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槐米黄酮的纯化和体外抗氧化活性研究

2021-09-22王菲王晨朱风仪由佳湄姚玲珑孙玉琪王战勇

应用化工 2021年8期
关键词:槐米样液聚酰胺

王菲,王晨,朱风仪,由佳湄,姚玲珑,孙玉琪,王战勇

(辽宁石油化工大学 石油化工学院,辽宁 抚顺 113001)

槐米,别名白槐、槐籽、槐花米,是豆科植物槐的花蕾,在山东、河南、安徽、山西、陕西等地大量生产。槐米中黄酮含量较为丰富,其所含芸香苷具有降低毛细血管通透性,减轻脆性以及维护血管抵抗力等作用[1-3]。此外,黄酮还具有抗氧化、抗菌消炎、抗肿瘤、增免等生物活性,研究发现,黄酮类化合物具有治疗人体疾病的药理作用[4-8],功能强大,是一种天然健康安全的保健成分。

近年来,对黄酮类化合的研究越来越受到科技工作者的重视,继而开发了大量的黄酮保健品及药品,迎合了不同人群的消费需求。不同来源黄酮会呈现各自特有的生物活性,本研究选取了资源丰富、黄酮含量较高的,但研究较少的槐米为原料,通过对槐米黄酮进行聚酰胺柱层析纯化处理,研究槐米黄酮纯化物的生物活性,为其后续深入开发利用提供科学理论基础。

1 实验部分

1.1 材料与仪器

槐米,辽宁恒生实业集团有限公司;芦丁标准品(100 mg),色谱纯;95%乙醇、盐酸、过氧化氢、氢氧化钠、水杨酸、三氯乙酸、硝酸铝、亚硝酸钠、抗坏血酸、邻苯三酚、三羟基氨基甲烷、硫酸亚铁、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠均为分析纯;DPPH,生物试剂;聚酰胺(30~60目)。

ALC-1100.2电子天平;All basic分析研磨机; UV-2600可见分光光度计;RE-52AA型旋转蒸发器;DUG-9021A电热恒温干燥箱;HH-4数显恒温水浴锅;SHB-Ⅲ型循环水式多用真空泵;LGJ-10型冷冻干燥机;TDL-40B台式离心机;DHL-A电脑恒流泵;BS-100A型自动部分收集器。

1.2 槐米总黄酮的提取纯化

槐米于50 ℃干燥至恒重,冷却,粉碎,过40目筛,装瓶待用。

称取一定质量槐米粉末,加入一定量乙醇溶液和一定浓度的SDS,摇匀,经过400 W超声处理、水浴一定时间,离心,上清即为槐米黄酮粗提液。配制一定质量浓度和pH的槐米黄酮上样液,控制吸附流速和上样量进行上样,用蒸馏水淋洗,再用一定浓度、体积的乙醇按照一定流速进行解吸,得到黄酮纯化液,用NaNO2-Al(NO3)3-NaOH法测定黄酮含量[9]。标准曲线方程为:Y=0.553 4C-0.001 6,R2=0.999 9。 黄酮得率按下面公式计算:

槐米黄酮得率(mg/g干重)=

1.3 槐米黄酮体外抗氧化活性实验

1.3.1 清除DPPH自由基能力的测定 0.2 mmol/L的DPPH 2 mL,加入槐米黄酮纯化液1 mL,加95%乙醇补至4 mL,混匀静置。在517 nm波长,以水为参比,测量95%乙醇吸光度为Ac,样品吸光度为AS[10]。

选择抗氧化能力较好的Vc作阳性对照,以期对比槐米黄酮的体外抗氧化活性,计算黄酮与Vc的清除率。

清除率/%=[(Ac-As)/Ac]×100

清除率/%=[(Ac-As)/Ac]×100

1.3.3 清除羟基自由基(·OH)能力的测定 取1 mL不同浓度槐米黄酮纯化液,分别添加1 mL 10 mmol/L FeSO4,1 mL 10 mmol/L 水杨酸-乙醇,加1 mL 8.8 mmol/L H2O2启动反应,37 ℃恒温水浴锅中反应0.5 h。以去离子水作参比,在510 nm处测定1 mL去离子水AC和样品AS[12]。Vc为阳性对照计算清除率。

清除率/%=[(Ac-As)/Ac]×100

1.3.4 还原力的测定 取1 mL不同浓度槐米黄酮纯化液,依次加入pH 6.6 0.2 mol/L磷酸缓冲液和1% K3Fe(CN)6各2.5 mL混匀,于55 ℃保存20 min,取出,迅速冷却,加入10%三氯乙酸2.5 mL混合,3 000 r/min离心10 min,取2.5 mL上清液,加水2.5 mL、0.1% FeCl30.5 mL,充分混合后静置10 min。以去离子水作参比,于700 nm测定1 mL去离子水Ac和样品AS[13]。Vc为阳性对照计算还原力。

还原力=As-Ac

2 结果与讨论

2.1 槐米黄酮纯化条件研究

2.1.1 pH的影响 称取0.5 g的干聚酰胺树脂8份,分别放入100 mL三角瓶中,用少量去离子水浸泡4 h,使其达到饱和,滤掉多余水分,分别加入pH值为1.86,2.73,3.89,4.78,5.63,6.89,7.42,8.56,质量浓度为5.22 mg/mL上样液40 mL,于室温下振荡吸附24 h,使其完全均衡,并计算相应吸附量(Q),结果见图1。

由图1可知,在pH 6.89时,聚酰胺对黄酮吸附量最大,即在pH 6~7之间有较大的吸附效果。这是由于黄酮具有多羟基酚和糖苷键结构,使其显弱酸性,所以在弱酸性环境中吸附良好。因此,上样液pH控制在6~7较为合适。

2.1.2 上样液质量浓度的影响 用相同方法处理7份树脂,将40 mL、pH 6.0、浓度分别为1.33,2.66,3.99,5.22,6.65,7.98,9.31 mg/mL的样品液分别加入7份树脂中,操作同上,计算吸附量(Q),结果见图2。

由图2可知,吸附率随黄酮质量浓度的增加先增大后减小,在5 mg/mL左右时吸附率最大,故选择5 mg/mL为最适上样液质量浓度。

2.1.3 吸附流速的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按不同吸附流速0.5,1,1.5,2,2.5,3,3.5,4 mL/min上样,分别计算吸附率,结果见图3。

由图3可知,最大吸附率出现在1.0 mL/min处,之后流速过快,导致吸附不充分,吸附率下降。因此,选择1.0 mL/min为最佳吸附流速。

2.1.4 上样量的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按柱床体积倍数1,2,3,4,5 BV进行上样,吸附流速1.0 mL/min,分管收集流出液,测定其中黄酮浓度,计算聚酰胺对槐米黄酮的吸附率,结果见图4。

一般来说,最适上样量出现在流出液中黄酮质量浓度为上样液中的1/10时,此时停止继续上样。由图4可知,最佳上样量为1.5 BV。

2.1.5 冲洗水量的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按1 mL/min进行上样,用1 BV蒸馏水淋洗,共5次,按柱体积分别收集淋洗流出液,测定其中黄酮的残留量,结果见图5。

由图5可知,冲洗水量超过3 BV时,流出液基本无色。因此,选择3 BV冲洗水量最为合适。

2.1.6 解吸液浓度的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按1 mL/min上样,用3 BV蒸馏水淋洗聚酰胺柱,再用体积分数分别30%,40%,50%,60%,70%,80%,90%,100%乙醇溶液进行洗脱。根据各阶段解吸液中黄酮含量,计算相应解吸率,结果见图6。

由图6可知,乙醇体积分数80%时解吸率最大。因此,解吸液浓度80%较为合适。

2.1.7 解吸流速的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按1 mL/min上样,3 BV蒸馏水淋洗聚酰胺柱,再用体积分数80%乙醇分别在1,1.5,2,2.5,3,3.5,4,4.5 mL/min解吸流速下洗脱,收集解吸液,并测定黄酮含量,算出相应解吸率,结果见图7。

由图7可知,解吸流速增大,解吸率先升高后下降,在1.5 mL/min达到最大,故解吸流速以1.5 mL/min 较为适合。

2.1.8 解吸液用量的影响 将pH 6.0,5.22 mg/mL上样液按1 mL/min上样,3 BV蒸馏水淋洗聚酰胺柱,再分别用0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0,3.5,4.0,4.5,5.0,5.5,6.0,6.5,7.0,7.5 BV,80%乙醇按1.5 mL/min进行解吸,分别收集解吸液,测定黄酮含量,结果见图8。

由图8可知,当解吸液超过4 BV时,流出液中黄酮浓度显著减少,说明已基本洗脱完全。故为减少溶剂浪费,解吸液用量选择4 BV较合适。

2.1.9 聚酰胺柱使用次数的影响 在一根聚酰胺树脂柱上进行吸附解吸实验,计算每一次的黄酮吸附率,结果见图9。

由图9可知,增加使用次数,吸附效果逐渐变差。这与杂质堵塞树脂孔隙有关。当使用次数增加到6次后,吸附率下降趋势尤为明显。因此,聚酰胺柱每用5次就需要再生。

2.2 槐米总黄酮的体外抗氧化实验

2.2.1 对·DPPH的清除力 由图10可知,槐米黄酮对·DPPH清除效果较Vc略差,但是相较而言,槐米黄酮在600 μg/mL高浓度区间内,对·DPPH 达到了87.14%的清除率,也表现出了对·DPPH 较强的清除效果,但比Vc略差一些。

2.2.3 对·OH的清除力 由图12可知,Vc对·OH 清除率在1 000 μg/mL时达到了98.92%,效果非常好。与Vc相比较,槐米黄酮在1 000 μg/mL时只有34.57%,仅表现出一定的清除力,效果比Vc差些。

2.2.4 还原力 吸光度越大,表明还原能力越强。由图13可知,槐米黄酮的还原能力与Vc接近。

3 结论

(1)槐米黄酮最佳纯化条件:用5 mg/mL,pH 6~7的槐米黄酮液按吸附流速1.0 mL/min上样1.5 BV,用3 BV水淋洗,再用5 BV 体积分数80%乙醇,按1.5 mL/min解吸,效果最佳,树脂每使用5次后再生。

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