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尤瑞克林对急性脑梗死大鼠保护作用及机制研究

2022-08-25杨永利张双鹤闫思蒙

临床军医杂志 2022年8期
关键词:染色神经功能动脉

马 宁, 杨永利, 张双鹤, 丁 亮, 闫思蒙

1.北部战区总医院 干一科,辽宁 沈阳110016;2.沈阳医学院,辽宁 沈阳110000

脑卒中是一种突然起病的脑血液循环障碍性疾病,病死率和致残率极高。 其中,急性缺血性脑卒中较为常见,约占脑卒中总数的80%[1],其发生与高血压、糖尿病、动脉粥样硬化、吸烟、肥胖和血脂异常等有关[2-3]。 急性缺血性脑卒中的治疗主要包括超急性期的恢复灌注治疗、抗血小板和卒中单元治疗,尚缺少其他有循证医学证据支持的治疗手段[4]。 急性缺血性脑卒中的神经保护治疗一直是国际研究的热点。 然而,动物研究中证实有效的神经保护药物尚未成功转化到临床应用中。 尤瑞克林(Ureklin,HUK)是国家Ⅰ类新药,广泛应用于急性脑梗死的治疗。 HUK 可以增加缺血后内源性组织激肽释放酶表达,有效地促进局部血管再生,有助于急性脑梗死伴3 级高血压或心房颤动的恢复[5]。 有研究表明,HUK 可以激活激肽释放酶-激肽系统,诱导缺血脑组织释放一氧化氮,松弛血管平滑肌,使缺血区血管扩张,改善半暗带脑供血,恢复神经功能缺损[6]。 此外,HUK 还可以通过增加缺血半暗带局部脑血流量,诱导梗死周围的内源性神经干细胞增殖,促进血管和神经再生,开放侧支循环,显著减少大鼠脑缺血再灌注后24 h 脑梗死面积和神经缺损[7]。 本研究旨在探讨HUK 对大脑中动脉闭塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型大鼠的保护作用机制。 现报道如下。

1 材料方法

1.1 实验动物与分组 30 只雄性健康SD 大鼠,6 周龄,体质量280 ~300 g,购自本溪长生生物科技有限公司。 将大鼠随机分为假手术组(Sham 组)、MCAO 组和动脉泵入HUK 组(HUK 组),每组各10 只。MCAO 组:建立永久性MCAO 大鼠模型。HUK 组:永久性MCAO 大鼠模型建立后30 min,经动 脉 泵 入 HUK ( 15.625 × 10-4PNAU/kg)。Sham 组:线栓浅插入,不堵塞大脑中动脉,其余手术步骤与MCAO 组相同。 每笼饲养5 只大鼠,在标准饲养条件下(室温20℃±2℃,12 h 明暗周期)自由获取食物和水。 本研究按医院动物实验委员会制定的伦理规定进行。

1.2 MCAO 模型建立 操作过程参考文献[8]。将麻醉后的大鼠仰卧位固定,沿颈前正中线作长约2.5 cm 切口,钝性剥离皮下组织,显露胸锁乳突肌和胸骨舌骨肌;沿胸锁乳突肌和胸骨舌骨肌之间的间隙向下剥离,显露颈总动脉、颈外动脉和颈内动脉;分离颈内动脉、颈总动脉,注意避免损伤迷走神经;分离颈外动脉及其分支枕动脉和甲状腺上动脉,结扎分支动脉,并进一步向远心端分离颈外动脉;动脉夹暂时夹闭颈总动脉和颈内动脉。 在颈外动脉远端结扎并切断颈外动脉,然后反折颈外动脉,使其残端与颈内动脉成一直线,由颈外动脉残端插入线栓/微管装置(PE-0402 管);颈外动脉残端系6-0 脉血液流出,栓/微管装置,然后松开夹闭颈内动脉和颈总动脉的动脉夹;沿颈内动脉推送丝线,小心避免线栓/微管装置进入翼腭动脉;线栓插入距离颈总动脉分叉处约17 ~19 mm,遇到阻力时停止插入;经颅激光多普勒血流仪显示血流值下降至基线值30%以下,MCAO 造模成功。 系紧环绕颈外的动脉丝线,缝合颈前皮肤,75%乙醇擦洗伤口。

1.3 神经功能缺损评分 建模后24 h,由两名不知分组情况的研究人员观察大鼠的症状。 采用改良的Longa 神经功能缺损评分标准对大鼠神经功能进行评分:0 分,无缺陷;1 分,对侧前肢不能完全伸展;2 分,对侧前肢不能伸出;3 分,轻微的向对侧转圈;4 分,严重的向对侧转圈;5 分,向对侧倾倒。

1.4 梗死体积测定 建模24 h 后,经腹腔注射水合氯醛(400 mg/kg)麻醉大鼠。 将麻醉后的大鼠置于冰盘上,快速断头取脑,取出后立即放入冰箱中冷冻20 min。 然后切去嗅脑、额极、小脑和部分脑干。 用大鼠脑切片模具将剩余部分从前往后切成2 mm厚的脑片,共5 片。 将脑片移入装有4% TTC染液的培养皿中,然后置于37℃恒温箱避光染色20 min,每5 min 晃动、翻面一次,保证脑片着色均匀。 染色结束后,将脑片放入PBS 溶液中洗涤,然后转移至4%多聚甲醛溶液中固定24 h;脑片固定完毕后取出,数码相机照相,使用Image J 图像分析软件计算梗死区域(染色减弱的大脑中动脉供血区域)面积。

梗死体积=(梗死对侧体积-梗死侧非梗死区体积)/梗死对侧体积×100%

1.5 组织病理学观察 取大脑后,将海马区组织用4%多聚甲醛固定,石蜡包埋,切成3 ~5 μm 厚的切片。 脱蜡复水后,用苏木精、伊红染色。 显微镜(OLYMPUS,Japan)下观察组织病理学变化。

1.6 Western blot 使用BCA 蛋白分析试剂盒(Thermo Fisher Science,USA)测定蛋白质浓度,上清液在蛋白SDS-PAGE 负载缓冲液中煮沸。 等量的蛋白质样品在十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳中分离。 然后,将蛋白转移至PVDF 膜(Abcam,UK)上,含有10%脱脂奶粉的封闭液(Solarbio,China)封闭膜1.0 h,用Tris 缓冲盐水加吐温-20(Tween-20,T1082)清洗3 次后,添加相应的一抗(S-100β、NSE、SREBP2、ADMA、DDAH1),4℃下孵育过夜。 TBST 清洗膜3 次,与HRP 连接的二抗在室温下孵育1.5 h,样品用TBST 洗涤3 次后,增强化学发光法检测,Image J 软件对靶蛋白进行定量分析。

1.7 统计学方法 采用SPSS 20.0 统计学软件对数据进行处理。 计量资料以均数±标准差(±s)表示,组间比较采用单因素方差分析。 以P <0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组大鼠神经功能缺损评分比较 MCAO 组大鼠神经功能缺损评分明显高于Sham 组与HUK 组,差异有统计学意义(P<0.05)。 见图1。

2.2 各组大鼠大脑梗死体积比较 与Sham 组比较,MCAO 组大鼠大脑可见多处梗死灶(呈白色),未梗死部分呈红色,而HUK 组大鼠梗死部分较MCAO 组明显减少(图2)。 体积测量发现,MCAO 组大鼠梗死体积为(40.25% ±2.14%),高于HUK 组的(28.35% ±2.86%),差异有统计学意义(P<0.05)。

图1 各组大鼠神经功能缺损评分比较

图2 TTC 染色结果

2.3 各组大鼠大脑组织病理学改变结果 MCAO 组大鼠海马神经元表现为严重的损伤,核变形、细胞肿胀、排列分散,并有典型的细胞凋亡改变。 HUK组神经元损伤明显逆转,表现为海马神经元完整紧密排列,核仁清晰,染色均匀,细胞质透明。 见图3。

2.4 各组大鼠神经损伤标志物水平比较 MCAO 组大鼠大脑组织神经损伤标志物S-100β 和NSE 蛋白表达高于Sham 组与HUK 组,差异有统计学意义(P<0.05)。 见图4。

图3 HE 染色结果(a.Sham 组;b.MCAO 组;c.HUK 组;HE×200)

图4 各组大鼠神经损伤标志物水平比较

2.5 HUK对MCAO大鼠SREBP2/ DDAH1/ ADMA信号通路影响 MCAO 组大鼠大脑组织ADMA 蛋白表达高于HUK 组与Sham 组,SREBP2、DDAH1蛋白表达低于HUK 组与Sham 组,差异有统计学意义(P<0.05)。 见图5。

图5 SREBP2、DDAH1、ADMA 蛋白检测结果

3 讨论

HUK 广泛应用于急性脑梗死的治疗,其主要成分是从人体新鲜尿液中提取的238 个氨基酸的糖蛋白,可将激肽原转化为激肽,有选择地扩张大脑小动脉,发挥血管扩张剂的作用,同时可以促进新血管的生成[9]。 然而,HUK 对急性脑梗死的保护作用机制尚不清楚。

ADMA 是内源性一氧化氮合酶的抑制剂,可以减少一氧化氮的生成,导致血管内皮损伤[10]。 内源性一氧化氮可以介导炎症细胞凋亡,调节炎症反应方向,还可以舒张血管及支气管平滑肌,改善通气血流比例[11]。 ADMA 在多种组织和疾病中发挥重要作用,可导致内皮功能紊乱,与高血压、糖尿病、心力衰竭和肺动脉高压的发生密切相关[12-13]。本研究发现,MCAO 组大鼠神经功能缺损评分增加,大脑梗死体积增加,大脑组织ADMA 表达显著增加,而HUK 明显降低了ADMA 表达,提示ADMA可能在脑梗死过程中发挥重要作用。

本研究中,MCAO 组大鼠DDAH1 蛋白表达降低,而HUK 可以明显增加MCAO 大鼠DDAH1 蛋白表达。 DDAH1 是ADMA 的主要水解酶,可以将ADMA 分解为瓜氨酸和二甲胺经肾排出[15]。DDAH1 与动脉粥样硬化、高血压、慢性心功能不全、高脂血症、糖尿病及周围动脉闭塞性疾病有关[16-17]。 DDAH1 还可以通过激活Ras/PI3K/Akt通路,提高体内一氧化氮水平[18]。 SREBP2 是内质网驻留的转录因子,通过细胞内胆固醇的减少和内质网钙离子的丢失被激活,然后诱导触发核转位和胆固醇调节基因[19]。 有研究发现,辛伐他汀可以促进SREBP2 蛋白表达,从而促进DDAH1 转录,降低 ADMA 表 达[20]。 这 提 示, HUK 可 能 通 过SREBP2/DDAH1/ADMA 信号通路发挥对大鼠急性脑梗死的功能保护作用。

综上所述,HUK 可明显改善MCAO 大鼠神经功能缺损评分,减轻大脑梗死体积,缓解神经元损伤,降低S-100β 和NSE 蛋白表达,对急性脑梗死发挥保护作用,这种保护作用可能通过调节SREBP2/DDAH1/ADMA 信号通路实现。

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