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Caspase-1抑制剂对大鼠血管平滑肌细胞钙化的初步影响

2014-05-04彭利静拓步雄李超民

生物技术通讯 2014年2期
关键词:茜素培养皿平滑肌

彭利静,拓步雄,李超民

解放军第451医院 心血管内科,陕西 西安 710054

动脉钙化主要指钙以磷酸盐形式沉积在动脉壁组织的一种病理改变。传统观点认为血管钙化是钙盐在细胞内及细胞外基质的被动沉积,但最近的研究发现,血管钙化形成的早期类似骨细胞形成,这个过程是主动、可预防、可逆转和高度可调控的生物学过程,因此动脉钙化发生早期的中心环节是血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells,VSMC)、血管周边细胞等向成骨样细胞的转分化[1]。

骨保护素(osteoprotegerin,OPG)及核因子κB受体活化因子配体(receptor activator of nuclear fac⁃tor κB ligand,RANKL)是最近发现的调节动脉钙化发生的重要因子,而且有大量的细胞因子能够调节OPG/RANKL的水平,但在动脉钙化发生中OPG/RANKL上游信号目前尚不清楚[2]。我们前期的工作发现钙化发生过程中Nalp3炎症小体复合体的激活,提示Nalp3炎症小体复合体可能作为其上游信号,通过改变OPG/RANKL水平来调节钙化发生。在此,我们通过caspase-1抑制剂zVAD来抑制Nalp3炎症小体的激活,并检测OPG/RANKL的表达水平及其对血管平滑肌细胞钙化的影响。

1 材料和方法

1.1 材料

SD大鼠,体质量约150 g,购自军事医学科学院实验动物中心;DMEM培养基购自Gibco公司;小牛血清购自杭州四季青生物工程材料有限公司;茜素红、β-磷酸甘油酯(β-GP)购自北京欣经科生物技术有限公司;zVAD、反转录试剂盒购自Promega公司;TRIzol购自天根公司;引物由北京奥科公司合成。

1.2 血管平滑肌细胞原代分离与培养[3]

取SD大鼠,无菌操作取出主动脉,放入DHank's液中反复冲洗,去除残留血液,用小镊子剥去外膜,用解剖剪纵行剪开血管,在培养皿中用消毒的棉签小心擦去内膜,用解剖剪将血管剪碎,大小为1 mm见方,将组织块放入培养瓶中铺开,间距以0.5 cm为宜,将培养瓶翻转过来放入培养箱中静置4~5 h,取出培养瓶并小心加入培养基至刚好覆盖组织块,放入培养箱中培养1周,1周后观察细胞生长情况,待长至铺满80%时用0.25%的胰酶消化传代,待传入培养皿中静置时吸取上清液离心重悬接种于另一培养皿中,如此反复多次用差速贴壁法纯化细胞直至5~7代。

1.3 钙化模型建立[2]

将原代培养的5~7代细胞传代培养,首先用含10%血清的正常DMEM培养基培养,待细胞长至60%左右时,加入含10 mmoL/L β-GP的DMEM培养基诱导钙化,对照组则继续用正常培养基培养,每2 d换一次培养基,连续培养10 d。

1.4 钙化模型染色鉴定[2]

钙化细胞弃去培养基,用1×PBS洗3次,六孔板中加入500 μL/孔4%多聚甲醛,37℃固定25 min,然后用去离子水洗3次,加入500 μL 1%茜素红,室温温育25 min,吸去染液,用去离子水洗4次,在通风橱中干燥2~3 min,吹干去离子水,于倒置显微镜下观察鉴定并拍照记录。

1.5 RNA提取及半定量PCR

收取钙化不同时间点(0、2、4、6、8、10 d)的细胞,加入1 mL TRIzol裂解,用氯仿抽提RNA,异丙醇沉淀RNA,并用75%的乙醇洗涤RNA沉淀物2次,用100 μL DEPC水溶解RNA;取2 μg RNA用反转录试剂盒反转录,取2 μL反转录产物作为模板进行PCR扩增基因,扩增条件为95℃预变性5 min、95℃变性 45 s、58℃退火 30 s、72℃延伸 1 min。Rat OPG上游引物为5'-AGTTTATTTAACAGACTGCCA CCAG-3',下游引物为5'-GTAATAAGAGGGCGCA TAGTCAGTA-3';Rat RANKL上游引物为5'-CGCT CTGTTCCTGTACTTTCGAGCG-3',下游引物为5'-TCGTGCTCCCTCCTTTCATCAGGTT-3';Rat β-actin上游引物为5'-CACCCGCGAGTACAACCTTC-3',下游引物为5'-CCCATACCCACCATCACACC-3'。

2 结果

2.1 caspase-1抑制剂zVAD可以下调OPG/RANKL的表达

将VSMC分为2组,一组添加zVAD,另一组不加zVAD,只加入zVAD的溶剂DMSO,2组用β-GP分别诱导 0、2、4、6、8、10 d,收取细胞裂解液提取总RNA,对OPG、RANKL进行半定量PCR检测,并通过凝胶电泳检测OPG及RANKL的表达,结果见图1,单加入β-GP后OPG和RANKL等基因的转录水平在钙化第2 d开始上升,但加入caspase-1抑制剂zVAD后OPG、RANKL转录水平降低,表明抑制炎症小体中caspase-1的活性,能够抑制OPG和RANKL的转录水平。

2.2 caspase-1抑制剂zVAD抑制动脉钙化的程度

从图1可以看到caspase-1抑制剂zVAD可下调OPG/RANKL的表达,接下来我们通过茜素红钙化染色研究caspase-1抑制剂zVAD对动脉钙化的影响,茜素红钙化染色呈红色的细胞说明发生了钙化。结果见图2,细胞用zVAD处理后,钙化程度相对于未加入zVAD组明显改善。

3 讨论

图1 caspase-1抑制剂zVAD可以下调OPG/RANKL的表达

OPG是一种分泌糖蛋白,是肿瘤坏死因子(TNF)受体超家族成员,在骨的稳态平衡中起重要的调节作用,最近发现OPG与血管钙化密切相关。OPG主要在平滑肌细胞和内皮组织细胞中表达,是RANKL和TRATL的受体,OPG与RANKL和TRATL结合[4],抑制了RANKL和TRATL与其同族受体的结合,从而抑制了特异性前炎症和前凋亡信号通路的活性。OPG参与血管细胞因子之间的网络联系[5],前炎症细胞因子如TNF-α及血小板衍化生长因子[6]在内皮细胞和血管平滑肌细胞中能诱导OPG表达,从而使OPG参与各种炎症信号通路。

图2 caspase-1抑制剂zVAD抑制动脉钙化的程度

我们的研究发现,OPG在β-GP诱导的VSMC钙化发生过程中表达上升,RANKL也有类似结果。对于OPG在钙化发生期间持续表达,许多学者认为是一个血管代偿性的防御机制,在动脉粥样硬化或血管疾病高危情况下,为了使过度激活的炎症通路和其他有害刺激降到正常水平而使OPG上调[7-8]。茜素红染色显示β-GP刺激VSMC后2 d开始出现明显的钙盐沉积,而Nalp3炎症小体在早期(加入β-GP 0.5 d,结果未示)就开始被激活;另外,在我们加入炎症小体抑制剂zVAD后,OPG/RANKL的表达量增加过程减缓且钙化程度减弱,这表明炎症小体反应是OPG/RANKL的上游事件。这个过程中是否还存在其他的调节因子并不清楚,有待进一步研究。

[1] 程孝中,黄蓓,钟辉.动脉钙化发生机制研究进展[J].生物技术通讯,2010,21(1):112-115.

[2] Patricia C O.Regulation of vascular calcification by osteo⁃clastregulatory factorsRANKL and osteoprotegerin[J].Circ Res,2004,95:1046-1057.

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