脂毒性引起靶器官损伤的信号转导机制
2014-04-04孙涛张伟曾悦夏世金
孙涛 张伟 曾悦 夏世金
脂毒性引起靶器官损伤的信号转导机制
孙涛 张伟 曾悦 夏世金
脂毒性是指血中的三酰甘油在脂蛋白脂酶的作用下水解成游离脂肪酸(FFA),后者进入细胞内进行氧化代谢供应能量或储存在脂肪内。当体内FFA水平增高后,超过脂肪组织的储存能力和各组织对FFA的氧化能力时,过多的FFA即激活非氧化通路以三酰甘油的形式在非脂肪组织过度沉积,即非脂肪组织的异位沉积,从而造成该组织的损伤,如心脏、胰腺、肝脏、血管等[1]。
脂毒性的发生主要与高水平的FFA相关。高水平的FFA短期内可以刺激胰岛素分泌,长期则再脂化异位沉积于非脂肪器官,致使周围组织对胰岛素的敏感性降低,肝脏糖异生增加,肌糖原生成降低,并使胰岛B细胞功能受损,最终导致胰岛素分泌障碍和胰岛素抵抗,从而对非脂肪组织产生损伤。本文就脂质及其毒性对胰腺细胞信号转导系统的影响研究新进展作一综述。
1 转录因子途径
FFA主要通过环磷酸腺苷(cAMP)反应元件调控因子阻遏物(CREM⁃17X及ICER⁃1)和甾醇调节因子结合蛋白⁃1c(SREBP⁃1c)来影响胰腺B细胞功能。CREM是转录因子ATF/CREB家族中的一员,它控制着神经内分泌细胞多基因表达,也是治疗肥胖症、降低动物体脂沉积的关键。固醇调控元件结合蛋白(sterol regulatory element binding proteins,SREBPs)是膜结合转录因子,属于转录调控因子bHLH(helix⁃loop⁃helix)家族。大量研究已证实:SREBPs是调控胆固醇、脂肪酸和三酰甘油及脂肪细胞分化过程的关键转录调控因子。在人和动物中,存在3种形式的SREBP同分异构体,即SREBP⁃1a,SREBP⁃1c和SREBP⁃2。SREBP存在于内质网,主要功能是介导脂肪酸的合成,并可通过影响碳水化合物代谢、脂质生物合成、细胞生长及凋亡多个靶基因改变而导致胰岛B细胞功能障碍[2]。SREBPs的组成结构包括480个氨基酸组成的N端、590个氨基酸组成的C端和中间的80个氨基酸的发夹结构,后者被亲水环状结构分割。其中,N端的功能是启动转录,C端则负责转录的调控。SREBP的调控主要发生在3个水平:SREBP前体蛋白裂解过程、转录及SREB的翻译后调控。SREBP⁃1a和SREBP⁃2的调控主要发生在前体裂解阶段,SREBP⁃1c的调控主要发生在转录水平。
SREBP对脂质合成的调控与SREBP裂解激活蛋白(SCAP)和胰岛素诱导基因产物(insulin⁃induced gene,Insig)有关。当细胞内脂质水平下降时,SREBP与SCAP结合,转入高尔基体,在1位蛋白酶作用下清除SREBP的C端,保留N端在细胞膜,剩余部分返回内质网被2位蛋白酶清除。当细胞内脂质过量时,SCAP/SREBP复合体不能形成,则SREBP介导的转录不能进行。另一方面,Insig可以与SCAP的转感结构域(SSD)结合,当脂质浓度升高,Insig与SCAP结合而阻断SCAP⁃SREBP复合体的形成,从而使脂质合成减少[3];相反,当脂质浓度降低则这种结合降低,而使SREBP有效地从内质网运输到高尔基体实现活化,从而促进脂质的合成[4]。
SREBP⁃1c是胰腺重要的转录调控因子,直接激活脂肪酸、三酰甘油合成和代谢的30多个基因,同时SREBP⁃1c也是合成这些分子所必需的NADPH的协同因子。因此,SREBP⁃1c被称为“脂毒性的门卫”,能调控脂肪酸和三酰甘油合成的多种基因,如脂肪酸合成酶(FAS)。胰岛素能上调SREBP⁃1c的mRNA表达和脂肪酸合成基因的表达,同时反应产物丙二酰CoA能抑制CPT1和线粒体FA氧化[5]。SREBP⁃1c对三酰甘油和脂肪酸的调节具有靶向性,通过基因工程小鼠模型建立可以发现,SREBP⁃1c缺乏的脂肪组织不能有效储存三酰甘油,从而使脂肪酸增加并储存在周围组织,最终导致显性脂毒性和代谢综合征。不过,SREBP⁃1c是促进还是抑制生脂基因的表达,目前还存有争议。有研究发现,过度表达的SREBP⁃1c引起胰腺细胞内脂滴大量沉积,并使葡萄糖刺激的胰岛B细胞胰岛素分泌(GSIS)受损[6],而这一表现可能是通过FFA引发的内质网受损和内质网应激产生的[7]。
2 过氧化物酶增殖物活化受体(PPARs)系统
研究显示,PPARs作为一重要的细胞调节因子,是脂肪酸代谢转录途径的主要决定因子[8⁃9]。PPARs属于配体介导的激素核内受体家族,由PPARα、δ(β)、γ组成。α受体主要分布在肝脏、心脏、肾脏和褐色脂肪组织,与脂代谢有关;δ受体在各种组织均有丰富的表达,可能与细胞的基础脂质代谢有关,也可能协助PPARα、PPARγ的作用;γ受体主要在脂肪组织和大肠中表达,具有多种生物效应,在脂肪细胞分化、糖脂代谢、炎性反应中起重要作用。PPARs由保守的结构区组成功能结构区,与其配体形成复合物后,PPARs在DNA结合区发生变构,通过与视黄酸类受体α(RXRα)形成异二聚体,再和目的基因启动子上游的过氧化物酶增殖物反应元件(PPRE)结合而对靶基因进行调控。
PPAR由多不饱和脂肪酸、类花生酸类脂质和不同种的合成配基激活[10]。PPARα可以调控肝脏编码过氧化物酶体、线粒体和微粒体细胞色素P450中某些脂肪酸代谢酶的基因转录;PPARα还能诱导乙酰辅酶A合成酶,促进肝脏提取脂肪酸并转化为乙酰辅酶A,提高脂肪酸经β氧化途径的代谢分解率[11]。当脂肪酸摄入增加和β氧化增加时,PPARα通过增加肝脏脂蛋白脂酶的表达而降低ApoC⁃Ⅲ的产生,逐渐降低三酰甘油的水平,同时促进高密度脂肪酸(HDL)的主要载脂蛋白ApoA⁃Ⅰ和ApoA⁃Ⅱ在肝脏的表达,以升高血浆HDL的水平。而PPARγ在脂肪酸增高时,往往通过加强脂肪酸转运蛋白和酰基CoA合成而促进脂肪细胞摄取脂肪酸,并增加脂肪细胞中脂质的存储,刺激脂肪组织中参与脂肪酸代谢的多种基因的表达而降低血脂水平。而PPARγ的激活可以增加新分化的小脂肪细胞而减少肥大的脂肪细胞,这样可增加细胞膜上胰岛素受体的数量,同时促进脂蛋白脂酶、脂肪酸结合蛋白、脂肪酸合成酶表达增加,从而减少FFA,增加胰岛素敏感性[12]。
此外,PPAR对于脂肪细胞的信号传导作用还表现在对其分泌的多种激素和细胞因子的调节功能。肿瘤坏死因子(TNF⁃α)能抑制前脂肪细胞的分化以及胰岛素刺激的葡萄糖转运,加速脂肪细胞脂肪分解,增加血FFA水平。当脂肪酸摄入增加时,PPAR激活后减缓脂解速度,从而降低FFA[13]。这种抗脂肪分解的作用可能由TNF⁃α水平及活性改变而介导。肥胖常伴有胰岛素抵抗和慢性炎症反应,而慢性炎症反应是导致胰岛素抵抗的关键原因[14⁃15]。TNF⁃α是主要的致炎因子,TNF⁃α刺激可以引起PPARγ下降,另外已证实PPARγ配体具有抗炎效应,激活PPARγ可减轻炎症反应,炎症因子表达减少[16]。体外实验证明,噻唑烷二酮(TZD)类药物可以降低TNF⁃α基因表达,抑制TNF⁃α刺激的脂肪分解[17]。PPAR激活可能阻断了TNF⁃α在信号传导途径中对胰岛素受体及胰岛素受体底物磷酸化的抑制作用。研究显示,用脂肪酸或TNF⁃α处理内皮细胞,可见细胞内氧化应激增强,IL⁃8增多,细胞核因子κB(NF⁃κB)活性增强和细胞黏附分子⁃1含量增加[18];若同时使用脂肪酸和TNF⁃α处理,则细胞内氧化应激进一步增强,推测TNF⁃α在脂肪酸对内皮细胞的凋亡中起作用。另外,大量试验已证明,TZD类药物通过激活PPAR可以降低leptinmRNA及蛋白水平,提示PPAR在高脂状态下亦可能通过调控脂质水平表达来降低FFA[19]。
3 Toll受体途径
Toll受体(Toll⁃like receptors,TLRs)是免疫细胞表面识别病原相关分子模式的一个模式识别受体家族,最新研究显示其在自身免疫疾病和慢性炎症的相互作用方面起着重要的桥梁作用。TLRs是近年来发现的跨膜信号传递受体蛋白。迄今为止,在哺乳动物体内已经发现12个TLRs家族的成员,分别命名为TLR1~12。Toll属Ⅰ型跨膜蛋白,其家族成员的结构非常相似,由胞外区、跨膜区和胞内区3部分组成。胞外区富含亮氨酸重复基序(leucine⁃rich repeats,LRR),有利于对病原体或其产物的识别;胞内区与IL⁃1受体的胞内区相似,因而被称为Toll IL⁃1受体同源区(toll IL⁃1 receptor homologous region,TIR),在信号转导中具有重要作用[20]。有研究显示TLR4、TLR1、TLR2和TLR5在巨噬细胞和内皮细胞高表达,从而在高脂血症引起的动脉粥样硬化中发挥作用。其中,TLR4在低密度脂蛋白胆固醇(LDL)作用下在巨噬细胞表达上调。TLR4受饱和脂肪酸激活,细胞内炎症通路均被上调,如JNK、KKB/LKBα/NF⁃κB,进而诱导胰岛素抵抗[21⁃22],因而TLR4是炎症与脂质代谢信号通路的交叉点。胰腺B细胞可对脂肪酸反应,主要经由TLR4/MyD88信号通路并产生一系列趋化因子,最终引起CD11b+Ly⁃6C+M1型促炎单核巨噬细胞向胰岛聚集,引起炎症反应进而损伤B细胞[23⁃25]。
4 蛋白激酶C(PKC)信号转导通路
PKC信号转导通路是FFA作用的经典途径,目前已发现12种PKC同工酶,并根据作用机制分为3类:传统型,Ca2+和二脂酰甘油(diacylglycerol,DAG)依赖;非传统型,仅依赖DAG;非典型型,非Ca2+和非DAG依赖。FFA通过PKC途径能介导下列反应:(1)促进升高的Ca2+和DAG进一步刺激胰岛素的释放;(2)激活腺苷酸环化酶,继而提高胞内cAMP浓度,升高的cAMP和PKA反馈抑制磷脂酰肌醇和PKC通路[26⁃27]。
血浆FFA提高导致细胞脂酰辅酶A和DAG的增多,二者是PKC强有力的激活剂,PKC能使胰岛素受体和胰岛素受体底物⁃1(insulin receptor substrate,IRS⁃1)的丝氨酸和苏氨酸残基磷酸化,而IRS⁃1的酪氨酸磷酸化受抑,从而使胰腺组织中磷脂酰肌醇3激酶(phosphatidyli⁃nositol 3 kinase,PI3K)的活性降低,导致葡萄糖转运载体⁃4(glucose transporter⁃4,Glut⁃4)向细胞表面转位减少,胰岛素介导的葡萄糖摄取减少;同时抑制糖原合成酶活性,使糖原储备能力下降[28⁃29]。
另外,FFA引起的氧化应激也可激活PKC,有证据表明FFA引起的氧化应激对PKC的作用可能由NF⁃κB抑制物激酶(IKK)介导。IKK是NF⁃κB抑制物(IκB)激酶,而NF⁃κB是炎症启动、调节的关键核因子。NF⁃κB与抑制物IκB结合,以无活性的形式存在于细胞浆内。经氧化应激激活后,IKK使IκB磷酸化并与NF⁃κB解离。解除抑制的活性NF⁃κB进入细胞核内,调节一系列炎症因子及相关物质的基因转录和蛋白合成,即IKK是激活NF⁃κB调节炎症的重要因素。IKK又是胰岛素受体和IRS⁃1丝氨酸磷酸化激酶,可使IRS307位的丝氨酸磷酸化,导致正常的酪氨酸磷酸化受抑制,减弱胰岛素受体与IRS的结合、妨碍胰岛素信号向PI3K传递[30]。
5 脂毒性靶向治疗
随着对脂质毒性对信号传导途径影响机制的深入认识,通过信号传导途径靶向治疗也日益成为热点,主要集中于以下2方面。
5.1 PPAR途径的调节 包括PPARγ激动剂、维甲酸受体(RXR)激动剂、β3肾上腺素能受体激动剂、PPARα/γ双重激动剂等。TZDs是一类直接针对胰岛素抵抗的药物,Rosiglitazone和Pioglitazone已用于临床,其作用机制是通过结合和活化PPARγ,促进脂肪细胞的分化,减少FFA、TNF⁃α和resistin的生成。PPARγ在脂肪组织中与RXR组成杂合二聚体,所以RXR激动剂也可激活PPARγ而发挥作用。RXR激动剂LG100268在动物实验中已经显示了良好的降低食欲和体质量的作用,有望用于肥胖相关的胰岛素抵抗患者[31]。另外,目前研制出的几种化合物均具有PPARα/γ的共激活作用,如Wy⁃1464、Ragaglitazar、KBP297等。
5.2 PKC抑制剂 PKC抑制剂有多种。Inoguchi等[32]研究发现FFA水平升高时,PKC依赖的NADPH氧化酶激活,增加反应性氧化产物(ROS)的产生,从而可加速胰岛素抵抗综合征患者动脉粥样硬化的发生。选择性PKC抑制剂GF109203X可抑制ROS的产生。维生素E可激活DAG激酶使DAG转化为磷脂酸,从而降低DAG浓度,减少PKC的活化。但是维生素E对已激活的PKC没有影响。选择性PKCβ抑制剂LY333531可阻断PKCβ,目前主要用于糖尿病患者视网膜血流动力学异常的改善。
综上所述,脂毒性可通过多种转导机制对不同靶器官造成损伤,其各种机制之间的联系还需进一步的研究。明确脂毒性的转导机制对理解疾病的病理生理过程和保护靶器官都具有重要的意义和价值。通过对脂毒性信号通路的深入研究,选择靶向治疗各种脂毒性相关性疾病,可有效地减轻不良反应和提高疗效,或许可以作为一种新的治疗思路。
[1] Schaffer JE.Lipotoxicity:when tissues overeat[J].Curr Opin Lipi⁃dol,2003,14(3):281⁃287.
[2] Shao S,Yang Y,Yuan G,et al. Signalingmolecules involved in lipid⁃induced pancreatic beta⁃cell dysfunc⁃tion[J].DNA Cell Biol,2013,32(2):41⁃49.
[3] Huber MD,Vesely PW,Datta K,et al.Erlins restrict SREBP activation in the ER and regulate cellular cho⁃lesterol homeostasis[J].JCell Biol,2013,203(3):427⁃436.
[4] Yang T,Espenshade PJ,Wright ME,et al.Crucial step in cholesterol homeostasis:sterols promote binding of SCAP to INSIG⁃1,a membrane protein that facilitates retention of SREBPs in ER[J].Cell,2002,110(4):489⁃500.
[5] Chu X,Liu L,Na L,et al.Sterol regulatory element⁃binding protein⁃1c mediates increase of postprandial ste⁃aric acid,a potential target for im⁃proving insulin resistance,in hyper⁃lipidemia[J].Diabetes,2013,62(2):561⁃571.
[6] Yang Y,Tong Y,Gong M,et al. Activation of PPARβ/δprotects pan⁃creaticβcells from palmitate⁃induced apoptosis by upregulating the expression of GLP⁃1 receptor[J]. Cell Signal,2013,26(2):268⁃278.
[7] Wang MY,Unger RH.Role of PP2C in cardiac lipid accumulation in obese rodents and its prevention by troglitazone[J].Am JPhysiol Endo⁃crinol Metab,2005,288(1):E216⁃E221.
[8] Wang S,Moustaid⁃Moussa N,Chen L,et al.Novel insights of dietary polyphenols and obesity[J].JNutr Biochem,2014,25(1):1⁃18.
[9] Nakamura MT,Yudell BE,Loor JJ. Regulation of energy metabolism by long⁃chain fatty acids[J].Prog Lipid Res,2014,53:124⁃144.
[10]Abu⁃Elheiga L,Wu H,Gu Z,et al. Acetyl⁃CoA carboxylase 2⁃/⁃mutant mice are protected against fatty liver under high⁃fat,high⁃carbohydrate di⁃etary and de novo lipogenic conditions[J].JBiol Chem,2012,287(15):12578⁃12588.
[11]Tzeng TF,Lu HJ,Liou SS,et al. Vinegar⁃baked radix bupleuri regulates lipid disorders via a pathway dependent on peroxisome⁃proliferator⁃activated receptor⁃αin high⁃fat⁃diet⁃induced obese rats[J]. Evid Based Complement Alternat Med,2012,2012:827278.
[12]Stephenson EJ,Hawley JA.Mito⁃chondrial function in metabolichealth:A genetic and environmental tug of war[J].Biochim Biophys Acta,2014,1840(4):1285⁃1294.
[13]Jiao P,Ma J,Feng B,et al.FFA⁃induced adipocyte inflammation and insulin resistance:involvementof ER stress and IKKβpathways[J].Obe⁃sity(Silver Spring),2011,19(3):483⁃491.
[14]Lee YH,Martin JM,Maple RL,et al.Plasma amyloid⁃beta peptide levels correlate with adipocyte amyloid precursor protein gene ex⁃pression in obese individuals[J]. Neuroendocrinology,2009,90(4):383⁃390.
[15]Feingold KR,Moser A,Shigenaga JK,et al.Inflammation inhibits the expression of phosphoenolpyruvate carboxykinase in liver and adipose tissue[J].Innate Immun,2012,18(2):231⁃240.
[16]Crews L,Masliah E.Molecular mechanisms of neurodegeneration in Alzheimer's disease[J].Hum Mol Genet,2010,19(R1):R12⁃R20.
[17]Schoenberg KM,Perfield KL,Farney JK,et al.Effects of prepartum 2,4⁃thiazolidinedione on insulin sensitivity,plasma concentra⁃tions of tumor necrosis factor⁃αand leptin,and adipose tissue gene ex⁃pression[J].JDairy Sci,2011,94(11):5523⁃5532.
[18]Zenhom M,Hyder A,Kraus⁃Sto⁃janowic I,et al.PPARγ⁃dependent peptidoglycan recognition protein 3(PGlyRP3)expression regulates proinflammatory cytokines by microbial and dietary fatty acids[J]. Immunobiology,2011,216(6):715⁃724.
[19]Lu M,Sarruf DA,Talukdar S,etal. Brain PPAR⁃γpromotes obesity and is required for the insulin⁃sensitizing effect of thiazolidinediones[J].Nat Med,2011,17(5):618⁃622.
[20]Du X,Poltorak A,Wei Y,et al. Three novel mammalian toll⁃like re⁃ceptors:gene structure,expression,and evolution[J].Eur Cytokine Netw,2000,11(3):362⁃371.
[21]Nagai Y,Watanabe Y,Takatsu K. The TLR family protein RP105/MD⁃1 complex:A new player in obesity and adipose tissue inflammation[J]. Adipocyte,2013,2(2):61⁃66.
[22]Jialal I,Kaur H,Devaraj S.Toll⁃like receptor status in obesity and metabolic syndrome:A Translational Perspective[J].J Clin Endocrinol Metab,2014,99(1):39⁃48.
[23]Eguchi K,Manabe I,Oishi⁃Tanaka Y,et al.Saturated fatty acid and TLR signaling linkβcell dysfunction and islet inflammation[J].Cell Metab,2012,15(4):518⁃533.
[24]Giacca A,Xiao C,Oprescu AI,et al.Lipid⁃induced pancreaticβ⁃cell dysfunction:focus on in vivo studies[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2011,300(2):E255⁃262.
[25]Prentki M,Madiraju SR. Glycerolipid/free fatty acid cycle and isletβ⁃cell function in health,obesity and diabetes[J].Mol Cell Endocrinol,2012,353(1/2):88⁃100.
[26]Babu PV,Liu D,Gilbert ER. Recent advances in understanding the anti⁃diabetic actions of dietary flavonoids[J].J Nutr Biochem, 2013,24(11):1777⁃1789.
[27]Qi D,Cai K,Wang O,et al.Fatty acids induce amylin expression and secretion by pancreatic beta⁃cells[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2010,298(1):E99⁃E107.
[28]Sajan MP,Farese RV.Insulin sig⁃nalling in hepatocytes of humans with type 2 diabetes:excessive production and activity of protein kinase C⁃ι(PKC⁃ι)and dependent processes and reversal by PKC⁃ιinhibitors[J].Diabetologia,2012,55(5):1446⁃1457.
[29]Cao S,Li B,Yi X,et al.Effects of exercise on AMPK signaling and downstream components to PI3K in ratwith type 2 diabetes[J].PLoS One,2012,7(12):e51709.
[30]Ragheb R,Shanab GM,Medhat AM,et al.Free fatty acid⁃induced muscle insulin resistance and glucose uptake dysfunction:evidence for PKC activation and oxidative stress⁃activated signaling pathways[J]. Biochem Biophys Res Commun,2009,389(2):211⁃216.
[31]Pinaire JA,Reifel⁃Miller A.Thera⁃peutic potential of retinoid x receptor modulators for the treatment of the metabolic syndrome[J].PPAR Res,2007,2007:94156.
[32]Inoguchi T,Li P,Umeda F,et al. High glucose level and free fatty acid stimulate reactive oxygen species pro⁃duction through protein kinase C⁃de⁃pendent activation of NAD(P)H oxi⁃dase in cultured vaseular cells[J]. Diabetes,2000,49(11):1939⁃1945.
R 333.5
A
10.3969/j.issn.1003⁃9198.2014.07.023
2013⁃12⁃31)
国家自然科学基金面上项目(81200286;81200322)
200040上海市,复旦大学附属华东医院消化内科(孙涛,张伟);老年医学(夏世金);200080上海市,上海交通大学附属第一人民医院消化内科(曾悦);
张伟,Email:zhangrf1973@163.com