APP下载

黔北麻羊RERGL基因cDNA克隆与生物信息学分析

2012-04-29蔡惠芬陈志罗卫星

湖北农业科学 2012年15期
关键词:生物信息学分析克隆基因

蔡惠芬 陈志 罗卫星 等

摘要:选择与羊同源性较高的牛RERGL基因组序列设计特异性引物,提取黔北麻羊脾脏总RNA,通过RT-PCR技术对RERGL基因进行克隆测序及序列分析。结果表明,成功克隆了黔北麻羊RERGL基因,其cDNA序列646 bp,GenBank登录号JN 671919,编码205个氨基酸。生物信息学分析表明,黔北麻羊RERGL基因蛋白二级结构α-螺旋占40.68%,延伸链占16.18%,无规则卷曲占43.14%;没有跨膜螺旋结构域且没有糖基化位点。

关键词:黔北麻羊;RERGL基因;克隆;生物信息学分析

中图分类号:S827;Q811.4文献标识码:A文章编号:0439-8114(2012)15-3362-04

cDNA Sequence Cloning of RERGL Gene of Qianbei Ma Goat and Bioinformatics Analysis

CAI Hui-fen,CHEN Zhi,LUO Wei-xing,LIU Ruo-yu,ZHANG Yi-yu,SHI Zhao-ying

(Ministry of Education Key Laboratory for Animal Genetics, Breeding and Reproduction in the Plateau Mountainous Region/College of Animal Science, Guizhou University,Guiyang 550025, China)

Abstract:Primers of goat RERGL were design according to the homologic gene of ox. Total RNA of Qianbei Ma goat was extracted from the spleen. The cDNA sequence encoding RERGL was obtained by reverse transcription PCR (RT-PCR) and sequenced. The results demonstrated that the cDNA sequence of RERGL gene of Qianbei Ma goat was successfully cloned. The sequence length was 646 bp, encoding 205 amino acids; GenBank accession number was JN 671919. Bioinformatics analysis showed that the secondary structure of RERGL was 40.68% α-helix +16.18% extending chain+43.14% random coil. No trans-membrane helix domain and O-glycosylation site was detected.

Key words: Qianbei Ma goat; RERGL gene; clone; bioinformatics analysis

RERGL基因属于Ras超家族基因。Ras超家族是一类重要的功能蛋白。它们介导生长因子、细胞因子和多种细胞外信号的通路,对细胞生长、分化、存活、增殖等多种功能的调节发挥重要作用[1]。Ras超家族在细胞信号转导中可作为信号转换器或分子开关,它们通过与GTP结合(激活态)和GDP结合(失活态)的转换导致信号的转导或终止[2]。RERGL与部分Ras超家族成员的同源性可达40%~50%。其蛋白与RERG(Ras-related and estrogen-regulated growth inhibitor)蛋白功能高度相似。

黔北麻羊是贵州省三大优良山羊品种之一。其历史悠久,具有耐粗饲、繁殖率高、产肉性能良好、膻味轻、肉鲜美可口、板皮品质优良等优点,为当地群众所喜养[3]。罗卫星等[4]对黔北麻羊的肉用性能和肉质特征进行研究,表明黔北麻羊肉用性能和肉质性质良好,具有很好的开发价值。在分子水平上,关于黔北麻羊RERGL基因的研究国内外尚未见报道。本研究以黔北麻羊为研究对象,通过分子克隆技术对RERGL基因cDNA进行克隆后测序,并对结果进行生物信息学分析,以期为进一步开展黔北麻羊RERGL基因的表达调控以及与生长性状相关分析研究提供一定的理论基础。

1材料与方法

1.1材料

从贵州省习水县采集成年黔北麻羊的脾脏,液氮中保存备用。

1.2试剂和载体

RNA提取试剂盒(Trizol)购自MBI公司;LB培养基;氨苄青霉素(Amp)(100 g/L);10×TBE缓冲液;DEPC和琼脂糖购自SIGMA公司;pMD18-T Vector、反转录试剂盒(DRR037A)、Taq酶和dNTP购自大连TaKaRa公司;菌种TG1、DL 2000 Marker、去离子甲酰胺、引物及其他常用试剂均购自上海生工生物工程技术服务有限公司。

1.3提取RNA前的准备工作

玻璃制品用0.1 M的NaOH浸泡过夜,用自来水反复冲洗,再用去离子水冲洗2遍,180 ℃烘烤6 h;研钵、电泳槽等用0.1%的DEPC水冲洗浸泡,由于未灭活的DEPC对PCR反应有影响,可用0.5 %的SDS处理;Tip头、EP管用0.1 %的DEPC水浸泡过夜,高压灭菌使DEPC失活,烘干备用;提取前在超净工作台紫外照射15 min。

1.4总RNA的提取及质量、浓度测定

根据RNA提取试剂盒说明书用Trizol法提取黔北麻羊脾脏总RNA。用1%琼脂糖凝胶检测总RNA的完整性,核酸蛋白测定仪测定浓度,-80 ℃保存备用。

1.5引物设计

根据牛RERGL基因cDNA序列(NM_001105472.1)设计特异性引物RERGL-CDS扩增羊RERGL基因的CDS区,引物序列和退火温度见表1。

1.6RT-PCR扩增

按照反转录试剂盒操作程序进行反转录。引物GFI-1的PCR扩增体系:反转录产物2.5 μL,10×PCR Buffer(Mg2+ Plus)2 μL,dNTPs(2.5 mmol/L)2.0 μL,上下游引物各1 μL,Taq酶(5 U/μL)0.4 μL,加去离子水至总体积为20 μL。扩增程序:95 ℃预变性5 min;94 ℃变性30 s,55 ℃退火40 s,72 ℃延伸60 s,35个循环;72 ℃延伸10 min,4 ℃ 保存,1%琼脂糖凝胶电泳检测。

1.7克隆及重组子筛选与鉴定

PCR产物经电泳检测后,按DNA胶回收试剂盒说明进行胶回收,用pMDl8-T载体连接PCR纯化产物,常温过夜后转化连接产物到大肠杆菌TG1感受态细胞,均匀接种于含氨苄青霉素的LB琼脂糖平板中,37 ℃培养12~16 h,挑取单个菌落,接种于1 mL含100 mg/L氨苄青霉素的LB液体培养基中,37 ℃ 220 r/min培养10 h。取菌液做PCR进行阳性重组子鉴定。阳性菌液送上海生工生物工程技术服务有限公司进行测序。

1.8序列分析

测序结果用DNAMAN 4.0软件进行拼接,采用DNAStar、CBS在线蛋白分析程序(http://www.cbs.dtu.dk/services/)和ExPASy在线蛋白质分析软件(http://expasy.org/tools)进行生物信息学分析。

2结果与分析

2.1黔北麻羊脾脏总RNA质量检测

RNA模板的完整性是获得全长cDNA及RT-PCR扩增成功的基础,用1%的琼脂糖凝胶电泳对所提取黔北麻羊脾脏组织总RNA进行检测,结果见图1,可见总RNA的28 S和18 S条带清晰,无降解。用核酸蛋白测定仪测定,其OD260/OD280均在1.8~2.0,表明所提取的总RNA中蛋白质和其他杂质污染较少,纯度较高,符合反转录的要求。

2.2RT-PCR的扩增结果及重组子鉴定

经RT-PCR扩增,对产物用1%琼脂糖凝胶电泳检测,可见扩增片段与预期片段(646 bp)大小相符(图2)。将挑选好的单克隆菌落摇菌培养后,用PCR法鉴定阳性重组子,可见扩增片段与预期片段大小相符,经克隆测序获得序列646 bp,初步的验证克隆成功。

2.3RERGL基因cDNA序列分析

利用DNAMANN 4.0对黔北麻羊RERGL基因测序结果进行拼接连接得到序列片段长度646 bp,与预期片段大小相符,包含了RERGL基因全编码区序列(CDS)(包含起始密码子ATG和终止密码子TGA)并提交GenBank,获得GenBank登录号为JN 671919。其cDNA编码205个氨基酸。用DNAMAN 4.0对黔北麻羊RERGL基因分析可知,其碱基组成A+T=58.37%,C+G=41.63%。

2.4RERGL基因蛋白的二级结构预测

分别应用ExPASy服务器上的SOPMA[5]、GOR[6]、HNN[7]方法预测RERGL基因蛋白的二级结构。结果表明,3种方法对黔北麻羊RERGL基因蛋白的二级结构预测无显著性差异,均提示蛋白二级结构中α-螺旋占40.68%,延伸链占16.18%,无规则卷曲占43.14%,无β-转角(图3)。RERGL基因在脊椎动物之间是高度保守的一个基因,其氨基酸序列有家族特征[9,10]。

2.5RERGL基因蛋白的跨膜螺旋特征

采用ExPASy在线蛋白质分析软件(http://expasy.org/tools)的TMpred程序对黔北麻羊RERGL基因蛋白的跨膜螺旋进行预测,结果见图4。按照跨膜拓扑学分析模型的分析结果,只有当分值大于500时才被认为具有跨膜螺旋,预测显示黔北麻羊RERGL基因蛋白的氨基酸序列没有明显的跨膜螺旋。

2.6RERGL基因蛋白的糖基化位点预测

采用NetOGlyc 3.1(http://www.cbs.dtu.dk/service/NetOGlyc/)预测黔北麻羊RERGL基因蛋白的糖基化位点,结果表明黔北麻羊RERGL基因蛋白没有糖基化位点(图5)。

3小结与讨论

3.1RERGL基因克隆

基因是细胞内染色体上具有遗传效应的DNA分子片段,高等真核生物基因组由成千上万个基因组成。目前人、鸡、斑马鱼、大鼠、小鼠等动物的全基因组已被测定,并已分离鉴定出大量的功能结构基因,有一些基因已应用于动物育种[8-10]。但是,仍还有大量的基因尚未被分离鉴定。RERGL基因编码蛋白是Ras超家族一类重要的功能蛋白,在GenBank数据库中,还未见羊的RERGL基因序列。本研究利用同为反刍动物的牛RERGL基因的mRNA序列设计1对特异性扩增引物,首次成功克隆出羊的RERGL基因序列,其片段大小为646 bp,GenBank登录号为JN 671919,进一步说明采用序列的高度同源性设计PCR引物进行基因克隆是可行的。

3.2黔北麻羊RERGL基因蛋白的结构与功能预测

蛋白质的生物学功能在很大程度上取决于其空间结构,蛋白质构象多样性导致了不同的生物学功能。蛋白质分子只有处于特定的三维空间结构情况下才能获得它特定的生物活性,三维空间结构稍有破坏,就很可能会导致蛋白质生物活性的降低甚至丧失。分析蛋白质结构、功能及其关系是蛋白质组学计划中的一个重要组成部分[11-13]。研究蛋白质结构有助于了解蛋白质的生物功能,这对认识蛋白质与蛋白质或与DNA以及与RNA之间的相互作用具有非常重要的生物学意义。对于未知功能或者新发现的蛋白质分子,利用ExPASy等系统软件预测其功能和结构可提供理论性的参考,并对功能确认的生物学实验有重要指导作用[14-16]。通过分析蛋白质的结构,确认功能单位或者结构域,可以为遗传操作提供方向,为设计新的蛋白质或改造已有蛋白质提供可靠的依据。

通过跨膜螺旋结构和信号肽分析可以推测基因在细胞中的定位;而潜在功能位点的分析可以在对新基因及其编码蛋白信息一无所知的情况下初步推测基因的功能[14]。研究结果显示,黔北麻羊RERGL基因蛋白没有跨膜螺旋结构域,且分子不包含信号肽序列,表明RERGL基因在细胞中起作用。

糖基化是在酶的控制下,蛋白质或脂质附加上糖类的过程。蛋白质经过糖基化作用之后可形成糖蛋白。蛋白质的糖基化,也叫美拉德反应,是在蛋白质基团特别是赖氨酸残基上加上多糖,可以改善蛋白质的很多性质,比如提高凝胶性、乳化性、水合性等,扩宽蛋白质的应用领域和范围[17]。研究结果揭示黔北麻羊RERGL没有蛋白糖基化位点。

此次实验在黔北麻羊上成功克隆出RERGL基因序列并进行序列分析,为今后开展山羊RERGL基因表达、载体构建及转基因研究提供了基础资料。但其理化性质参数、跨膜肽段及结构是否是预测的理论结果需进一步实验证实。在没有任何信息可参考的前提下,本研究结果也可起到很好的参考作用,对正确认识蛋白质结构和功能具有启示作用。

参考文献:

[1] 卢建,余应年,徐仁宝.受体信号转导系统与疾病[M].济南:山东科学技术出版社,1999.164.

[2] BOURNE H R,SANDERS D A,MCCORMICK F. The GTPase superfamily conserved structure and molecular mechanism [J]. Nature,1991,349(6305):117-127.

[3] 贵州省畜禽品种志编辑委员会.贵州省畜禽品种志[M].贵阳:贵州科技出版社,1993.66-68.

[4] 罗卫星,张启林,穆林,等.黔北麻羊的肉用性能和肉质特性的研究[J].西南农业学报,2010(5):1706-1710.

[5] GEOURJON C, DEL?魪AGE G. SOPMA:significant improvements in protein secondary structure prediction by consensus prediction from multiple alignments[J].Comput Appl Biosci,1995,11(6):681-684.

[6] GARNIER J, GIBRAT J F, ROBSON B. GOR method for predicting protein secondary structure from amino acid sequence[J]. Methods Enzymol,1996,266:540-553.

[7] 欧琴,朱珊丽,张丽芳. EB病毒潜伏膜蛋白2的二级结构分析和B细胞表位预测[J].温州医学院学报,2007(2):114-118.

[8] GIBSON T J,RICE P M, THOMPSON JD, et al. KH domains within the FMRI sequence suggest that fragile X syndrome stems from a defect in RNA metabolism[J]. Trends Biochem Sci,1993,18:331-333.

[9] SCHULTZ J,PONTING C P,HOFMANN K,et al.SAM as a protein interaction domain involved in developmental regulation[J]. Pro Sci,1997,6:249-253.

[10] KOCH C A, ANDERSON D, MORAN M F, et al. SH2 and SH3 domains: elements that control interactions of cytoplasmic signaling proteins[J]. Science,1991,252:668-674.

[11] FARES M A, MCNALLY D. CAPS:coevolution analysis using protein sequences[J].Bioinformatics,2006,22(22):2821-2822.

[12] FRASER H B, HIRSH A E, WALL D P, et al. Coevolution of gene expression among interacting proteins[J]. PNAS,2004, 101(24):9033-9038.

[13] OBRIEN K P,TAPIA-PAEZ I, STAHLE-BACKDAHL M, et al. Characterization of five novel human genes in 11q13-q22 region[J]. Biochem Biophys Res Commun,2000,273:90-94.

[14] ARNOLD K, BORDOLI L, KOPP J, et al. The SWISS-MODEL workspace: a web-based environment for protein structure homology modeling[J]. Bioinformatics,2006,15(22):195-201.

[15] SCHWEDE T, KOPP J,GUEX N,et al. SWISS·MODEL: an automated protein homology-modeling server[J].Nucleic Acids Research, 2003,31(13):3381-3385.

[16] GUEX N, PEITSCH,M C. SWISS-MODEL,et al. An environment for comparative protein modeling[J]. Electrophoresis,1997, 18:2714-2723.

[17] MARCHAL I,GOLFIER G,DUGAS O,et al. Bioinformatics in glycobiology[J]. Biochimie,2003,85:75-81.

猜你喜欢

生物信息学分析克隆基因
克隆狼
Frog whisperer
浙江:诞生首批体细胞克隆猪
修改基因吉凶未卜
创新基因让招行赢在未来
雷公藤贝壳杉烯酸氧化酶基因的全长cDNA克隆与表达分析
羊种布氏杆菌3型Omp25基因序列及其表达蛋白生物信息学分析
抗BP5-KLH多克隆抗体的制备及鉴定
基因
西藏牦牛NGB基因克隆及生物信息学分析