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戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片对卵巢早衰小鼠激素水平和肠道菌群的调节作用

2023-11-01闫丽王恺悦王喜良于月新

中国医科大学学报 2023年10期
关键词:环丙戊酸雌二醇

闫丽,王恺悦,王喜良,于月新

(北部战区总医院生殖医学科,沈阳 110016)

卵巢早衰 (premature ovarian failure,POF) 是指女性40岁前出现卵巢功能减退,出现闭经、促性腺激素过高和雌激素缺乏现象,是一种常见的妇科内分泌疾病,严重影响患者身体健康[1]。POF的诱发因素主要有遗传、免疫、医源性、环境、心理等因素[2]。目前,激素替代疗法是治疗POF的最常用方法,通过服用激素模拟人体激素分泌,可以改善POF症状[3]。近年来研究[4]发现,肠道菌群与多种疾病密切相关,如精神分裂症、帕金森病、肥胖和代谢性疾病等。其中,肠道菌群与生殖系统疾病的发生、发展关系密切。动物研究[5]结果显示,高脂饲料喂养的成年雄性小鼠中,肠道菌群影响精液微生物群的产生,进而影响精液的质量。在多囊卵巢综合征患者中,肠道菌群组成紊乱,药物治疗后肠道菌群的多样性和丰度明显改善[6]。但是,肠道菌群与POF的相关性尚未见研究报道。

本课题组前期研究建立了POF小鼠模型,并分析了其肠道菌群的变化,结果显示,POF小鼠肠道菌群组成的多样性及个别种属菌群的丰度发生显著改变。为进一步探究肠道菌群与POF的相关性,本研究采用最常用的激素替代疗法 (戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片) 对POF小鼠模型进行干预,分析肠道差异菌群,探究此治疗方案对肠道菌群紊乱的回调作用,旨在从肠道微生态层面探究戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片的作用机制,为临床探讨POF的发病机制和药物治疗提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验动物:SPF级雌性C57BL/6小鼠24只,8周龄,由辽宁长生生物公司提供[SCXK (辽) 2020-0001]。保持室温在20~24 ℃,饲养于北部战区总医院实验动物部[SYXK (辽) 2018-0021],给予全价营养饲料,自由饮水和进食。

1.1.2 主要试剂和设备:戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片 (拜耳医药保健有限公司广州分公司),环磷酰胺 (德国Baxter Oncology GmbH公司),水合氯醛(北纳生物有限公司),雌二醇酶联免疫检测试剂盒、促卵泡生成素酶联免疫检测试剂盒 (上海江莱生物),BY-600A型离心机 (北京白洋医疗器械有限公司),BX51显微镜 (日本Olympus公司)。

1.2 方法

1.2.1 POF小鼠模型的建立和分组:将C57BL/6雌鼠随机分为对照组、模型组和治疗组,每组8只。对照组不作任何处理。模型组和治疗组建立POF模型,小鼠腹腔注射环磷酰胺 (50 mg·kg-1·d-1) ,连续注射15 d。卵泡刺激素 (follicle-stimulating hormone,FSH) 升高,雌二醇 (estradiol,E2) 水平降低,各级卵泡显著减少,表明POF模型构建成功。造模结束7 d后,治疗组小鼠给予戊醇雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片灌胃处理,5 d为1个周期,共3个周期。将戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片溶于ddH2O,灌胃第1~2天,给予戊酸雌二醇0.13 mg·kg-1·d-1,第3~4天,给予戊酸雌二醇0.13 mg·kg-1·d-1,雌二醇环丙孕酮0.065 mg·kg-1·d-1,第5天不做处理。

1.2.2 小鼠一般状况观察:造模和治疗过程中,观察小鼠精神状态、活动情况、毛发光泽度和进食情况,记录体质量变化。

1.2.3 动物取材和处理:小鼠10%水合氯醛腹腔注射进行麻醉,摘眼球采血。小鼠处死后,取双侧卵巢置于中性福尔马林中固定。取小鼠结肠端粪便,保存于无菌冻存管,-80 ℃保存。

1.2.4 血清激素水平检测:采用ELISA法检测血清FSH、E2的水平,按照试剂盒说明书操作。

1.2.5 卵巢形态学观察:小鼠卵巢经固定后进行石蜡包埋,切成5 μm的切片,HE染色后观察卵巢形态,统计各级卵泡数量。

1.2.6 肠道菌群多样性分析:每组随机选取5个粪便样本送至上海伟寰生物公司进行肠道菌群多样性检测。提取样本总DNA,对细菌16S rRNA基因的V3~V4可变区进行PCR扩增。引物序列:341F,5’-ATGCGTAGCCGACCTGAGA-3’;805R,5’-CGTC AGACTTTCGTCCATTGC-3’。构建Miseq文库,应用Illumina NovaSeq PE250平台进行高通量测序,得到序列信息,处理后形成扩增子序列变异 (amplicon sequence variant,ASV),对其进行聚类、注释和一系列综合性分析,其中厚壁菌门与拟杆菌门的相对丰度含量比值 (F/B) 是一个能反映机体健康或炎症状态的指标,F/B越低,机体越健康,F/B越高,炎症反应越严重。

1.2.6.1 α多样性分析 使用Shannon指数反映样本的微生物α多样性。Shannon指数越大,样本中微生物种类越丰富,多样性水平越高。

1.2.6.2 β多样性分析 β多样性主要反映组间差异,使用ANOSIM分析检验组间差异是否显著大于组内差异,采用主坐标 (principal co-ordinates analysis,PCoA) 分析、非度量多维尺度法 (non-metric multidimensional scaling,NMDS) 分析反映微生物群落的相似性。每个点代表1个样本,相同颜色为1组,点之间的距离越近,相似度越高。

表1 小鼠体质量的比较Tab.1 Comparison of body mass in mice

1.3 统计学分析

采用SPSS 20.0软件进行统计分析。计量资料用表示,采用t检验进行比较。P< 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 小鼠一般情况比较

对照组小鼠精神状态好,毛发光滑,反应灵敏。模型组小鼠精神萎靡,活动性差,出现一定程度的脱毛,身形消瘦。治疗组小鼠进食量增加,毛发稍有光泽,反应较为敏捷,体质量较模型组增加。

2.2 小鼠体质量比较

实验前 (Day 0),3组小鼠比较,体质量无统计学差异 (P> 0.05)。腹腔注射环磷酰胺15 d后 (Day 15),与对照组比较,模型组和治疗组小鼠体质量明显降低 (P< 0.05)。经戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片灌胃治疗15 d 后 (Day 37),与对照组比较,模型组小鼠体质量明显降低 (P< 0.05);与模型组比较,治疗组小鼠体质量明显升高 (P< 0.05)。见表1。

2.3 小鼠血清激素水平比较

与对照组比较,模型组FSH水平明显升高,E2水平明显降低 (P< 0.05);与模型组比较,治疗组FSH水平明显降低,E2水平明显升高 (P< 0.05)。见表2。

表2 小鼠血清激素水平和卵泡数量的比较Tab.2 Comparison of serum hormone levels and follicle number in mice

2.4 小鼠卵巢卵泡数量比较

与对照组比较,模型组小鼠卵巢发育卵泡、成熟卵泡明显减少,闭锁卵泡明显增加 (P< 0.05);与模型组比较,治疗组发育卵泡明显增加,闭锁卵泡明显减少 (P< 0.05),成熟卵泡数量无明显变化 (P>0.05)。见表2。

2.5 各组小鼠肠道菌群多样性比较

2.5.1 肠道菌群测序分析:对每组小鼠的5个粪便样本进行16S rRNA测序,得到ASV信息。共获得1 040个ASV,其中对照组555个,特有的ASV 212个;模型组455个,特有的ASV 181个;治疗组611个,特有的ASV 240个。3组共有的ASV 176个。见图1。

图1 小鼠肠道菌群ASV韦恩图Fig.1 Venn diagram of ASV of the intestinal flora in mice

2.5.2 α多样性分析:本研究中,各样本的Goodscoverage指数接近于1,表明测序深度已基本覆盖到样本所有的物种 (图2A)。随着样本序列数的增加,曲线逐渐趋于平坦,表明测序数据量足够反映样本中绝大部分的序列信息,结果可信度高 (图2B)。对照组、模型组、治疗组的Shannon指数分别为4.60±0.232、5.60±0.426、5.78±0.381。结果表明,与对照组比较,模型组和治疗组小鼠肠道中微生物种类多样性增加 (P< 0.05)。

图2 小鼠肠道菌群的α多样性分析Fig.2 α diversity analysis of intestinal flora in mice

2.5.3 β多样性分析:ANOSIM分析结果为R= 0.671,P= 0.001,表明3组间物种丰富度有显著差异 (图3A)。肠道菌群PCoA分析和NMDS分析反映组间微生物群落的差异程度。结果显示,对照组与模型组菌群明显分开,表明2组菌群结构有显著差异;治疗组位于2组之间,表明戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片灌胃治疗对小鼠肠道菌群结构差异有回调作用 (图3B、3C、3D)。

图3 小鼠肠道菌群的β多样性分析Fig.3 β diversity analysis of intestinal flora in mice

2.5.4 物种组成丰度分析:采用柱形累加图 (图4)表示3组小鼠粪便中的肠道菌群在不同分类水平上物种的相对丰度。与对照组比较,模型组F/B明显升高,Muribaculaceae丰度明显降低,Lachnospiraceae、Alistipes丰度明显升高 (均P< 0.05);与模型组比较,治疗组F/B明显降低,Muribaculaceae丰度明显升高,Lachnospiraceae、Alistipes丰度明显降低 (均P<0.05)。见表3。

图4 小鼠肠道菌群的相对丰度Fig.4 Relative abundance of intestinal flora in mice

表3 小鼠肠道菌群丰度比较Tab.3 Comparison of abundance of intestinal flora in mice

3 讨论

肠道菌群与人类健康密切相关,是肠道的重要组成部分,在多种疾病的发生、发展中扮演重要角色,或可作为综合防治策略之一。本研究建立环磷酰胺诱导的POF模型,并给予戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片治疗,探究其对小鼠激素水平和肠道菌群的调节作用,通过分析肠道菌群的变化,从肠道菌群的角度为治疗POF提供科学依据。

卵巢内分泌水平能够间接反映卵巢功能。通过下丘脑-垂体-性腺轴调控各种激素的分泌,下丘脑通过分泌促性腺激素释放激素 (gonadotropin releasing hormone,GnRH) 作用于垂体;垂体释放FSH,正反馈作用于卵巢,刺激分泌E2;E2过高时会通过负反馈调节GnRH和FSH的水平,维持机体激素的动态平衡[7]。E2和FSH 可作为评价卵巢功能的重要指标。E2是成熟卵泡分泌的一种雌激素,能够促进颗粒细胞增殖、分化,调控颗粒细胞的凋亡,调节类固醇激素水平。FSH主要起到促进卵泡颗粒细胞分化成熟、控制卵泡发育的作用,FSH激素水平较高时,会造成卵泡早熟和提前排出,导致卵泡衰竭。当E2分泌水平过低且FSH分泌水平过高时,可初步评估卵巢的储备功能,对判断POF有重要作用[8]。本研究中,与对照组比较,模型组小鼠血清E2水平显著降低,FSH水平显著升高,体质量降低,卵巢中发育卵泡、成熟卵泡减少,闭锁卵泡增加,表明环磷酰胺会对下丘脑-垂体-性腺轴产生干扰,影响小鼠生长和发育,降低卵巢储备功能。与模型组比较,治疗组E2水平显著升高,FSH水平显著降低,体质量增加,发育卵泡增加,闭锁卵泡减少,表明戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片能够改善小鼠的激素紊乱和卵巢功能衰退。

血液中激素水平也与肠道菌群有关,菌群组成紊乱影响小鼠的肠肝循环,使代谢产物β-葡萄糖醛酸酶影响结合雌激素与游离雌激素二者的转换过程,从而影响血清中雌激素的水平[9]。肠道菌群一般处于动态平衡中,与宿主相互作用,通过调节糖、脂质和氨基酸等物质的代谢,影响疾病的发生、发展,菌群失调将会导致相关疾病的发生,如肠炎、阿尔茨海默病、肥胖等[10-11]。本研究采用16S rRNA测序技术分析小鼠肠道菌群的变化,与模型组相比,治疗组F/B降低,表明小鼠肠道炎症反应有所缓解。与模型组比较,治疗组优势菌群Muribaculaceae的丰度恢复。Muribaculaceae作为有益菌,与纤维降解有关,可产生琥珀酸、乙酸和丙酸,与维持肠道稳态和改善炎症性疾病有关[12]。与模型组比较,治疗组Lachnospiraceae的丰度降低。Lachnospiraceae与代谢紊乱、糖尿病的发生有关,其丰度与葡萄糖或脂代谢呈正相关,丰度越高,炎症反应越严重[13]。以上结果表明,戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片能够改善POF小鼠肠道的炎症反应,在维持肠道稳态上发挥重要作用。与模型组比较,治疗组Alistipes丰度降低。在致病性方面,Alistipes与抑郁症、焦虑症、结肠癌有关,Alistipes的增加可能通过破坏肠-脑轴来减少血清素的可利用性,引发抑郁症[14]。本研究中,模型组小鼠精神萎靡可能与该菌群丰度增加有关。

综上所述,本研究结果表明,戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片能够缓解小鼠的激素紊乱和卵巢功能衰退,减轻POF小鼠的肠道炎症反应,改变肠道黏膜的通透性,增加有益菌Muribaculaceae的丰度,减少有害菌Lachnospiraceae、Alistipes的定植,对小鼠肠道菌群紊乱有一定的改善作用。本研究从肠道微生态层面上探究了戊酸雌二醇片/雌二醇环丙孕酮片治疗POF的作用机制,为临床探讨POF的发病机制和药物治疗提供了理论依据。

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