APP下载

复发性流产患者蜕膜和绒毛组织中TNF-α、水通道蛋白1的表达变化及意义

2015-04-04郭君丽,郭君红

山东医药 2015年43期
关键词:复发性流产肿瘤坏死因子妊娠

复发性流产患者蜕膜和绒毛组织中TNF-α、水通道蛋白1的表达变化及意义

郭君丽,郭君红

(宝鸡市妇幼保健院,陕西宝鸡721000)

摘要:目的观察复发性流产(RSA)患者蜕膜和绒毛组织中TNF-α、水通道蛋白(AQP)1的表达变化,并探讨其意义。方法采用免疫组化法对60例RSA患者(RSA组)和20例正常早孕人工流产者(对照组)蜕膜及绒毛组织中的TNF-α、AQP1进行检测。结果RSA组、对照组蜕膜组织TNF-α阳性表达率分别为80%(48/60)、60.0%(12/20),AQP1阳性表达率分别为42%(25/60)、55%(11/20),两组两指标相比,P均>0.05。RSA组、对照组绒毛组织中TNF-α阳性表达率分别为75%(45/60)、15%(3/20),AQP1阳性表达率分别为20%(12/60)、25%(15/20),两组两指标相比,P均<0.05。RSA组绒毛组织中TNF-α与AQP1的表达呈负相关(r=-0.385、P<0.05)。结论 RSA患者绒毛组织中TNF-α表达增加、AQP1表达减少,而且两者的表达水平呈负相关关系;TNF-α、AQP1可能共同参与了RSA的发病过程。

关键词:妊娠;病理性妊娠;流产;自然流产;复发性流产;肿瘤坏死因子α;水通道蛋白

doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.43.017

中图分类号:R714.21文献标志码:B

收稿日期:(2015-06-29)

复发性流产(RSA)是指患者与同一性伴侣连续发生2次或2次以上的自然流产,发生率为1%~2%。RSA病因复杂,已知病因有染色体异常、生殖道感染、内生殖器官解剖畸形、内分泌失调、免疫因素、理化环境因素等,仍有约50%的患者病因不明。随着生殖免疫学的飞速发展,已逐渐发现不明原因的自然流产80%与免疫因素相关[1],特别是Th1/Th2型细胞因子表达失衡学说的出现,为RSA的免疫学发病机制研究提供了理论依据。本研究对RSA患者蜕膜和绒毛组织中TNF-α、水通道蛋白(AQP)1的表达变化进行了观察,探讨其在RSA发病中的作用。

1资料与方法

1.1临床资料2012年7月~2014年12月宝鸡市妇幼保健院收治的出现流产症状、临床确诊已经发生难免流产或胚胎停育的RSA患者60例(RSA组),年龄22~40岁,孕周6~10周;其中流产2次者36例、≥3次者24例;本组夫妇染色体核型、生殖道、内分泌、TORCH[T为弓形虫,O为其他(主要指梅毒螺旋体),R为风疹病毒,C为巨细胞病毒,H为生殖道疱疹病毒]、内生殖器结构及抗核抗体检查均无异常。选择同期就诊要求终止妊娠的正常早孕妇女20例作为对照组,年龄28~42岁,孕周6~10周;本组既往无自然流产、死胎、死产史,无染色体、生殖器解剖、内分泌等方面的异常,无自身免疫性疾病史,本次妊娠期间无服药史、病毒感染史及有害有毒物质接触史,无先兆流产症状;B超检查提示宫内妊娠,胚胎原始心管搏动。两组均排除全身疾病或感染性疾病,两组年龄及孕周有可比性(P均>0.05)。两组均接受常规人工流产手术。

1.2蜕膜及绒毛组织中TNF-α、AQP1检测方法两组于人工流产手术中收集无菌新鲜蜕膜和绒毛组织,立即置10%的中性甲醛溶液中固定,梯度乙醇脱水,常规石蜡包埋,连续切片(厚4 μm)。切片HE染色,分别观察蜕膜和绒毛组织形态。采用免疫组化SP法检测蜕膜和绒毛组织中的TNF-α、AQP1,用PBS代替一抗作阴性对照,按试剂盒说明书操作。每例的组织切片随机选取10个高倍视野进行结果判定。按染色强度及阳性细胞所占百分比计分:细胞无色为0分、淡黄色为1分、棕黄色为2分、棕褐色为3分;阳性细胞百分比<5%为0分、5%~25%为1分、26%~50%为2分、>50%为3分;上述两分值相乘,乘积等于0判为阴性、1~3为弱阳性(+)、4~5为中度阳性(++)、≥6为强阳性(+++),+、++、+++均为阳性。

1.3统计学方法采用SPSS13.0统计软件。计数资料比较用χ2检验,相关性分析用Spearman相关分析法。P<0.05为差异有统计学意义。

2结果

2.1两组蜕膜组织中TNF-α、AQP1的表达比较两组蜕膜组织中均有TNF-α和AQP1表达,TNF-α主要表达于蜕膜间质细胞胞质,AQP1主要表达于蜕膜腺体细胞胞膜。RSA组、对照组蜕膜组织TNF-α阳性表达率分别为80%(48/60)、60.0%(12/20),AQP1阳性表达率分别为42%(25/60)、55%(11/20),两组两指标相比,P均>0.05。

2.2两组绒毛组织中TNF-α、AQP1的表达比较两组绒毛组织中均有TNF-α和AQP1的表达,均表达于细胞滋养细胞和合体滋养细胞胞质。RSA组、对照组绒毛组织中TNF-α阳性表达率分别为75%(45/60)、15%(3/20),AQP1阳性表达率分别为20%(12/60)、25%(15/20),两组两指标相比,P均<0.05。

2.3RSA组患者绒毛组织中TNF-α和AQP1表达的相关性 60例RSA患者绒毛组织中TNF-α和AQP1均呈阳性表达者5例、均呈阴性表达者8例,二者的表达呈负相关(r=-0.385,P<0.05)。

2.4RSA组绒毛组织中TNF-α和AQP1表达与复发性流产次数的关系RSA组流产2次者36例,其绒毛组织中TNF-α阳性25例、阴性11例,AQP-1阳性6例、阴性30例;流产≥3次者24例,其绒毛组织中TNF-α阳性20例、阴性4例,AQP-1阳性9例、阴性15例;不同流产次数者绒毛组织中TNF-α和AQP1的阳性表达相比,P均>0.05。

3讨论

生殖免疫学认为胚胎对母体来说是一种同种异体移植物,被母体免疫系统识别并产生免疫应答。蜕膜和绒毛膜是孕早期母体与胚胎直接接触的部分,母胎界面细胞因子对胚胎的免疫耐受起着重要的调节作用[2],这些细胞因子主要由滋养细胞产生,具体表现为早期妊娠排斥与耐受的平衡,特别是辅助T细胞(Th)在妊娠免疫中发挥重要作用。根据分泌的细胞因子类型不同Th分为Th1和Th2两个亚群;Th1主要介导细胞免疫应答,产生胚胎排斥作用;Th2主要介导体液免疫反应,形成免疫耐受保护,使胚胎不受母体免疫系统的排斥[3]。两种免疫应答均受错综复杂的Th1/Th2细胞因子网络调控。正常妊娠时Th1/Th2细胞因子平衡以向Th2为主的模式偏移,一旦平衡向Th1细胞因子偏移,即Th1型细胞因子水平升高,将发挥免疫杀伤作用,可能导致RSA的发生[4]。

TNF-α主要由免疫系统中的抗原呈递细胞如单核-巨噬细胞、Th1细胞等产生,是Th1型细胞因子。生理情况下,适量的TNF-α可调节滋养细胞的正常增殖、分化和凋亡,促进能量代谢及胚胎发育[5],提高孕激素及绒毛膜促性腺激素的合成,刺激细胞滋养层生成尿激酶型血浆素原激活剂,有利于蜕膜细胞外基质降解及胎盘植入,对正常妊娠的维持有重要作用[6]。本研究发现,RSA患者绒毛组织TNF-α表达水平明显高于对照组,与孙岩等[7]的研究结果相似。这一结果提示RSA患者母胎界面高表达TNF-α,可促进滋养细胞凋亡,阻碍绒毛生长,导致蜕膜坏死,阻止孕卵正常发育。陈广莉等[8]研究发现,RSA患者血清中TNF-α水平较正常妊娠者高,也证实TNF-α在RSA中发挥了作用。高浓度的TNF-α可能通过多种途径导致流产:TNF-α与滋养细胞中的相应受体结合,激活Th1型免疫反应,释放出大量有害细胞因子,干扰内分泌网络,导致子宫内环境的稳态破坏,使胚胎发育受阻,胎儿死亡;另一方面,可能是TNF-α本身对血管内皮细胞有直接毒性作用,限制滋养细胞的生长发育,影响胚胎的营养供给及吸收,导致胚胎死亡。

AQP是一组新的疏水性跨膜蛋白,具有调节细胞内外渗透压平衡及血管形成等重要作用,广泛存在于哺乳动物生殖系统,迄今已发现13种,AQP1为其中一种。Mann等[9]研究发现,AQP1在人胎膜中有表达,并定位于羊膜上皮细胞和绒毛膜的滋养细胞,孕早期AQP1主要表达于绒毛膜组织中[10]。AQP1通过增强血管的渗透性和组织间隙的压力,促进内膜细胞外移、迁徙,并可抑制细胞凋亡及促进新生血管生成。本研究发现,RSA患者绒毛膜组织中AQP1表达明显低于正常妊娠者。IL-10是Th2细胞因子,诱导母胎免疫耐受,对正常妊娠起保护作用[11]。王忠慧等[12]认为肺损伤时,IL-10与AQP1之间可通过炎症介质的级联激活,相互间呈不同程度正反馈调控。因此,AQP1可能通过间接方式作用于Th2细胞因子平衡系统,进而维持正常妊娠。

本研究还发现,RSA组患者绒毛组织中TNF-α和AQP1的表达呈负相关,可能与绒毛组织缺血缺氧时TNF-α等促炎因子大量释放,下调AQP1基因表达有关。包呈梅等[13]研究拟胆碱药卡巴胆碱对口服补液烫伤大鼠小肠组织中TNF-α及AQP1表达关系时发现,肠内葡萄糖-电解质液+肠内卡巴胆碱组、肠内卡巴胆碱组及单纯烫伤组AQP1表达量与TNF-α表达量呈负相关。但TNF-α和AQP1相互作用的具体机制尚不清楚,有待进一步研究。

参考文献:

[1] Kwak-Kim J, Gilman-Sachs A. Clinical implication of natural killer cells and reproduction[J]. Am J Reprod Immunol, 2008,59(5):388.

[2] 周吉海,谭季春译.习惯性流产治疗的最新进展[J].日本医学介绍,1997,18(10):471.

[3] Chaouat G, Zourbas S,Ostojic S, et al. A brief review of recent date on some cytokine expressions at the materno-fetal interface which might challenge the classical Th1/Th2 dichotomy[J]. J Reprod Immunol, 2002,53(1-2):241.

[4] Tayade C, Hilchie D, He H, et al. Genetic deletion of placenta growth factor in mice alters uterine NK cells[J]. J Immunol, 2007,178(7):4267.

[5] Brayman MJ, Dharmaraj N, Lagow E, et al. MUC1 expression is repressed by protein inhibitor of activated signal transducer and activator of tanscription-γ[J]. Mol Endocrinol, 2007,21(11):2725-2737.

[6] Idriss HT, Naismith JH. TNF-alpha and TNF receptor superfamily structure fuction relationship[J]. Microsc Res Tech, 2000,150(3):184-195.

[7] 孙岩,陈佩,苏琳,等.TNF-α、IL-6与复发性流产的相关性研究[J].中国妇幼保健,2012,27(25):3940-3944.

[8] 陈广莉,徐又先,明芳.原因不明复发性流产患者血清TNF-α和IL-6水平变化及其临床意义[J].实验与检验医学,2013,31(2):157-159.

[9] Mann SE, Picke EA, Yang BA, et al. Expression and localization of aquaporin 1 and 3 in human fetal membrances[J]. Am J Obstet Gynecol, 2002,187(4):902-907.

[10] Escobar J, Gormaz M, Ardaini A, et al. Expression of aquaporins early in humman pregnancy[J]. Early Hum Dev, 2012,88(8):589-594.

[11] 肖云山,林其德. 妊娠早期蜕膜组织巨噬细胞分泌IL-10/IFN-γ功能的特征[J].现代妇产科进展,2005,14(3):218-221.

[12] 王忠慧,李姗姗,王亚宏,等.乌司他丁对单肺通气患者血浆IL-8、IL-10及肺AQP51、AQP4的影响[J].临床麻醉杂志,2013,29(5):421-424.

[13] 包呈梅,胡森,耿世佳,等.卡巴胆碱对烫伤大鼠口服补液时小肠TNF-α及水通道蛋白-1的影响[J].世界华人消化杂志,2008,16(19):2171-2174.

猜你喜欢

复发性流产肿瘤坏死因子妊娠
宫腔镜治疗慢性宫颈炎患者对改善hs—CRP、TNF、IL水平的作用
慢性心力衰竭患者治疗前后血清CA125、TNF—α水平变化及其与LVEF的关系探究
妊娠期糖尿病与肿瘤坏死因子—α启动子基因多态性相关性的研究
妊娠期糖尿病患者的营养健康指导
高龄孕妇的妊娠结局及其分娩相关危险因素的临床分析
探讨低分子肝素钠在D—二聚体异常升高的复发性流产孕妇治疗中的应用
不明原因复发性流产应用叶酸联合主动免疫治疗效果研究
妇科再造胶囊治疗复发性流产40例疗效观察
消银汤对寻常型银屑病血热证患者血清TNF—α的影响