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醋制南五味子抗α-淀粉酶活性部位筛选*

2012-07-09蒙跃龙董彬厂陕西中医学院药学院咸阳712046

陕西中医 2012年11期
关键词:缓冲溶液水杨酸正丁醇

蒙跃龙 董彬厂 邓 翀 陕西中医学院药学院(咸阳712046)

南五味子为木兰科华中南五味子Schisandra sphenanthera Rehd.et Wils.的果实,有收敛固涩、益气生津、补肾宁心的作用。炮制方法主要有醋制、酒制、蜜制、炒制、蒸制等。生品以敛肺止咳为主,用于自汗盗汗,口干作渴;醋制后增强酸涩收敛之性。近几年文献报道五味子具有抗糖尿病的生理活性。西方医学通过化学合成法寻找α-淀粉酶抑制剂取得了一定进展,但合成药物对糖尿病患者的耐药性与副作用也日益明显,寻找安全、有效的天然α-淀粉酶抑制已被提上日程。本研究采用酶法测定南五味子炮制前后不同化学部位对α-淀粉酶抑制活性,为五味子辅助降糖新药研发提供一定的依据。

1 试药和仪器

1.1 药材 南五味子购于陕西南郑县,经王继涛高级实验师鉴定为木兰科华中南五味子Schisandra sphenanthera Rehd.et Wils.的成熟果实。

1.2 试剂试液 α-淀粉酶(北京奥博星生物技术有限公司,20120205);可溶性淀粉(天津市天力化学试剂有限公司,批号20110308);阿卡波糖(天津西玛科技有限公司,批号20120301);3,5-二硝基水杨酸(上海科丰化学试剂有限公司,批号20101009)3,5-二硝基水杨酸试液(取3,5-二硝基水杨酸6.5g加入325mL的2mol·L-1氢氧化钠和45mL丙三醇,再加入蒸馏水至1000mL,充分溶解,室温存放备用);0.2mol·L-1PH=5.6柠檬酸缓冲溶液、0.12mol·L-1PH=6.1磷酸盐缓冲溶液,其它试剂均为分析纯。

1.3 仪器 UV1102型紫外可见分光光度计(上海天美科学仪器有限公司),FA2004N型电子天平(上海精密科学仪器有限公司)PHS-3C型雷磁精密PH计。

2 方 法

2.1 南五味子各提部位的制备 称取炮制前后南五味子药粉各10g,分别以氯仿、乙酸乙酯、正丁醇、水10倍量溶剂各提取两次,每次1h,合并各溶剂滤液并蒸干。氯仿和乙酸乙酯提取部位均用无水乙醇溶解并转移置25mL量瓶中定容;正丁醇提取部位用80%乙醇溶解并转移置25mL量瓶中定容(将定容后的炮制前后正丁醇提取部位溶液稀释十倍再进行测定);水提取部位用蒸馏水溶解转移置100mL量瓶中定容,将制备好的各样品提取部位溶液密封4℃冷藏放置,待用。

2.2 α-淀粉酶活性的测定原理 采用3,5-二硝基水杨酸方法(3、5-dinitrosalicylic acid、colorimetric assays,Bernfeld method)测定α-淀粉酶活性,Bernfeld法是通过确定可溶性淀粉在α-淀粉酶作用下水解产生的还原基团将3,5-二硝基水杨酸还原为硝基氨基水杨酸(棕红色物质),还原基团的量与棕红色物质颜色深浅程度成一定的比例关系,在波长520 nm处测定棕红色物质和阳性对照阿卡波糖的吸光值(A)[1],由于α-淀粉酶抑制剂对淀粉水解有抑制作用,可使A520值下降,从而可以计算待测物对淀粉酶活性的抑制率。

2.3 南五味子各提取部位抑制α-淀粉酶活性的测定方法 设α-淀粉酶管、各不同提取部位管、阳性对照管、α-淀粉酶空白对照管、各提取部位空白对照管、阳性对照空白管。炮制前后各提取部位管中加入0.4mL提取液挥干溶剂并加0.4mL磷酸盐缓冲溶液溶解后,加入0.4mL柠檬酸缓冲液、0.8mL 8mg·mL-1淀粉溶液[2](用柠檬酸缓冲溶液配制)、2mL 4mg·mL-1α-淀粉酶液[3],总反应体积为3.6mL。

将各管内溶液混匀,37℃水浴保温30min后,分别加入6mL 3,5-二硝基水杨酸溶液,摇匀,置于100℃水浴保温10min,冷却置室温,分别取各管反应液1mL加入9mL蒸馏水于520nm处检测吸光度值(A)。

α-淀粉酶抑制率计算公式如下:

3 结 果 南五味子炮制前药材中乙酸乙酯提取部位的抑制作用最强,其次为氯仿和正丁醇提取部位,水提取部位的抑制作用最弱。炮制后药材中乙酸乙酯提取部位的抑制作用最强,其次为正丁醇和氯仿提取部位,水提取部位抑制作用最弱。南五味子醋制后各化学部位抗α-淀粉酶活性强于其炮制前对应各化学部位。

表1 炮制前后南五味子提取部位对α-淀粉酶抑制率(n=5)

4 讨 论 α-淀粉酶抑制剂能有效抑制唾液和胰液α-淀粉酶活性,阻碍食物中碳水化合物的分解和消化,减少葡萄糖产生和摄取,从而可以有效防止糖尿病和高血脂症。因此,α-淀粉酶抑制剂常被用于治疗II型糖尿病,可有效降低餐后血糖水平和减少糖尿病并发症的发生[4]。

α-淀粉酶由于受温度和PH的影响很大故应使用前配制,可溶性淀粉的溶解性对实验结果影响较大,故应先将0.2mol·L-1柠檬酸盐缓冲溶液加热到100℃加入可溶性淀粉,搅拌,使之迅速溶解,冷却至室温再用柠檬酸缓冲液调至所需浓度。为了保持各待测组的平行,应将淀粉溶液最后加入。

实验结果中南五味子炮制前后乙酸乙酯提取部位对α-淀粉酶活性抑制作用最强,而正丁醇部位在炮制前后抑酶率变化较大。南五味子炮制后各部位抗α-淀粉酶活性强于其炮制前各部位。南五味子炮制前后各化学部位抗α-淀粉酶活性比较可知,氯仿、乙酸乙酯、正丁醇化学部位抗α-淀粉酶活性明显。

[1]B.施特尔巴赫著,钱喜渊译.酶的测定方法[M].北京:中国轻工业出版社,1992:37-41.

[2]赵修南,贾启燕,单俊杰.α-淀粉酶抑制剂筛选方法的优选[J].2008,35(5):321-324.

[3]吴慧平,陈建伟,许婷婷,等.骨碎补与夜交藤组合物对α-糖苷酶活性的影响[J].2012,18(5):181-184.

[4]徐林峰,沈忠明,殷建伟,等.五味子中提取α- 葡萄糖苷酶抑制剂的研究[J].中国生化药物杂志,2001,22(3):127.

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