转化生长因子β介导腹膜粘连形成的分子机制研究进展
2015-02-11邓璐璐综述毛建文审校
邓璐璐(综述),毛建文(审校)
(广东药学院生物教研室,广州 510006)
转化生长因子β介导腹膜粘连形成的分子机制研究进展
邓璐璐△(综述),毛建文※(审校)
(广东药学院生物教研室,广州 510006)
腹膜粘连是腹部外科手术后常见的并发症,是导致慢性腹痛、机械性肠梗阻以及女性不孕的主要原因,至今在国际上仍然认为腹膜粘连的产生是不可避免的[1]。转化生长因子β(transformation growth factor β,TGF-β)是公认的促粘连因子,其参与了成纤维细胞的形成和细胞外基质(extracellular matrix,ECM)的沉积,双向调节细胞的生长,其导致腹膜粘连的分子机制一直是国内外学者研究的重点。现对TGF-β介导腹膜粘连形成的分子机制研究进展进行综述。
1TGF-β与腹膜粘连的关系
腹膜粘连是指经过外科手术的损伤摩擦后,由于组织缺血缺氧,间皮层细胞受损,同时巨噬细胞活化产生细胞介质,成纤维细胞不断增生迁移,最终导致ECM过度沉积而形成的永久性粘连[2]。TGF-β具有多样生物学活性,广泛参与体内细胞间的相互作用,被认为是启动间质细胞增殖、形成ECM并抑制其降解的关键因子,在腹膜粘连过程中具有重要作用[3]。间皮细胞受损时,在TGF-β等细胞因子的作用下纤维母细胞向受损位点迁移、增殖,并分泌纤维蛋白,纤维沉积在表面形成纤维结块[4-5]。Chen等[6]研究证实,TGF-β是诱导肌成纤维细胞分化以及启动纤维肌动蛋白表达的重要因子。TGF-β可促进细胞增殖、迁移、入侵以及上皮间质转型等生理功能的发生。Falk等[7]也证实,在腹膜受损后浆膜液中低水平的TGF-β1可促进人间皮细胞增殖,而高水平的TGF-β则抑制细胞增殖,暗示不同生理水平的TGF-β不同程度地参与了腹膜粘连的形成过程。Painemal等[8]研究发现,人体纤维化肠壁组织中TGF-β1的表达量显著高于正常肠壁组织,持续高表达的TGF-β1不仅可直接促进黏膜层细胞纤连蛋白、胶原蛋白表达量的增高,而且刺激肠间质细胞分泌结缔组织生长因子、血管内皮生长因子等促粘连分子,促使ECM合成与降解失衡,导致肠壁表面ECM大量沉积,最终形成纤维化粘连。
TGF-β1不仅可以促进胶原蛋白纤连蛋白合成,还可以刺激成纤维细胞迁移和增殖,并抑制间皮细胞愈合以及胶原酶和蛋白酶,如基质金属蛋白酶1(matrix metalloproteinase 1,MMP-1)的产生,从而使ECM的降解异常,最终形成永久性粘连[9-10]。
2关于腹膜粘连形成的信号转导通路
2.1TGF-β与Smads通路Smads是最早被证实的TGF-β受体激酶底物,其将TGF-β信号由胞内通过1型受体转入核内,从而调控基因的特异性表达[11]。TGF-β1/Smads 信号通路也被认为是致纤维化最为经典的信号通路。Smads蛋白按照功能可分为3类:第1类受体激活型Smad(R-Smad),其是TGF-βRⅠ的直接效应分子,成员有Smad 1、2、3、5、8;第2类通用型Smad(Co-Smad),Co-Smad在脊椎动物中只有Smad 4,所有TGF-β超家族的信号分子都需要与Smad 4结合才能进入细胞核;第3类抑制型Smad(I-Smad),只有Smad 6和Smad 7,它们是某些TGF-β信号转导通路的抑制剂。Smad蛋白特异性介导TGF-β信号的关键在于细胞膜表面的Smad锚定受体激活蛋白(Smad anchor for receptor activation,SARA),SARA上包含FYVE结构域和Smad结合结构域,其在磷酯酰-肌醇-3磷酸的作用下可以与TGF-βR形成SARA-Smad-TGF-βR复合物,促进TGF-βRⅠ与Smad 2/3结合,并特异性磷酸化Samd 2和Samd 3,然后与Samd 4结合形成二聚体共同转入核内,激活转录因子进行基因表达调控。二聚体进入细胞核后,Smads可与核内蛋白辅助活化因子或辅助抑制因子结合,也可能直接与靶基因启动子DNA结合,通过改变核小体结构或染色质模板重塑控制靶基因的转录活性[12]。
相关文献证明,TGF-β/Samds信号通路在腹膜ECM的形成和纤维化过程中有重要作用[13-15]。TGF-β1可提高Smad 2和Smad 3的磷酸化水平,激活纤维细胞的活性,促进胶原蛋白合成,提示TGF-β1/Samds信号通路可能参与了ECM的生成[16]。另外,TGF-β通过Smad 3蛋白诱导金属蛋白酶组织抑制剂1的合成,抑制ECM的降解,另一方面也抑制MMP-1的合成,从而促进纤维细胞的增殖[17]。研究表明,在TGF-β1的作用下,敲除Smad 4基因能够抑制ECM的沉积[18]。Meng等[19]研究提示,敲除Smad 4基因能够抑制Smad 3绑定到合成胶原蛋白的启动子区域,减弱纤维化形成。总而言之,TGF-β/Samds信号通路不仅参与胶原蛋白的合成过程,也参与ECM的沉积和降解过程,更促进了纤维化过程,其从多个方面促进腹膜粘连的形成。
2.2TGF-β与丝裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPK)通路MAPK是广泛存在于哺乳动物细胞内的丝/苏氨酸蛋白激酶超家族,其可将细胞质的信号转入到细胞核内,并进行基因调控,其参与细胞的生长、增殖、分化以及纤维化等多个生理过程,是细胞信号的重要转导通路[20]。MAPK转导系统由上游激活物、核心模件蛋白以及下游作用底物组成,其中上游激活物包括多种蛋白质因子,核心模件蛋白包括MAPK、MAPK激酶、MAPK激酶的激酶,下游底物包括转录因子和蛋白激酶等。MAPK主要成员有细胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)、氨基末端激酶(Jun N-terminal kinase,JNK)以及p38MAPK。
ERK主要由ERK1和ERK2两种亚型构成,其参与细胞膜到细胞核的信号转导,是MAPK的一条重要途径。ERK信号通路中最为经典的是Ras-Raf-MEK1/2-ERK1/2转导途径。生长因子与细胞膜上的酪氨酸激酶受体结合,通过一系列反应激活Ras蛋白,同时Raf发生磷酸化,进而激活MEK1/2,而MEK1/2活化ERK1/2环内的苏氨酸和酪氨酸残基,并使其发生磷酸化,最终激活ERK1/2。TGF-β可对ERK1/2信号通路产生重要影响。在人乳腺癌细胞中添加TGF-β,10 min后可观察到ERK的表达显著增加[21]。Xie等[22]在人腹膜间皮细胞中发现,TGF-β通过激活MAPK的ERK1/2途径使纤连蛋白表达增加,若使用特异性阻断剂阻断ERK1/2通路,则抑制了纤连蛋白的高表达。Chen等[23]用TGF-β1处理肺癌细胞A549 48 h后发现,细胞变成纤维状,并且钙粘蛋白和波形蛋白等上皮标志物减少;进一步研究发现,此结果是通过磷酸化ERK1/2促进细胞迁移及上皮间质转型,暗示ERK1/2信号通路对由TGF-β1诱导的细胞迁移有重要作用。
JNK在细胞外信号转入细胞核的转导过程中具有重要作用。JNK蛋白包括JNK1、JNK2、JNK3,通过磷酸化c-Jun的Ser63和Ser73位点磷酸化下游的c-Jun,激活c-Jun的转录活性。研究指出,JNK是纤维化过程的重要调节者[24]。Yue等[25]报道,在人乳腺癌和结肠癌细胞中,TGF-β可激活JNK的表达。在小鼠的成纤维细胞中,JNK协同TGF-β诱导Smad 7 mRNA的表达,负调控Smad通路[26]。
p38MAPK是由360个氨基酸组成的酪氨酸磷酸化蛋白激酶,家族成员包括p38α、p38β、p38γ和p38δ,其中p38α表达最为广泛[27]。不同的p38MAPK信号通路在不同细胞中介导不同的生物学效应。Hung等[28]和Tsukada等[29]的研究都表明,在间皮细胞中通过p38MAPK途径可以刺激胶原基因的表达,而且这一过程受TGF-β1调节,说明TGF-β1通过激活p38MAPK途径促进胶原蛋白的生成,从而促使ECM沉积,说明p38MAPK信号通路与腹膜粘连的形成有很大关系。
MAPK通路参与腹膜粘连的形成过程,与ECM的表达与降解失衡、细胞迁移以及纤维化都有一定关系,说明MAPK 作为TGF-β的下游信号通路在腹膜粘连形成中具有重要作用。
2.3TGF-β与RhoA GTPase/ROCK通路Rho/ROCK信号转导通路的关键信号分子包括Rho GTP酶、RhoA/Rho激酶(Rho-associated kinase,ROCK)以及肌球蛋白轻链激酶(myosin light chain kinase,MLCK)。Rho GTP酶由200~300个氨基酸组成,是相对分子质量为20 000~30 000的单亚基信号多肽,具有GTP酶活性。Rho GTP酶是真核细胞内一类重要的信号转导分子,是许多膜表面受体,如G蛋白偶联受体、酪氨酸激酶受体、细胞因子受体以及黏附分子受体的下游效应蛋白,在细胞信号转导过程中快速转换于与GTP结合的活化状态和与GDP结合的非活化状态,从而将细胞外信号转导至细胞内[30]。ROCK是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶家族成员,是目前功能研究最为清楚的Rho下游靶效应分子。ROCK接受Rho传递的活化信号后发生多个氨基酸位点的磷酸化而激活,并介导下游一系列的磷酸化/脱磷酸化反应。TGF-β1能够诱导RhoA GTP酶活化,使其从与GDP结合的失活状态转换为与GTP结合的活化状态,活化的Rho信号传递到ROCK,使其分子中的854位丝氨酸和697位苏氨酸磷酸化而激活,再依次将其底物MLCK磷酸化而使之失活[31]。失活的MLCK不能将肌球蛋白轻链(myosin light chain,MLC)脱磷酸化,胞质MLC磷酸化水平上升,MLC磷酸化水平直接控制着细胞骨架的构建过程,间接决定细胞的迁移、入侵等过程[32]。最新的研究发现了一个新的反馈机制,通过刺激Tiam-1诱导激活rac-1,从而抑制ROCK1,间接减少了上游的RhoA的含量,对Rho家族小GTP酶的平衡产生至关重要的作用[33]。
Rho GTP酶的活化是上皮间质转型过程的关键一步,RhoA/ROCK信号通路在多种器官的纤维化过程中起重要作用[34]。Rho GTP酶的活化显著影响着上皮间质转型的过程,其也参与内皮细胞MMP-1和MMP-9的表达,抑制ECM的分解,有助于ECM的沉积。Moon等[35]发现,当敲除RhoA GTP酶基因时可抑制巨噬细胞炎性蛋白1α的表达和巨噬细胞的迁移。用siRNA干扰环腺苷酸调节鸟嘌呤核苷酸交换因子1、2的表达,诱导GTP-Rap1,促使RhoA GTP酶表达水平上升,最终促进细胞迁移。实验结果提示,RhoA GTP酶对细胞的迁移具有重要作用。Aguilar-Rojas等[36]也提出,在乳腺癌中促性腺激素释放激素通过激活RhoA GTP酶的表达,促进纤维和黏着斑合成,最终形成基质粘连组织,从而抑制细胞侵袭。实验从侧面暗示了RhoA GTP酶能够促进粘连形成。
3结语
腹膜粘连的形成是一个复杂的过程,而TGF-β介导粘连形成的信号机制更是错综复杂,往往存在多条信号通路的交叉影响。TGF-β的下游通路基本可以概括为Smad通路和non-Smad通路,non-Smad通路主要包括MAPK、RhoA GTPase/ROCK通路等。各条通路彼此独立又交叉影响,使TGF-β与细胞增殖、迁移、凋亡、纤维化等多种进程密切相关,并且很大程度上促进了腹膜粘连的形成。随着研究的深入、分子机制研究的透彻,相信会找到一个针对腹膜粘连形成的潜在靶点,从而在分子以及蛋白水平达到预防目的,这对腹膜粘连的治疗以及预防有重大意义。
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摘要:手术后形成的腹膜粘连是腹部外科难以攻克的课题。大量研究证实,转化生长因子β(TGF-β)在术后腹膜粘连的形成中具有重要作用。近年来,大量学者就TGF-β介导腹膜粘连形成的分子机制进行了多方面的研究。该文简单概述TGF-β通过Smads、丝裂原活化蛋白激酶和RhoA GTPase/ROCK等信号通路介导腹膜粘连的形成,以期为术后腹膜粘连的预防提供潜在的靶点。
关键词:腹膜粘连;转化生长因子β;信号转导
The Molecular Mechanisms of Peritoneal Adhesions:Mediated by Transformation Growth Factor βDENGLu-lu,MAOJian-wen.(DepartmentofBiology,GuangdongPharmaceuticalUniversity,Guangzhou510006,China)
Abstract:Peritoneal adhesion formation after abdominal surgery is still a difficult problem to conquer.A large number of studies indicated that transformation growth factor β(TGF-β) played a key role in postoperative peritoneal adhesions.In Recent years,a lot of scholars have made in-depth researches about molecular mechanism of peritoneal adhesion mediated by TGF-β.Here is to briefly summarize the TGF-β pathway which promote adhesion formation,such as Smads,MAPK and RhoA GTPase/ROCK,in order to provide potential targets for the prevention from postoperative peritoneal adhesion.
Key words:Peritoneal adhesion; Transformation growth factor β; Signaling pathway
收稿日期:2014-05-15修回日期:2014-08-22编辑:辛欣
基金项目:国家自然科学基金(31371144;81170339);国家自然科学青年基金(30800435)
中图分类号:R322.4; R211
doi:10.3969/j.issn.1006-2084.2015.05.007
文献标识码:A
文章编号:1006-2084(2015)05-0786-04