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河南省部分地区鸡源沙门菌分离鉴定与耐药性分析

2022-02-18巩新廷苏玉贤

中国动物传染病学报 2022年6期
关键词:沙门血清型耐药性

巩新廷,石 岩,苏玉贤

(1.内黄县畜牧兽医服务中心,安阳 456300;2.焦作市动物卫生监督所,焦作 454000;3.平顶山市畜牧技术推广站,平顶山 467000)

沙门菌(Salmonella)是肠杆菌科的重要致病菌属,在人和动物的肠道细胞内寄生,有2500多种血清型[1],绝大部分血清型对人类和畜禽有致病性,引起动物腹泻、人急性胃肠炎和食物中毒。鸡源沙门菌病通常造成雏鸡腹泻、脱水,甚至死亡,成年鸡呈慢性或隐性感染,长期携带病原菌,蛋鸡产蛋性能下降。病鸡和带菌鸡为主要传染源,可以水平和垂直传播,种鸡场一旦发生疫情很难净化,严重危害养鸡业健康发展,同时也直接威胁公共卫生安全。目前,使用抗生素依然是养鸡场防治该病主要手段。但是,长期滥用抗生素导致沙门菌株耐药性增强,尤其是多重耐药现象不断出现,动物成为耐药菌的重要储存库[2],给有效防治沙门菌病带来很大困难。

本研究采集2021年河南省平顶山等地区鸡源病料进行细菌分离鉴定、血清型分析和耐药性检测,为今后鸡源沙门菌病净化、筛选临床安全合理用药提供指导依据。

1 材料与方法

1.1 病料来源和菌株无菌采集河南部分地区35个规模鸡场疑似鸡沙门菌病鸡肝脏、心脏和肠道等样品154份作为待检病料。肠炎沙门菌标准株(CVCC3377)和大肠埃希氏菌(ATCC29922)购自中国兽医药品监察所。

1.2 主要培养基和试剂缓冲蛋白胨水增菌液(BPW)、麦康凯培养基和LB液体培养基、四硫磺酸钠煌绿(TTB)增菌液、法国科马嘉沙门菌属显色培养基购自青岛海博生物技术有限公司;细菌微量生化反应管、沙门菌属诊断血清(60种)、DL2000 DNA marker、2×PCR Premix购自宁波天润生物药业有限公司;15种K-B药敏纸片包括大观霉素(SPT)、氨苄西林(AMP)、环丙沙星(CIP)、呋喃唑酮(FUR)、阿米卡星(AN)、氟苯尼考(FLO)、链霉素(STR)、复方新诺明(SXT)、新霉素(NTL)、阿奇霉素(AZM)、多西环素(DOX)、左氧氟沙星(LEV)、庆大霉素(CN)、头孢曲松(CTRX)、头孢喹肟(CTX)均购自杭州天河微生物试剂有限公司。

1.3 细菌分离培养无菌采集病死鸡的肝脏、脾脏、肺脏、肛拭子和用生理盐水清洗鸡蛋表面的污水等病料接种于BPW,36℃±1℃、220 rpm培养12 h后,取1 mL增菌液转入10 mL TTB,42℃±1℃培养18 h,再用接种环取适量TTB增菌液划线接种于法国科马嘉沙门菌显色培养基,36℃±1℃培养21 h,挑取疑似沙门菌单个菌落染色镜检,观察菌体形态,并在麦康凯培养基上进行纯化培养。

1.4 生化试验将分离纯化的细菌接种于细菌微量生化反应管中,再放入恒温箱中,37℃培养24~48 h,观察记录结果,结果依据《GB4789.4—2016 食品微生物学检验 沙门菌检验》[3]进行判定。

1.5 PCR鉴定采用水煮法提取细菌DNA制备模板。挑取待检纯化后的菌落接种于LB液体培养基,37℃振荡培养12 h,10 000×g离心3~5 min,弃掉上清液。灭菌ddH2O洗3次,再用ddH2O重悬,煮沸10 min,冰浴冷却5 min,10 000×g离心3~5 min,取上清液为DNA模板,-20℃保存,备用。根据GenBank(登录号:JQ665438.1)发表的序列,针对沙门菌fimY基因设计一对引物,上游引物序列5'-CGCCCAGCCATACGGATAACC-3',下游引物序列5'-TACCACGCAGGAAAGACACC-3'。由中美泰和生物技术(北京)有限公司合成,预期扩增片段大小427 bp。PCR反应体系(25 μL):2×PCR Premix 12.5 μL,DNA模板0.5 μL,上、下游引物各1 μL,ddH2O补至25 μL。反应条件:95℃预变性5 min;94℃变性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸30 s,共30个循环;最后72℃延伸10 min。取5 μL扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测,使用凝胶成像仪观察结果并记录。大肠埃希氏菌ATCC29922为阴性对照和肠炎沙门菌标准株CVCC3377为阳性对照。

1.6 血清型鉴定分离菌株的血清型分群和定型鉴定采用GB 4789.4-2016标准中的玻片凝集试验方法。待检菌以1.2%LB琼脂作为测定A~F、O、H抗原的培养基,37℃培养12 h,用生理盐水制备成2麦氏单位的菌悬液。从血清型鉴定试剂盒中取20 μL的血清于洁净玻片上,再挑取20 μL菌悬液与血清摇动混匀30 s,观察凝集结果。同时,设生理盐水为阴性对照试验,观察菌株是否发生自凝现象。1 min内凝集者判为阳性,均匀浑浊或清亮者为阴性。根据菌体O抗原和鞭毛H抗原鉴定结果,查阅沙门菌抗原式进行被检菌株血清型分群和定型。

1.7 药敏试验药敏质控菌株为肠炎沙门菌标准株CVCC3377。采用WHO提供的药敏纸片琼脂扩散法(Kirby-Baue)测定48株分离菌对15种常见抗菌药的耐药性,测量抑菌圈直径大小,依据美国临床和实验室标准协会标准(Clinical & Laboratory Standards Institute, CLSI)判定15种抗生素敏感(S)、中介(I)和耐药(R)结果,根据药敏试验判定耐药表型。

2 结果与讨论

2.1 细菌分离培养革兰氏染色为阴性,镜检可见短杆状菌,两端钝圆,单个、成对或成丛存在。疑似菌在法国科玛嘉沙门菌属显色培养基呈现为大小一致、边缘整齐的紫色小菌落,在麦康凯培养基上可见无色、半透明、光滑菌落,符合沙门菌生长特性。共有48株初步判定为疑似沙门菌菌株。

2.2 生化试验结果生化试验鉴定结果表明,48株分离菌株均能分解甘露醇、葡萄糖和山梨醇,不发酵蔗糖,赖氨酸、硫化氢和动力吲哚鸟氨酸试验阳性,靛基质、尿素、V-P试验阴性,依据食品安全国家标准沙门菌检验标准(GB 4789.4—2016),有48株符合沙门菌生化鉴定特征。

2.3 PCR鉴定结果部分分离菌株检测结果见图1。凝胶电泳结果显示,以沙门菌fimY基因引物对48株分离菌株PCR扩增鉴定,均能扩增出大小为427 bp的目的片段,与预期片段大小一致,对照菌株扩增结果为阴性。结合生化鉴定结果,本次从154份病料样品中共鉴定分离出48株鸡沙门菌,总分离率为31.17%。对来自河南省不同地区鸡源沙门菌鉴定结果统计,48株沙门菌中安阳13株(27.08%),新乡9株(18.75%),郑州7株(14.58%),平顶山11株(22.92%),焦作8株(16.67%),表明上述地区均有不同程度鸡源沙门菌感染。钱明珠等[4]对河南省部分鸡沙门菌流行病调查,分离率为27.97%;廖成水等[5]报道,河南部分地区鸡源沙门菌分离率为15.89%。本研究高于上述检测率,表明近年来鸡源沙门菌感染有上升的趋势,需要加强鸡沙门菌病的净化控制。

图1 部分分离菌株的PCR鉴定结果Fig.1 The PCR identification results of isolated strains

2.4 血清型鉴定结果采用玻片凝集法对48株沙门菌血清型分型试验,鉴定结果显示,共鉴定出44株沙门菌的血清型,占沙门菌分离株的91.67%(44/48),其余4株未确定出血清型。鉴定出的44株沙门菌分属3个大群5种血清型,包括19株鸡白痢沙门菌(43.18%)、13株肠炎沙门菌(29.54%)、7株鼠伤寒沙门菌(27.27%)、3株甲型副伤寒沙门菌(6.18%)和2株乙型副伤寒沙门菌(4.45%)。优势血清型为鸡白痢沙门菌、肠炎沙门菌和鼠伤寒沙门菌。河南省部分地区鸡源沙门菌血清型分布见表1。

表1 河南省部分地区鸡源沙门菌血清型分布Table 1 Distribution of serotypes of Salmonella from chicken in some areas of Henan Province

2.5 药敏试验结果对48株鸡源沙门菌进行15种抗生素耐药性检测,结果见表2。对氨苄西林耐药率最高,为95.83%,其次对呋喃唑酮、大观霉素、链霉素也具有较高的耐药性,介于62.50%~66.67%;对环丙沙星、氟苯尼考、复方新诺明和左氧氟沙星耐药菌株占比介于10.42%~22.92%;对阿米卡星、新霉素、阿奇霉素、多西环素、庆大霉素、头孢曲松、头孢喹肟的耐药率最低,介于2.08%~8.33%。48株鸡源沙门菌抗生素耐药谱结果见表3。2株(4.17%)对所有试验药物敏感,37株至少对3种或3种以上的抗生素出现耐药性,多重耐药率占77.08%(37/48);以4重和5重耐药最多,有25株,占52.08%(25/48),最多为8重耐药,有1株,占2.08%(1/48)。耐药模式较多,耐药表型主要为AMP+FUR+SPT+STR。沈学怀等[6]报道,安徽地区禽源沙门菌对左氧氟沙星、阿米卡星和阿奇霉素等高度敏感;戴建华等[7]从江苏苏中地区分离的22株沙门菌对阿米卡星、甲氧胺嘧啶、萘啶酮酸、庆大霉素、诺氟沙星的耐药率均为72.73%~100%,表现严重的耐药性,与本研究结果基本一致。

表2 分离菌株药敏试验结果Table 2 Drug susceptibility test results of isolated strains

表3 48株沙门菌分离株抗菌药耐药谱Table 3 Antimicrobial resistance spectrum of 48 Salmonella isolates

根据本研究中的药敏试验结果,建议选取阿米卡星、多西环素、庆大霉素、头等高敏药物作为临床用药,采用交叉用药、轮换用药等方式,减少耐药菌株产生。同时,应加强养鸡场沙门菌净化,强化流行病学调查和耐药性监测,保证鸡群的健康养殖。

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