大鼠尾静脉留置针保留置管的方法和技巧

杨敏 陈历健 王瑞敏 李佟玲

近年来，静脉留置针凭借其优势在医学实验研究中得到了越来越广泛的应用。这些动物实验研究主要局限于家兔及大鼠，与家兔相比较，大鼠具有成本低廉、所需空间小、容易饲养等优点。因此，本研究从节约成本的角度出发，对60只成年大鼠的尾静脉进行了静脉留置针穿刺，了解静脉穿刺的成功率及保留时间，探讨静脉留置针在大鼠实验研究中的可行性，为留置针保留时间的临床实验研究提供依据。

1 材料与方法

1.1 实验动物 Wistar大鼠60只，5～6月龄，雌雄各半，清洁级，体质量350～450 g，无血管损伤，无皮下淤血淤斑，重庆医科大学动物实验中心提供，实验动物生产许可证号SCXK(渝)2012-0001，实验动物使用许可证号SYSK（渝）2012-0001，单笼饲养。

1.2 实验材料 24G密闭静脉留置针、3M透明敷贴、棉签、75%乙醇、棉纱手套、普通橡胶手套、一次性注射器(2m L数个)、肝素帽、生理盐水、5 u/m L肝素生理盐水，医用剪刀、铝皮数个，矿泉水瓶4～5个。

1.3 实验方法

1.3.1 固定 将矿泉水瓶盖去掉，并在距离瓶底2 cm左右处横向减剪掉瓶底[1]，然后在瓶底正中心减掉直径2 cm左右的塑料，留下缺口供鼠尾穿出。根据老鼠喜欢钻洞的习性，将矿泉水瓶底对准大鼠头部，使大鼠可以快速且自然地钻入其内，待大鼠进入瓶内后，将鼠尾从剪掉的瓶底缺口穿出，使鼠尾全部暴露在瓶底外面，固定好瓶身。大鼠头部位于瓶口处，既不影响呼吸也可防止大鼠在瓶内转动身体，此法简单易行，方便操作。

1.3.2 穿刺置管 操作者先将鼠尾用清水洗净，然后用75%乙醇反复擦拭尾部皮肤，让助手按压并固定鼠尾根部，使血管充盈，寻找合适的尾静脉[2]，常规消毒大鼠尾部1/2～1/3段的尾巴，操作者左手拉住并固定尾巴[3]，右手持静脉留置针，使针头与尾巴呈50°～30°角[4]，在血管正上方进针，进针后有落空感，见回血，再平行进针少许，退出部分针芯，继续进针，将导管全部送入静脉，拔出针芯，套上肝素帽，用2m L注射器试注射少量生理盐水，无阻力，局部无肿胀，证实穿刺成功后，用3M透明敷贴缠绕鼠尾部固定留置针。为防止大鼠撕咬，用铝皮环形缠绕在留置针处，再用胶布呈螺旋形缠绕在铝皮上，包裹、固定好后放回鼠笼内饲养。

1.3.3 置管后护理 大鼠可自由进食，单笼喂养，以避免大鼠之间的相互争斗，影响置管时间。同时观察尾端有无异常，如穿刺点出血、留置针位置、尾端血运情况、饮食及其他健康状况等，发现问题及时处理。

每天清洁鼠笼，保持其清洁、干燥，根据情况更换铝皮及胶布，保证留置针局部完好。每隔12小时注射生理盐水1次，剂量为6m L/kg，注射完毕后用肝素生理盐水0.3m L冲管，保持管腔通畅。

1.3.4 实验记录 记录每个大鼠的操作时间、穿刺置管情况，实验完毕后继续观察并记录留管时间、置管情况。

2 结果

60只大鼠均在清醒安静状态下完成操作，穿刺成功率为100%，操作平均时间为（4.07±0.76）m in，低于5m in。

实验过程中4只大鼠尾静脉穿刺困难，反复穿刺后均穿刺成功，大鼠均保持自由活动，留置针的保留时间在（9.26±1.14）d。

3 讨论

静脉留置针作为一次性金属针的代替品在临床护理及科学研究领域已占有一席之地，广大科研工作者为了探讨静脉留置针的精确留置时间[5]，进行了一些动物实验，考虑到实验的可行性、可操作性，多数动物实验采用的是成年家兔。虽然其实验可行性、操作性强，但成本较高。本研究主要从节约成本的角度出发，试着在大鼠尾静脉进行静脉留置针置管的尝试，取得了一定的成效。

由于操作者具有丰富的静脉穿刺经验，只要在一定程度上限制大鼠的活动，把握好穿刺点及进针角度，就可以提高穿刺成功率和穿刺时间，所以实际过程中尾静脉穿刺时间用时较短，主要工作放在了留置针的固定上，必须小心谨慎，因为它与留置针的保留时间密切相关。需要注意的是，操作中一定要注意留置针固定的松紧度，同时必须暴露出鼠尾远端，以方便观察鼠尾部的血供情况。由于大鼠是自由活动，所以固定后应该随时观察局部皮肤情况，一旦发现尾部淤血或有颜色变化，给予及时处理。

长期以来，如何延长大鼠尾静脉留置针的留置时间是广大科研工作者密切关注的问题，本实验早期采用了国内陈学新等[6]报道的用丝线固定针柄，但经过实践后发现，用丝线固定后放回鼠笼，很快就会被撕咬掉，血液斑迹到处都是。经过思考，本研究采取了改良后的固定方法，连续观察了1周，最长的保留时间为96 d，最短也有73 d。由于大鼠生性喜好啃咬，留置针外的铝皮套管上的胶布被不同程度的破坏，但没有导致留置针的破损和脱出。所以，实验期间内每天都要更换胶布，确保留置针的安全性。由于本研究对置管后固定、护理方法的改进，因此留置时间比钟庆等[7]、刘秉彦等[8]报道的时间长，所以本研究认为大鼠代替家兔的静脉留置针留置时间的实验研究是可行的，只要操作及护理方法改进，操作是很容易掌握的。也为今后静脉留置针保留置管的动物实验研究提供一定的基础。

本研究与传统的家兔方法比较，一是节约了实验成本，二是可以进行大样本的实验研究，为留置针留置时间的动物实验提供更可靠的研究依据；不足之处：由于大鼠的好动性，护理上较困难，稍有不当，容易造成大鼠啃咬尾端，造成实验失败；其次，本研究的样本量较小，还需要进行大样本量的研究；除此之外，还要加强大鼠置管后的护理，改进护理方法，进一步延长留置针的留置时间，为静脉留置针其他的实验研究提供更好的实验保障。

[1] 袁林祥，刘湘丹，徐玉琴，等.自制大鼠固定装置在大鼠断尾采血中的应用[J].局解手术学杂志，2015，24（1）:27-28.

[2] 嵇承栋，熊源长，郭旋，等.实验大鼠固定装置的设计及尾静脉注射的方法研究[J].中国基层药学，2013，20（12）:3371-3372.

[3] 彭艳，姚吉龙.大鼠尾静脉注射方法的比较[J].海南医学，2012，23（2）:112-113.

[4] 胡霄，王震，曾柏瑞，等.静脉留置针在大鼠尾静脉注射中的方法和技巧[J].昆明医科大学学报，2013，34（1）：8-10.

[5] 毕秀芝，林丽丽，于艳华.静脉留置针安全留置时间的实验研究[J].解放军护理杂志，2008，25（12A）：21-22.

[6] 陈学新,郑月梅,熊利泽.SD大鼠尾静脉穿刺置管实用技术[J].宁夏医学院学报,2008，30(1):114.

[7] 钟庆，周淑敏，伍佳莉，等.清醒大鼠经皮穿刺大鼠尾静脉保留置管的方法改进[J].重庆医学，2010，39（7）:852-853.

[8] 刘秉彦，白殿青，邱金成，等.实用改良大鼠尾静脉穿刺置管术[J].海南医学，2011，22（14）：15-16.