miRNA对垂体瘤细胞株中增生细胞核抗原、垂体瘤转化基因、血管内皮细胞生长因子表达的影响
2016-01-28李东
李 东
(寿光市中医医院神经外科,山东 寿光 262700)
miRNA对垂体瘤细胞株中增生细胞核抗原、垂体瘤转化基因、血管内皮细胞生长因子表达的影响
李东
(寿光市中医医院神经外科,山东寿光262700)
摘要〔〕目的探讨微小RNA(miRNA)对垂体瘤细胞株中增生细胞核抗原(ki-67)、垂体瘤转化基因(PTTG)、血管内皮细胞生长因子(VEGF)表达影响。方法将培养好的人垂体瘤细胞放入A、B两培养瓶中培养,其中A培养瓶培养基中加入标记的miRNA基因2 μl,而B培养瓶只是加入等量的培养基,采用RT-PCR及 Western印迹法检测培养24 h后人垂体瘤细胞中ki-67、PTTG、VEGF基因及蛋白表达水平。结果①A培养瓶加标记的miRNA基因后培养24 h,人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF mRNA表达水平明显低于B培养瓶(P<0.05);②A培养瓶加入miRNA基因后培养24 h,人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF蛋白表达水平明显低于B培养瓶(P<0.05)。结论垂体瘤细胞中ki-67、PTTG、VEGF处于高水平表达,而miRNA能够明显降低ki-67、PTTG、VEGF的表达,抑制细胞的生长,对临床具有指导意义。
关键词〔〕微小RNA;垂体瘤;增生细胞核抗原;垂体瘤转化基因;血管内皮细胞生长因子
第一作者:李东(1979-),男,主治医师,主要从事神经外科学研究。
垂体腺瘤虽多数为良性肿瘤,但是过度生长的垂体细胞分泌和释放各种分泌素,导致临床出现激素紊乱表现〔1,2〕。现代医学对垂体瘤的治疗多采取手术、放疗以及药物治疗等方法,但手术容易对大脑中其他重要组织造成副损伤,引起手术并发症,放疗以及药物治疗副反应较多,严重降低患者生活质量〔3〕。垂体腺瘤的病变机制目前尚未完全明确。研究发现〔4〕,微小RNA(miRNA)能够通过完全或不完全与靶RNA配对,阻止miRNA转录、翻译或者降解靶RNA,负向调节相关蛋白的表达,调节机体生长发育;若miRNA失衡表达,将会导致细胞的生长、发育、增殖、分化以及凋亡过程的紊乱,从而促使肿瘤的发生、发展甚至侵袭性生长。本研究通过观察垂体瘤细胞中增生细胞核抗原(ki-67)、垂体瘤转化基因(PTTG)、血管内皮生长因子(VEGF)基因及蛋白表达水平,探究miRNA对垂体腺瘤的影响。
1资料与方法
1.1材料标记的miRNA基因购于陕西钰堂生物科技发展有限公司;人垂体瘤细胞株购于中国医学科学院基础研究所;RPMI-1640培养基及Trizol试剂均购于购于美国GIBCO公司;RT-PCR试剂盒、超纯RNA提取试剂盒和逆转录试剂盒均购于美国Promega公司;兔抗人ki-67抗体、兔抗人PTTG抗体、兔抗人VEGF抗体、引物、Tap酶和二氨基联苯胺(DAB)显色剂购于Cell Signalling Technology 公司。
1.2人垂体瘤细胞及人正常垂体细胞培养无菌操作下,取人垂体瘤细胞株置于RPMI-1640培养基(含10%胎牛血清和2%谷氨酰胺)中,在37℃体积分数为5%的CO2饱和湿度环境中培养,培养24 h至生长对数期,用0.25%胰酶消化细胞,10%体积分数的小牛血清培养基终止消化,按照1∶3传代培养,3 d传代培养1次。
预先置有玻片的24孔板内加入1 ml浓度为2×105/ml的人垂体瘤细胞悬液,置于37℃体积分数为5%的CO2饱和湿度环境中培养,24 h长成单层后,抽取并除去上清液,在适宜环境中培养2 h后,除去上清液,并加入适量的RPMI-1640培养基继续培养。培养24 h后取出玻片,采用苏木素染色成功,于光学显微镜下观察。见图1。
图1 PTTG、VEGF、ki-67在人垂体瘤细胞中的阳性表达(×400)
向预先准备好的A、B两个50 cm3培养瓶中分别加入浓度为2×105/ml的人垂体瘤细胞悬液10 ml,置于37℃体积分数为5%的CO2饱和湿度环境中培养,24 h长成单层后,抽取并除去上清液,除去上清液,培养24 h后,向A培养瓶加入2 μl标记的miRNA基因,向B培养瓶加入等量RPMI-1640培养基,置于适宜环境中继续培养,分别取培养24 h后细胞备用。
1.3RT-PCR法检测人垂体瘤细胞中ki-67、PTTG、VEGF基因表达水平
1.3.1总RNA的提取分别取A、B两培养瓶人垂体瘤细胞置于0.2%胶原酶中消化,采用D-Hank液清洗,4℃冰浴30 min,1 200 r/min离心8 min,制备成单细胞沉淀,向单细胞沉淀中加入1 ml Trizol试剂,采用超纯RNA提取试剂盒提取人垂体瘤细胞中总RNA。实验操作按产品说明书进行,用紫外分光光度法测定RNA的OD260/OD280确定总RNA纯度。
1.3.2反转录聚合酶链反应根据逆转录试剂盒要求进行反转录反应操作,按照相关文献资料设计聚合酶链反应(PCR)中内参照ki-67、PTTG、VEGF和β-actin引物,将RNA模板、引物、5×RT Buffer 和RNase-free水溶解并置于冰上备用,将2 μl Primer mix试剂和10 μl消化后RNA分别加入20 μl反应体系的第一部分,混匀。PCR反应体系为:SYBR Premix Ex Taq(2×)10 μl,PCR正义引物(10 μmol/L)0.4 μl,PCR正义引物(10 μmol/L)0.4 μl,ROX Reference Dye Ⅱ 0.4 μl,cDNA模板2 μl,dH2O 6.8 μl,总反应体系为20 μl。经过PCR反应条件的优化,PCR循环条件为94℃30 s,55℃30 s,72℃1 min,共35个循环,最后72℃再延伸5 min。引物序列见表1。
表1目的基因的实时定量RT-PCR引物序列
引物名称引物序列(5'-3')产物大小(bp)ki-67正义CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAA747ki-67反义ACACTCCAGCTGGGAGCTGGTGTTGTPTTG正义GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGT645PTTG反义TGCGGGTGCTCGCTTCGGCAGCVEGF正义CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAA524VEGF反义ACACTCCAGCTGGGTAGGCAGTGTCAβ-actin正义CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAA519β-actin反义ACACTCCAGCTGGGTAGCTTATCAGAC
1.3.3结果观察PCR产物经1.2%琼脂糖凝胶电泳后,溴乙啶染色,通过成像分析scion软件计算和比较ki-67、PTTG和VEGF产物条带的吸光度值,并与β-actin条带光密度值比较,计算出ki-67、PTTG和VEGF在人垂体瘤细胞中mRNA表达含量相对值。
1.4Western印迹法检测人垂体瘤细胞中ki-67、PTTG和VEGF表达无菌操作下,分别取A、B两培养瓶人垂体瘤细胞,将选取好的人垂体瘤细胞经磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤,洗涤后离心收集,用冰冷PBS洗涤细胞3次后,加入裂解缓冲液,摇匀,4℃冰浴30 min,1 200 r/min离心10 min,吸取上清液,即胞质蛋白。采用二喹啉甲酸(BCA)法对样品蛋白质进行蛋白定量。调整样品蛋白量为30~40 μg后进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳分离,并将蛋白质转移到聚偏氟乙烯(PVDF)膜上。PBS洗膜5 min后,PBS溶解封闭PVDF 2 h。继而加入兔抗人ki-67抗体、兔抗人PTTG抗体、兔抗人VEGF抗体(1∶1 000稀释)或抗β-actin(1∶2 000稀释),置于4℃环境中过夜。PBS洗涤3次,10 min/次,加入二抗,温室孵育2 h。再次用PBS洗涤3次,10 min/次。将PVDF膜增强化学发光法(ECL)显色,在暗室中将PVDF曝光于X光片中,用凝胶成像系统扫描分析结果。
1.5统计学方法应用SPSS17.0统计学分析软件,组间比较进行t检验。
2结果
2.1总RNA提取结果紫外分光光度法测定中可知人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF总RNA OD260/OD280值在1.8~2.0之间,在1.2%的琼脂糖凝胶电泳可观察到28 S、18 S、5 S三条产物条带,说明提取人垂体瘤细胞中的总RNA完整性较好。
2.2A、B两个培养瓶中人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF mRNA表达比较A培养瓶加标记的miRNA基因后培养24 h,人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF mRNA表达水平(0.41±0.11,0.38±0.13,0.34±0.06)明显低于B培养瓶(0.66±0.05,0.71±0.12,0.69±0.11)(P<0.05)。见图2。
2.3A、B两个培养瓶中人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF蛋白表达比较A培养瓶加入miRNA基因后培养24 h,人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF蛋白表达水平(0.37±0.13,0.41±0.09,0.32±0.07)明显低于B培养瓶(0.56±0.12,0.61±0.11,0.62±0.13)(P<0.05)。见图3。
图2 人垂体瘤细胞ki-67、PTTG和VEGF PCR产物琼脂糖凝胶电泳结果图
图3 人垂体瘤细胞中ki-67、PTTG和VEGF 编码蛋白表达结果图
3讨论
垂体瘤是良性垂体前叶肿瘤,是颅内生长较缓慢的常见肿瘤,肿瘤直径<1 cm,生长限于鞍内者为微腺瘤,除影像学外还需血清内分泌素含量测定确诊;直径>1 cm并已超越鞍膈者为大腺瘤;肿瘤直径>3 cm者为巨腺瘤〔5~7〕。微腺瘤和大腺瘤临床主要以内分泌症状表现为主,而巨腺瘤表现为内分泌症状之外还有压迫视神经及高颅内压症状〔8〕。垂体瘤的发病机制是多种因素共同参与、病理生理十分复杂,目前尚未有明确的发病机制。垂体腺瘤虽为良性肿瘤,但是由于颅内结构特殊,手术很难做到完全切除,极易复发,放疗以及药物治疗效果亦不明显〔9〕。研究发现〔10〕,miRNA是一类动植物中的基因表达调控因子,作用于肿瘤相关的脆性位点,对癌基因产生抑制作用,与肿瘤的发生有着密切的关系。
本研究结果说明miRNA通过抑制垂体细胞中ki-67、PTTG、VEGF的表达,抑制肿瘤细胞的生长,削弱肿瘤细胞的侵袭性,有效抑制癌基因,从而阻止垂体肿瘤的发生、发生甚至浸润。VEGF〔11〕是迄今为止最重要的血管形成因子,垂体腺瘤的发生、发展、浸润依赖新生血管的形成和营养供应,垂体腺瘤新生血管的形成依靠VEGF的作用,垂体腺瘤是血运丰富的肿瘤,其的不断、快速的增长从而促使机体分泌大量的VEGF〔12〕。垂体腺瘤的生长还需PTTG通过血管活性物质来促进,碱性成纤维细胞生长因子是PTTG促进垂体腺瘤生长的主要血管活性物质〔13〕。研究发现〔14〕,通过上调垂体瘤组织中PTTG生长因子受体,其VFGE表达水平亦随之增高,说明VEGF和PTTG共同促进垂体腺瘤血管的形成,从而促进垂体腺瘤的生长和浸润。ki-67〔14〕为一种细胞核抗原蛋白,主要存在于增殖细胞核内,在细胞有丝分裂的M期呈现表达高峰,然而不在G0期细胞中表达。ki-67半衰期短,在DNA修复状态的细胞中不表达,能够反映出细胞增殖活性、肿瘤细胞的生长方式和复发等生物学行为,也能够作为肿瘤预后的标志。miRNA能够通过完全或不完全与靶RNA配对,阻止miRNA转录、翻译或者降解靶RNA,负向调节相关蛋白的表达,调节细胞生长、发育、凋亡过程〔15〕。相关研究表明〔15〕,垂体腺瘤细胞中miRNA处于低水平表达,无法抑制癌基因的表达,导致垂体腺瘤细胞无限期增长,从而使机体分泌大量的PTTG、VEGF和ki-67。
综上所述,miRNA能够调节细胞的生长、发育和凋亡的过程,抑制癌细胞的表达,从而降低垂体瘤细胞中PTTG、VEGF和ki-67的表达,有利于提高临床对垂体腺瘤的治疗疗效,改善患者生活质量,对临床实际应用具有重要的指导意义。
参考文献4
1Minematsu T,Suzuki M,Sanno N,etal.PTTG overexpression is correlated with angiogenesis in human pituitary adenomas〔J〕.Endocr Pathol,2006;17(2):143-53.
2龚俊扬.侵袭性垂体腺瘤及其研究进展〔J〕.国外医学:神经病学.神经外科学分册,2000;27(1):27-8.
3王任直.目前垂体腺瘤治疗中存在的问题及解决方法〔J〕.中华医学杂志,2006;86(23):1585-8.
4Li HY,Shen H,Xu Q,etal.Expression of pin1 and ki67 in cervical cancer and their significance〔J〕.J Huazhong Univ Sci Technol Med Sci,2006;26(1):120-2.
5李慧慧,李乐静,白淑平,等.PTTG和VEGF在NSCLC中的表达及相关性研究〔J〕.现代生物医学进展,2007;7(2):218-20,223.
6Shi XY,Yuan XL,Tao Deding,etal.Analysis of DNA ploidy,cell cycle and Ki67 antigen in nasopharyngeal carcinoma by flow cytometry〔J〕.J Huazhong Uni Sci Technol Med Sci,2005;25(2):198-201.
7马艳会,路志涛,周永宁,等.大肠腺癌组织PTTG和VEGF-A及p53表达生物学意义的探讨〔J〕.中华肿瘤防治杂志,2012;19(15):1162-5.
8曹华莉,郑敏.垂体瘤转化基因诱导血管内皮生长因子的分子机制〔J〕.国际皮肤性病学杂志,2012;38(5):323-6.
9Gertych A,Joseph AO,Walts AE,etal.Automated detection of dual p16/Ki67 nuclear immunoreactivity in liquid-based Pap tests for improved cervical cancer risk stratification〔J〕.Ann Biomed Eng,2012;40(5):1192-204.
10程文,高建平,张征宇.微小 RNA 与肿瘤相关性研究〔J〕.医学研究生学报,2011;24(2):203-7.
11于顺江.抗VEGF肿瘤靶向治疗进展〔J〕.癌症进展,2010;8(2):175-9.
12李军,俞兰.VEGF,肿瘤血管再生及抗肿瘤血管生成治疗〔J〕.医师进修杂志: 外科版,2004;27(4):52-4.
13陈凌,刘运生,王陆申,等.垂体腺瘤 PTTG,bFGF,mRNA表达与侵袭性的关系〔J〕.中国耳鼻咽喉颅底外科杂志,2003;9(3):132-5.
14Chesnokova V,Zonis S,Kovacs K,etal.P21(CiP1)restrains pituitary tumor growth〔J〕.Proc Nat Acad Sci USA,2008;105(45):17498-503.
15McCabe CJ,Boelaert K,Tannahill LA,etal.Vascular endothelial growth factor,its receptor KDR/Flk-1,and pituitary tumor transforming gene in pituitary tumors〔J〕.J Clin Endocrinol Metab,2002;87(9):4238-44.
〔2015-02-09修回〕
(编辑袁左鸣)
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中图分类号〔〕R739.41〔
文献标识码〕A〔
文章编号〕1005-9202(2015)24-7033-03;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2015.24.029