li-ming1,MA Nan2,CAO Jiao-huan1,WEN Yi1,LIU Xiang-guang1,ZHOU Xian-xian1,KUANG Shu-wen1,TAO Xiao-jun1,ZENG Zhao-jun2
(1.LaboratoryofMedicineEngineering,MedicalCollegeofHunanNormalUniversity,Changsha410013,China;2.MolecularBiologyResearchCenter,XiangyaMedicalCollege,CentralSouthUniversity,Changsha410078,China)
Aim To investigate the mechanisms of DNA damage of cisplatin(DDP), a broad spectrum anticancer drug on breast cancer MCF-7 cells and to study the mechanism of apoptosis induced by DDP.Methods MCF-7 cells were treated by DDP(0, 2,4,6,8,10 mg·L-1) for 48 h. MTT assay was used to detect the inhibitory effect of DDP on MCF-7 cells, and IC50value was calculated. Western blot was adopted to detect the expression of γ-H2AX,which was the marker of DNA double stranded breaks(DSBs) and ATM(sensory molecules of DSBs), the apoptotic signal transduction molecule cleaved caspase-3, and the proteins associated with apoptosis:calpain.Results DDP inhibited MCF-7 cell activity in a concentration-dependent manner and IC50was 7.57 mg·L-1.In contrast to the control group(without DDP treatment), MCF-7 cells with DDP treatment group expressed more γ-H2AX, ATM, cleaved caspase-3 and calpain.Conclusions DDP could inhibit the activity of breast cancer MCF-7 cells. Its mechanisms may be associated with inhibition of MCF-7 cell apoptosis, induction of DNA double strand breaking and the expression of pro-apoptotic protein up-regulating.
MCF-7 cell; cisplatin; DNA damage; breast cancer; proliferation; apoptosis;IC50
时间:2017-3-4 11:50
http://kns.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20170304.1150.018.html
2016-10-25,
2016-11-28
国家自然科学基金资助项目(No 30600753,81172154);湖南省自然科学基金面上项目(No 2016JJ2088);湖南省教育厅资助项目(No 13C541); 湖南省中医药管理局资助项目(No 2015123)
袁立明(1972-),男,硕士,研究方向:恶性肿瘤的自杀基因治疗及应用解剖学,E-mail: yuanlimingtian@126.com; 陶晓军(1981-),男,博士,讲师,研究方向:纳米药物制剂缓控释和靶向治疗,通讯作者,E-mail: xiaojtao@126.com; 曾赵军(1971-),男,博士,副教授,研究方向:人类肿瘤基因治疗、肿瘤DNA损伤与修复、基因的结构与功能的机制,通讯作者,E-mail: zengzj71@sina.com
10.3969/j.issn.1001-1978.2017.03.009
A
1001-1978(2017)03-0334-04
R329.25;R342.3;R737.9;R979.1