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FGF-23(R176Q)过表达对成年小鼠下颌骨形成和矿化的影响*

2015-03-14郑阳玉

重庆医学 2015年7期
关键词:下颌骨聚糖口腔医学

刘 洪,孙 雯,郑阳玉

(1.盐城卫生职业技术学院口腔医学技术教研室,江苏盐城224005;2.南京医科大学解剖学系 210029;3.南京医科大学口腔医学研究所 210029)

常染色体显性遗传低磷性佝偻病(autosomal-dominant hypophosphatemic rickets,ADHR)[1]是一种常见的佝偻病。导致ADHR的主要原因在于FGF-23(R176Q)错义突变后无法被蛋白水解酶水解,导致FGF-23在体内蓄积,肾脏磷酸盐回收不足导致磷酸盐尿,肾脏1-羟化酶(1-alpha-hydroxylase,1-ase)的合成被抑制,1,25(OH)2D3合成减少[2]。利用转基因的手段将错义突变的人FGF-23基因转入小鼠,构建ADHR的小鼠动物模型FGF-23(R176Q)转基因小鼠。表型分析发现,FGF-23(R176Q)转基因小鼠表现出发育缓慢、肌张力降低、手足搐搦、囟门闭合不全等佝偻病的症状,与ADHR患者的症状基本一致[3]。但是,FGF-23(R176Q)过表达对下颌骨的形成、矿化是否有影响,目前,未见有相关报道。本研究利用8周龄的FGF-23(R176Q)转基因小鼠和同窝的野生型小鼠,通过X线扫描、组织学等手段进行观察,试图阐明FGF-23(R176Q)对小鼠下颌骨形成和矿化是否有影响以及作用机制。

1 材料与方法

1.1 实验动物 选用同窝的8周龄野生型(wild type,WT)小鼠和FGF-23(R176Q)转基因小鼠各15只,雌雄不限,饲养于无特殊病原体级动物房,使用常规饮食(1.0%钙,0.5%磷)进行饲养。

1.2 动物基因型鉴定及分组 剪取1mm长鼠尾,使用酚-氯仿-异戊醇法进行DNA的提取,通过聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)进行小鼠基因型的鉴定。PCR反应条件为:94℃预变性4min,94℃变性45s,55℃退火45s,72℃延伸45s,共进行30个循环,最后72℃延伸10min。PCR产物进行凝胶电泳,在紫外灯下进行观察。根据基因型的结果分为TG组和WT组,PCR电泳结果有436bp条带者为FGF-23(R176Q)小鼠,无条带者为 WT小鼠[4]。

1.3 血清学检查 小鼠使用乙醚进行麻醉,麻醉后固定于动物台上,使用1mL注射器进行心脏采血,4℃下以2 000 r/min离心10min,抽取上层血清,使用放射免疫法进行血清钙、磷和1,25(OH)2D3浓度检测。

1.4 取材 解剖分离小鼠的左侧下颌骨并免疫电镜固定液固定,采用乙二胺四乙酸(EDTA)法脱钙2周,脱水包埋,按照下颌第1磨牙近中根根管方向对下颌骨进行横断面切片,切片厚度5μm。解剖分离小鼠的左侧下颌骨,使用75%乙醇固定,进行CT检查。

1.5 CT检查 使用SkyScan 1072scanner扫描仪对75%乙醇固定的小鼠下颌骨进行扫描检查,扫描电压100kV,电流98 mA,通过CT检查观察两组小鼠的下颌骨骨密度变化情况。

1.6 染色观察

1.6.1 总胶原染色 石蜡切片脱蜡水化,用配制好的苦味酸直红染色液孵育1h,流水冲洗5min,苏木精染色10min,梯度乙醇脱水,透明,中性树胶封片,光学显微镜下观察。

1.6.2 二聚糖免疫组织化学染色 石蜡切片使常规脱蜡水化,用5%正常兔血清封闭20min,分别加入羊抗鼠二聚糖一抗(1∶500,美国Santa Cruz公司),4℃孵育过夜,PBST清洗,加兔抗羊IgG二抗(1∶200,美国Sigma公司),室温孵育30 min;PBST清洗,加Elite-ABC(英国Vector公司)孵育30min,PBS清洗,加DAB溶液(英国Vector公司)室温避光孵育5~8 min,苏木精复染1min,常规脱水透明,中性树胶封片,光学显微镜下观察摄片,计算聚糖在下颌骨中的阳性面积比例。

1.6.3 HE染色 石蜡切片使常规脱蜡水化,苏木素染色10 min,流水冲洗后使用伊红染色30s,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片,在光学显微镜下测量2种不同基因型小鼠下颌骨成骨细胞密度(Ob.s/B.Pm)。

1.7 骨钙素(osteocalcin,OCN)和Ⅰ型胶原mRNA表达水平检测 解剖小鼠的下颌磨牙,一步法提取总RNA,常规方法进行逆转录,利用real time RT-PCR方法检测下颌骨的OCN和Ⅰ型胶原(typeⅠcollagen)基因的表达水平。OCN正向引物序列为:5′-CAA GTC CCA CAC AGC AGC TT-3′,反向引物序列为:5′-AAA GCC GAG CTG CCA GAG TT-3′,产 物 370 bp,Ⅰ型胶原正向引物序列为:5′-TCT CCA CTC TTC TAG TTC CT-3′,反向引物序列为:5′-TTG GGT CAT TTC CAC ATG C-3′,产物269bp,使用 Applied biosystems 7300型实时定量RT-PCR仪扩增并进行统计分析实验结果,以WT组的表达量作为参照。

1.8 统计学处理 采用SPSS13.0统计学软件进行分析,组间单因素方差分析,以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 血清学指标检查 WT组小鼠血清钙、磷和1,25(OH)2D3浓度均明显高于TG组,而WT组的PTH的浓度低于TG组,差异有统计学意义(P<0.05),见表1。

表1 两组小鼠血清学指标检查(x±s)

2.2 CT检查结果 CT的检查结果显示,而TG组颌骨X线阻射程度低于WT组小鼠,并且TG组下颌第1磨牙有龋坏发生(图1)。

图1 2种小鼠CT扫描

2.3 总胶原染色结果 WT组下颌骨相对骨量为(68.56±19.65)%;TG组下颌骨相对骨量为(38.14±14.29)%,TG组的下颌骨相对骨量低于 WT组,差异有统计学意义(t=4.85,P<0.05),见图2。

图2 2种小鼠总胶原染色结果(×200)

2.4 HE染色结果 通过对HE染色结果进行统计分析,结果发现,WT组成骨细胞密度(26.24±7.56)/mm,而 TG组为(14.68±6.89)/mm,WT组成骨细胞密度高于 TG组,差异有统计学意义(t=4.38,P<0.05),见图3。

图3 2种小鼠HE染色结果(×400)

2.5 免疫组织化学染色结果 通过对TG组和WT组的DSP和聚糖免疫组织化学阳性百分比进行统计分析,结果发现WT

组的聚糖阳性百分比为(6.52±1.28)%,TG 组为(12.68±2.54)%,TG组高于 WT组,差异有统计学意义(t=8.39,P<0.05),见图4。

图4 2种小鼠聚糖免疫组织化学染色结果(×400)

2.6 ALP和Ⅰ型胶原mRNA表达水平检测 通过使用RTPCR检测TG组和WT组OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达水平,结果发现WT组的OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达水平均明显高于TG组,差异有统计学意义(P<0.05),见表2。

表2 两组小鼠OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达

3 讨 论

本研究发现TG组小鼠的血清钙、磷和1,25(OH)2D3的浓度均低于WT组小鼠,并且差异有统计学意义(P<0.05)。其原因在于体内过高浓度突变的FGF-23抑制1羟化酶的活性,导致1,25(OH)2D3的合成减少,同时减少肾脏、小肠对钙和磷的重吸收,从而导致了血清钙、磷浓度降低[5]。

CT扫描结果表明,TG组小鼠的下颌骨X线透光率明显高于WT组小鼠,表明TG小鼠下颌骨存在矿化障碍,这个研究结果与对1-羟化酶敲除小鼠研究结果基本一致[6]。同时,总胶原染色结果显示TG组小鼠的下颌骨骨量明显低于WT组,差异有统计学意义(P<0.05)。同时,HE染色结果也发现TG组的单位长度上的成骨细胞数目也明显少于WT组,差异有统计学意义(P<0.05)。上述研究结果表明,FGF-23(R176Q)过表达导致了成骨细胞减少,进而影响了下颌骨的骨基质的形成和矿化。此外,二聚糖的免疫组织化学结果也提示FGF-23(R176Q)过表达导致了二聚糖在下颌骨中的表达增加。聚糖仅在未矿化的组织中如前期牙本质、未矿化类骨质表达[7],矿化完成后二聚糖即被分解,而高浓度的二聚糖能够抑制矿化过程的持续进行[8]。本研究同样表明,当 FGF-23(R176Q)过表达时,二聚糖在下颌骨骨基质的蛋白沉积水平增加,表明其下颌骨骨基质中未矿化的基质比例明显增加,由此导致了下颌骨矿化障碍。

此外,FGF-23(R176Q)转基因小鼠下颌骨的OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达水平均明显低于 WT小鼠,表明FGF-23(R176Q)过表达抑制了下颌骨成骨细胞的OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达。研究表明,OCN能够促进羟基磷灰石晶体的形成和沉积[9],能促进牙齿和骨骼的矿化[10-11],而Ⅰ型胶原是骨骼的主要胞外基质,在骨质的形成中起到无机质矿化的框架作用[12]。作者研究发现,FGF-23(R176Q)在体内过表达一方面导致抑制了下颌骨成骨细胞Ⅰ型胶原的合成,导致了下颌骨的胞外基质分泌减少,另外一方面导致了下颌骨成骨细胞OCN合成减少,导致了下颌骨矿化出现异常。

本研究发现,FGF-23(R176Q)转基因小鼠下颌骨出现了骨质疏松、矿化不良等表型,与作者以前研究的1-羟化酶基因敲除小鼠的下颌骨的表型[13-15]较为相似,其主要原因在于FGF-23(R176Q)过表达抑制了1,25(OH)2D3的合成,同时还导致了低钙、低磷血症,并且还导致下颌成骨细胞密度下降,减少了OCN和Ⅰ型胶原mRNA表达水平,阻碍了下颌骨胞外基质的合成与分泌和矿化过程的进行,最终阻碍了下颌骨的正常发育和矿化。

[1] ADHR Consortium.Autosomal dominant hypophospha-taemic rickets is associated with mutations in FGF-23[J].Nat Genet,2000,26(3):345-348.

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