脂氧素A4及其受体对急性肺损伤Na+—K+—ATP酶的影响
2016-11-15陈芳王倩
陈芳+王倩
[摘要] 目的 研究脂氧素A4及其受体对大鼠急性肺损伤Na+-K+-ATP酶的影响及机制。 方法 将大鼠随机分为7组:①对照组;②油酸(OA)组;③油酸+脂氧素A4(OA+LX)组;④OA+Alcohol组;⑤油酸+BML-111组(OA+BML-111组);⑥油酸+脂氧素A4+BOC-2(OA+LX+BOC-2)组;⑦OA+DMSO组。机械通气1 h后处死,取肺组织测定Na+-K+-ATP酶α1、β1亚基蛋白表达和Na+-K+-ATP酶活性。 结果 与OA组比较,OA+LX组和OA+BML-111组肺组织Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达明显增高(P<0.05),Na+-K+-ATP酶活性明显增强(P<0.05);与OA+LX组比较,BOC-2抑制Na+-K+-ATP酶的活性(P<0.01)。 结论 脂氧素通过上调Na+-K+-ATP酶蛋白表达及活性减轻油酸诱导的大鼠急性肺损伤,其作用机制与脂氧素受体(ALX)相关。
[关键词] Na+-K+-ATP酶;急性肺损伤;脂氧素;脂氧素受体
[中图分类号] R563 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2016)23-0021-05
[Abstract] Objective To study the effect of lipoxin A4 and its receptor on Na+-K+-ATPase in acute lung injury. Methods SD rats were divided randomly into seven groups: ①control group; ②OA group; ③OA+LX group; ④OA+Alcohol group; ⑤OA+BML-111 group; ⑥OA+LX+BOC-2 group; ⑦OA+DMSO group. After 1 h of mechanical ventilation, lung samples were harvested. The protein of lung tissue samples was isolated to measure Na+-K+-ATPase protein expression and Na+-K+-ATPase activity. Results Compared with OA group, Na+-K+-ATPase β1 subunit protein expression and Na+-K+-ATPase activity were significantly increased in OA+LX group and OA+BML-111 group. Compared with OA+LX group, the beneficial effects of lipoxinA4 were abrogated by BOC-2(P<0.01). Conclusion Lipoxin can up-regulated Na+-K+-ATPase β1 subunit protein expression and Na+-K+-ATPase activity in acute lung injury, and its mechanism is through ALX cGMP.
[Key words] Na+-K+-ATPase; Acute lung injury; Lipoxin; Lipoxin receptor
急性肺损伤/急性呼吸窘迫综合征(ALI/ARDS)是临床常见的急危重症,病死率高达50%[1-3]。其主要病理变化为肺组织大量炎性浸润和肺泡-毛细血管屏障损伤引起的肺水清除障碍、肺水积聚。肺泡内水肿液的及时主动清除是治疗急性肺损伤、急性呼吸窘迫综合征的关键措施[4]。Na+-K+-ATP酶在水肿液主动清除过程中具有至关重要的作用[5-9]。肺泡Ⅱ型上皮细胞基底膜Na+-K+-ATP酶将细胞内Na+主动转运至肺间质,形成Na+浓度渗透梯度,进而产生肺泡腔内液体重吸收。另外,研究发现,Na+-K+-ATP酶参与形成和维持肺泡上皮的紧密连接,从而影响肺泡上皮细胞的屏障功能[10-13]。因此,该酶功能的变化和调节对肺水的清除起着至关重要的作用。本实验研究促炎症消退介质脂氧素对大鼠急性肺损伤肺组织Na+-K+-ATP酶的调控及可能机制,为治疗急性肺损伤、急性呼吸窘迫综合征提供新的思路和实验依据。
1材料与方法
1.1动物
SPF级健康Sprague Dawley(SD)雄性大鼠56只,体重200~250 g,由温州医科大学实验动物中心提供(动物许可证:X1004258)。
1.2 主要试剂与仪器
脂氧素A4(lipoxin A4,LXA4)购自美国 Cayman,脂氧素A4受体激动剂(BML-111)和脂氧素A4受体抑制剂(BOC-2)均购自美国Biomol-Enzo Life Sciences,抗Na+-K+-ATP酶α1和β1抗体购自美国Abcam公司,油酸购自美国Sigma公司。小型动物呼吸机TKF-200c为江西麻醉呼吸设备公司,蛋白电泳系统为美国BioRAD,凝胶成像分析系统为英国的GDS 8000。
1.3 油酸损伤模型的建立
取SD雄性大鼠,戊巴比妥钠麻醉后行气管插管,机械通气。经股静脉分别注射生理盐水或纯油酸0.03 mL/kg。100%氧气机械通气1 h后,肺组织HE染色,透射电镜下观察。
1.4 动物分组及给药
雄性SD大鼠随机分为7组,每组8只:①空白对照组:股静脉注入等体积的0.9%生理盐水;②油酸组(oleic acid group,OA 组):股静脉注入0.03 mL/kg油酸;③油酸+脂氧素A4组(oleic acid+lipoxin group,OA+LX组):股静脉注入0.03 mL/kg油酸形成急性肺损伤10 min后,经股静脉注入脂氧素A4 2 μg/kg;④溶剂对照组(OA+Alcohol组):股静脉注入0.03 mL/kg油酸10 min,乙醇(Alcohol,脂氧素A4的溶剂)20 μL/kg经股静脉注入;⑤油酸+BML-111组(OA+BML-111组):0.03 mL/kg油酸刺激10 min后,BML-111(1 mg/kg,脂氧素A4受体激动剂)股静脉注入;⑥油酸+脂氧素A4+BOC-2组(OA+LX+BOC-2组):股静脉注射0.03 mL/kg油酸与2 μg/kg脂氧素A4后,BOC-2(600 ng/kg)经股静脉注射;⑦溶剂对照组(OA+DMSO组):股静脉注入0.03 mL/kg油酸10 min,经股静脉注入二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)(BML-111和BOC-2的溶剂)。大鼠机械通气1 h,腹主动脉放血处死,分离肺组织置液氮中速冻,然后-80℃保存。
1.5 检测Na+-K+-ATP酶α1、β1亚基蛋白表达
肺组织匀浆后提取蛋白并定量,加蛋白上样缓冲液,煮沸后保存。加入SDS-PAGE胶孔中进行电泳、转膜、封闭。最后加入抗Na+-K+-ATP酶α1和β1抗体(1∶1000),4℃过夜;第2天洗膜,加入二抗(1∶5000),室温孵育1 h;洗涤,ECL显影、曝光。
1.6 Na+-K+-ATP酶活性检测
ATP酶分解ATP为ADP、AMP和Pi,通过测定Pi的量判断ATP酶的活性。ATP酶活性单位以每小时每毫克蛋白分解ATP产生1 mmol Pi的量定义为一个ATP酶活力单位。按微量Na+-K+-ATP酶试剂盒(南京建成)说明书进行测定。
1.7 统计学处理
采用SPSS13.0统计学软件进行分析处理,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组样本比较进行方差齐性检验,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05表示差异有统计学意义。
2 结果
2.1 油酸肺损伤模型建立
对照组肺组织结构清楚,支气管黏膜上皮排列整齐,肺泡壁无明显增厚,肺泡腔干净、无明显渗出,而油酸(OA)组肺组织充血明显,肺泡间质有炎性浸润,肺泡壁增宽,肺泡腔内可见出血和渗出(封三图4)。
2.2 脂氧素A4对油酸诱导急性肺损伤大鼠Na+-K+-ATP酶的影响
与对照组比较,OA组Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达明显增高(P<0.05);与OA组和OA+Alcohol组比较,油酸+脂氧素组(OA+LX)Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达明显增高(P<0.05);OA组、OA+Alcohol组和油酸+脂氧素组(OA+LX)Na+-K+-ATP酶α1亚基蛋白表达量比较差异无统计学意义(P>0.05)(图1A)。
与对照组比较,OA组Na+-K+-ATP酶活性增强(P<0.05);与OA组和OA+Alcohol组比较,油酸+脂氧素组(OA+LX)Na+-K+-ATP酶活性显著增强(P<0.01)(图1B)。
2.3 BML-111 对油酸诱导急性肺损伤大鼠Na+-K+-ATP酶的影响
与空白对照组比较,OA组Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达明显增高(P<0.05);与OA组和OA+DMSO组比较,油酸+BML-111组Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达明显增高(P<0.05);OA组、OA+DMSO组、油酸+BML-111组Na+-K+-ATP酶α1亚基蛋白表达量差异无统计学意义(P>0.05)。
与空白对照组比较,OA组Na+-K+-ATP酶活性增强(P<0.05);与OA组和OA+DMSO组比较,油酸+BML-111组Na+-K+-ATP酶活性显著增强(P<0.05)。
2.4 BOC-2 对油酸诱导急性肺损伤大鼠Na+-K+-ATP酶活性的影响
与OA组比较,油酸+脂氧素组Na+-K+-ATP酶活性增强(P<0.01);与油酸+脂氧素组相比,BOC-2抑制Na+-K+-ATP酶的活性(P<0.01)。
3 讨论
ALI/ARDS是一种急性呼吸衰竭综合征,虽然医疗条件和技术不断发展,但其病死率仍然极高[14,15]。学者们一直在探索寻找新的治疗ALI/ARDS的策略和方法。肺水肿是内毒素性肺损伤并发急性呼吸功能衰竭的主要病理基础,肺泡水肿液的及时主动清除对急性肺损伤的预后有重要影响。Na+-K+-ATP酶是主要位于细胞膜上的跨膜离子转运蛋白,具有维持细胞内外钠钾浓度梯度作用,是促进肺水沿着渗透梯度重吸收的关键。研究发现,Na+-K+-ATP酶主要由α亚基和β亚基构成。α亚基为催化亚基,主要通过水解ATP提供能量完成细胞内Na+和细胞外K+交换,β亚基为调节亚基,控制酶组装和镶嵌到质膜[16],并维持细胞屏障功能,在肺水肿形成和消退过程中具有重要作用。
脂氧素(lipoxins,LXs)为花生四烯酸(arachidonic acid,AA)脂加氧酶(lipoxygenase)的代谢产物,作为炎症消退过程中产生的最重要的内源性抗炎促消退介质,脂氧素抑制中性粒细胞的趋化;调控炎症因子的平衡;促进损伤组织的修复,防止其纤维化;促进中性粒细胞的凋亡及巨噬细胞的吞噬,因而称为炎症反应的“刹车信号”[15,17]。脂氧素已被多种实验模型证实具有特异性肺保护作用,能够减轻肺水肿,修复上皮细胞屏障功能[15,17,18]。作为重要的内源性促消退介质,脂氧素主要是与其受体(formyl peptide receptor-like 2,FPRL2/ALX)结合,从而对多种炎症性疾病的预后产生影响。
我们前期的研究已经证实,在内毒素性肺泡Ⅱ型上皮细胞模型中,LXA4可以上调Na+-K+-ATP酶的mRNA表达和酶活性,并证实在肺组织存在LXA4受体ALX表达[19]。本实验则建立肺损伤动物模型,研究LXA4及其受体激动剂和受体抑制剂对内毒素性肺损伤Na+-K+-ATP酶的影响,从而进一步探讨LXA4促进肺水吸收的机制。
本实验发现,在油酸诱导的急性肺损伤模型中,脂氧素受体激动剂(BLM-111)与脂氧素一样,具有一定的肺保护作用,都能提高Na+-K+-ATP酶β1亚基蛋白表达和Na+-K+-ATP酶活性。有学者研究证实,BLM-111对出血性休克和机械损伤性肺损伤也具有促炎症消退作用[20,21]。Tang M等[14]研究发现,BLM-111可以减轻内毒素性肺损伤,保护细胞屏障功能。但这一作用被脂氧素受体抑制剂(BOC-2)拮抗,提示脂氧素A4对Na+-K+-ATP酶的作用是通过脂氧素A4受体(ALX)介导的。目前发现的脂氧素受体主要有ALX、peptido-LT receptors(CysLTR1)和核受体AhR。ALX 是脂氧素信号通路中首先被鉴别并克隆的G蛋白偶联受体(G-protein-coupled receptors,GPCR)。
本实验证明脂氧素A4及其受体激动剂能够上调油酸诱导的急性肺损伤Na+-K+-ATP酶蛋白的表达和酶活性,从而促进肺水清除;脂氧素A4 的上述作用是通过与其受体(ALX)结合发挥作用的。我们的研究进一步阐明了脂氧素A4及其受体对大鼠急性肺损伤Na+-K+-ATP酶的作用及促进肺水重吸收的机制,为治疗ARDS 提供新的策略和依据。
[参考文献]
[1] Skou JC. Nobel lecture:The identification of the sodium pump[J]. Biosci Rep,1998,18:155-169.
[2] Blanco G,Mercer RW. Isozymes of the Na-K-ATPase:Heterogeneity in structure,diversity in function[J]. Am J Physiol Renal Physiol,1998,275:F633-F650.
[3] Wang CY,Calfee CS,Paul DW,et al. One-year mortality and predictors of death among hospital survivors of acute respiratory distress syndrome[J]. Intensive Care Med,2014, 40:388.
[4] Matthay MA,Clerici C,Saumon G. Invited review:Active fluid clearance from the distal air spaces of the lung[J]. J Appl Physiol,2002,93:1533-1541.
[5] Mobasheri A,Avila A,Cozar I,et al. Na,K ATPase isozyme diversity:Comparative biochemistry and physiological implications of novel functional interactions[J]. Biosci Rep,2000,20:51-91.
[6] McDonough A,Geering K,Farley R. The sodium pump needs its subunit[J]. FASEB J,1990,4:1598-1605.
[7] Mutlu GM,Sznajder JI. Beta(2)-agonists for treatment of pulmonary edema:Ready for clinical studies[J]. Crit Care Med,2004,32(7):1607-1608.
[8] Dada LA,Sznajder JI. Mechanisms of pulmonary edema clearance during acute hypoxemic respiratory failure:Role of the Na,K-ATPase[J]. Crit Care Med,2003,31(4 Suppl):S248-252.
[9] Vadász I,Raviv S,Sznajder JI. Alveolar epithelium and Na,K-ATPase in acute lung injury[J]. Intensive Care Med,2007,33(7):1243-1251.
[10] Rajasekaran SA,Hu J,Gopal J,et al. Na,K-ATPase inhibition alters tight junction structure and permeability in human retinal pigment epithelial cells[J]. Am J Physiol Cell Physiol,2003,284:C1497-C1507.
[11] Rajasekaran AK,Rajasekaran SA. Role of Na-K-ATPase in the assembly of tight junctions[J]. Am J Physiol Renal Physiol,2003,285:F388-F396.
[12] Geering K. Functional roles of Na,K-ATPase subunits[J]. Curr Opin Nephrol Hypertens,2008,17(5):526-532.
[13] Tsushima K,King LS,Aggarwal NR,et al. Acute lung injury review[J]. Intern Med,2009,48(9):621-630.
[14] Tang M,Chen L,Li B,et al. BML-111 attenuates acute lung injury in endotoxemic mice[J]. Journal of Surgical Research,2016,(9):619-630.
[15] Cheng X,He SQ,Yuan J,et al. Lipoxin A4 attenuates LPS-induced mouse acute lung injuryvia Nrf2-mediated E-cadherin expression inairway epithelial cells[J]. Free Radical Biologyand Medicine,2016,(1):52-66.
[16] Chiang N,Serhan CN,Dahlen SE,et al. The lipoxin receptor ALX:Potent ligand-specific and stereoselective actions in vivo[J]. Pharmacol Rev,2006,58:463-487.
[17] Qi W,Li H,Cai XH,et al. Lipoxin A4 activates alveolar epithelial sodium channel gamma via the microRNA-21/PTEN/AKT pathway in lipopolysaccharide-induced inflammatory lung injury[J]. Laboratory Investigation,2015, 95:1258-1268.
[18] Higgins G,Fustero Torre C,Tyrrell J,et al. Lipoxin A4 prevents tight junction disruption and delays the colonization of cystic fibrosis bronchial epithelial cells by Pseudomonas aeruginosa[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2016,310(11):L1053-1061.
[19] 陈芳,李茹,李林艳,等. 脂氧素A4对内毒素攻击的肺泡Ⅱ型上皮细胞Na+-K+-ATP酶的影响[J]. 中华急诊医学杂志,2010,19(12):1260-1274.
[20] Gong J,Guo S,Li HB,et al. BML-111,a lipoxin receptor agonist,protects haemorrhagic shockinduced acute lung injury in rats[J]. Resuscitation,2012,83:907.
[21] Li H,Wu Z,Feng D,et al. BML-111,a lipoxin receptor agonist,attenuates ventilator-induced lung injury in rats[J]. Shock,2014,41(4):311-316.
(收稿日期:2016-05-28)