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中华鳖Wnt4基因克隆及表达分析

2021-01-11张英萍王利华邹桂伟罗相忠梁宏伟

海洋渔业 2020年6期
关键词:性腺激动剂雌性

张英萍,凌 晨,王利华,沙 航,邹桂伟,胥 焘,罗相忠,梁宏伟

(1.上海海洋大学水产科学国家级实验教学示范中心,上海 201306;2.中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉 430223;3.上海海洋大学农业农村部淡水水产种质资源重点实验室,上海 201306;4.三峡大学生物与制药学院,湖北宜昌 443002)

Wingless 基 因 最 初 由 SHARMA 和CHOPRA[1]在果蝇(Drosophila melanogaster)中发现,其基因突变能导致果蝇翅膀的缺失,随后一种原癌基因int1[2]从小鼠(Mus musculus)乳腺瘤病毒诱导的小鼠乳腺癌中被克隆,由于2个基因具有较高的同源性且功能相似,故将它们合称为Wingless-type MMTV integration site family(Wnt)基因。Wnt基因家族是一类重要的分泌性糖蛋白信号分子,可以激活多种信号通路,在动物的早期发育及各种生命活动中发挥着重要作用[3~4]。从线虫到哺乳动物均发现Wnt基因家族的存在[5],其具有高度的保守性[6]。

Wnt4基因是Wnt基因家族重要的成员之一,与脊椎动物两性生殖系统的发育有关[7],介导Mullerian导管的初始形成,并调节类固醇生成的中肾细胞向发育中的性腺迁移[8~9]。在哺乳动物中,Wnt4基因已经被证实是卵巢分化的关键因子[10]。在小鼠中,Wnt4基因通过调节Follistatin基因的表达来参与卵巢发育[11],雌性小鼠Wnt4的表达缺失导致XX性腺的雄性化[8],而雄性中Wnt4的过表达则破坏睾丸血管和睾丸甾酮的合成[9]。在人体中,Wnt4与Dax1协同调控女性卵巢发育并阻止睾丸的形成[12]。Wnt4在哺乳动物调控性腺发育、调节缪勒氏管的形成、调控卵巢类固醇的生成及抑制睾丸的形成中起关键作用[13]。此外,Wnt4在哺乳动物中还参与了肾脏、肾上腺、乳腺和生殖系统的形成[7]。在鱼类中,Wnt4与性腺发育密切相关。 在半滑舌鳎(Cynoglossus semilaevis)中,Wnt4参与了性腺发育的整个过程,且在精巢表达水平高于卵巢[14]。在黑鲷(Acanthopagrus schlegeli)中,Wnt4被证实与卵巢发育和性别分化有关[15]。

中华鳖(Pelodiscus sinensis)属爬行纲,龟鳖目,鳖科,鳖属,俗称甲鱼、水鱼、团鱼[16]。在中国除西藏、青海和新疆外,各省市(自治区)均有分布,是我国重要的特种水产养殖对象之一,具有较高经济价值和药用价值[17]。在养殖过程中,雄性个体具有明显的个体大、生长速度快、裙边宽厚、营养价值丰富以及市场单价高等优势,因此性别控制和全雄苗种培育一直以来都是中华鳖研究的重要方向。本研究通过克隆中华鳖Wnt4基因,分析其在雌雄个体不同组织中的表达特征、胚胎不同发育时期的表达特征以及Wnt激动剂对Wnt4基因表达的影响,进而探讨Wnt4基因在中华鳖性别分化过程中的作用,以期为进一步开展中华鳖性别决定和性腺分化研究提供理论基础,并为全雄苗种培育提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 实验材料

本实验所用中华鳖成鳖于2018年3月采自安徽省喜佳农业发展有限公司。中华鳖雌雄个体各3只,其中雄性平均体质量为(395.36±20.55)g,雌性平均体质量为(283.72±18.02)g,经麻醉后解剖收集脑、性腺、心脏、肝脏、脾脏、肺、肾脏、肠和肌肉等组织样品,置于 -80℃冰箱保存,用于总RNA的提取。中华鳖鳖卵于2018年5—6月收集自安徽省喜佳农业发展有限公司产卵场,置于温度为(30.0±0.5)℃恒温恒湿培养箱(湿度在80% ~85%)中进行孵化。

1.2 实验试剂

Wnt激动剂(Wnt agonist 1是具有细胞透性的Wnt信号通路激活剂,诱导依赖于β-catenin和TCF-4的转录活性,Selleck公司),总RNA提取试剂Trizol Reagent(Invitrogen公司),PCR Mix和GoldenstarTMRT6 cDNA Synthesis Kit(北京擎科生物有限公司),SMARTer®RACE cDNA 5′/3′Kit(Takara),DNA凝胶纯化试剂(南京诺维赞生物有限公司),PMD-18T载体(Takara)和DH5α感受态细胞(武汉清阳渡生物有限公司),无特殊说明的试剂均为国产分析纯。

1.3 总RNA提取和cDNA第一条链合成

按照Trizol法提取总RNA,用超微量分光光度计 NP80 (德 国,IMPLEN)测 定 RNA 的OD260nm/OD280nm检测RNA的质量、纯度以及浓度,并用1% 琼脂糖凝胶电泳检测总RNA的完整性。用GoldenstarTMRT6 cDNA Synthesis Kit(北京擎科生物有限公司)和SMARTer®RACE cDNA 5′/3′Kit(大连,Takara)按照操作指南分别合成cDNA和RACE cDNA第一条链。

1.4 中华鳖Wnt4基因克隆

从NCBI数据库中获得海龟(Chelonia mydas)、三趾箱龟(Terrapene carolina triunguis)和美洲短吻鳄(Alligator mississippiensis)等物种Wnt4基因的cDNA序列,在保守区域设计简并引物Wnt4-CF和Wnt4-CR(表1),以中华鳖卵巢组织cDNA为模板,进行PCR扩增。反应体系为50 L,反应程序为:98℃预变性2 min;98℃10 s,60℃10 s,72℃20 s,35个 循环;72℃延伸2 min,4℃10 min。利用DNA凝胶纯化试剂盒(大连,Takara)回收目的片段产物。回收产物连接到PMD-18T载体(大连,Takara)上并转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞中,37℃培养过夜,挑取经菌落PCR检测阳性克隆菌液测序。

基于获得的中华鳖Wnt4基因片段的cDNA序列设计3′RACE引物Wnt4-3′-GSP和Wnt4-3′-NGSP,5′RACE 引物Wnt4-5′-GSP(表1)。以RACE cDNA第一条链为模板,GSP(Wnt4-3′-GSP和Wnt4-5′-GSP)和UPM(RACE试剂盒引物)为引物进行降落式PCR,反应程序如下:94℃5 min;94℃30 s,72℃3 min,5个 循环;94℃30 s,70℃30 s,72℃3 min,5 cycle;94℃30 s,68℃30 s,72℃3 min,25个循环。再以3′端降落式PCR产物50倍稀释液为模板,Wnt4-3′-NGSP和UPM short(RACE试剂盒引物)为引物进行半巢式PCR反应,程序为:94℃5 min;94℃30 s,68℃30 s,72℃3 min,25个循环。PCR产物经纯化、连接和转化,挑取阳性克隆菌液测序。

1.5 序列分析以及同源性分析

用DNAMAN软件包对获得的5′cDNA和3′cDNA及中间序列进行全长拼接,在NCBI数据库中利用在线ORF Finder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html)查找开放阅读框(ORF);利用ExPASy ProtParam工具预测Wnt4蛋白质的基本理化性质;利用SOPMA工具预测Wnt4蛋白二级结构;氨基酸的多重比对采用Clustal X和DNAMAN 完成;糖基化位点采用在线软件NetNGlyc 1.0 Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetNGlyc/)预测,用Mega7.0中的邻接法(NJ)构建系统进化树,并采用1 000次自举检验分析(bootstrap analysis)评估进化树分支节点的置信度。

1.6 组织表达特征分析

基于获得的中华鳖Wnt4基因cDNA全长序列用Primer 5.0设计实时荧光定量引物Wnt4-F和Wnt4-R(表1)。中华鳖18sRNA用作内参基因[18],按照以下程序进行PCR扩增:95℃5 min;95℃15 s,60℃30 s,40个 循环;95℃15 s,60℃1 min,95℃15 s。数据采用相对表达量的计算方法,即基因相对表达量=2-△△Ct法,2-△△Ct值代表目的基因与对照组表达量之间的倍数差异[19]。数据采用平均值±标准误差(mean±SD)表示,用SPSS22.0软件进行单因素方差分析(one-way ANOVA),使用Turkey多重比较法进行差异显著性分析,P<0.05为显著性差异。

1.7 胚胎不同发育时期表达特征

按照TOKITA和KURATANI[20]胚胎分期标准采集30℃孵化条件下中华鳖胚胎发育的第14~21期胚胎样品,置于液氮中速冻,然后转移到 -80℃冰箱中保存。采用本实验室开发的性别标记进行胚胎性别鉴定[21]后进行荧光定量表达分析。

1.8 Wnt激动剂对Wnt4基因表达量的影响

依据已有研究报道得知:孵化温度为30℃时,孵化至第9天生殖嵴隆起,孵化至第15天原始性腺形成,孵化至第26天完成性腺分化[22]。因此我们在孵化至第15天原始性腺形成时,使用Wnt激动剂对胚胎动物极注射处理,用微量进样器分别注射1.0 g·L-1、2.5 g·L-1和5.0 g·L-1的Wnt激动剂各1 L,对照组dd H2O 1 L,用石蜡封口,继续孵化。收集注射后0、6、12、24、36、48、72、96、120、144、168 h胚胎样品,用于定量表达。

2 结果与分析

2.1 中华鳖Wnt4基因全长cDNA序列特征和系统进化

中华鳖Wnt4 cDNA序列全长为2 432 bp,开放阅读框(ORF)为1 095 bp,编码364个氨基酸,5′-UTR 48 bp和3′-UTR 1 289 bp(图1)。Wnt4蛋白含有2个N-糖基化位点分别位于N-109和N-310处,具有Wnt基因家族特有保守片段“CKCHGVSGSC”、24个Wnt蛋白家族重要的半胱氨酸保守序列。用在线工具ExPASy对中华鳖Wnt4蛋白的二级结构进行预测,二级结构中无规则蜷曲(c)占46.98%、α-螺旋(h)占38.74%、延伸链(e)占9.89%、β转角(t)占4.4%。

不同物种Wnt4氨基酸序列分析结果见表2,中华鳖与海龟、三趾箱龟、美洲短吻鳄、达马拉鼹鼠(Fukomys damarensis)、裸鼢鼠(Heterocephalus glaber)、人(Homo sapiens)、小鼠、斑马鱼(Danio rerio)、牙鲆(Paralichthys olivaceus)、半滑舌鳎、栉孔扇贝(Azumapecten farreri)和厚壳贻贝(Mytilus coruscus)同源性如表2所示,与海龟和三趾箱龟的同源性最高。

表1 中华鳖Wnt4基因扩增引物信息Tab.1 Information of primers for Wnt4 amplification in Pelodiscus sinensis

中华鳖Wnt4蛋白与海龟、三趾箱龟、美洲短吻鳄、裸鼢鼠、人、小鼠、斑马鱼、牙鲆、半滑舌鳎、栉孔扇贝和厚壳贻贝等11个物种的蛋白序列多重比较分析见图2,其序列比较保守,与其他物种有100多个Wnt保守位点。

基于邻接法(NJ)构建Wnt4蛋白氨基酸序列系统进化树(图3),结果为三大支,哺乳动物和爬行动物聚为一大支,其中哺乳类和爬行动物分别聚为一支:中华鳖与海龟、三趾箱龟和美洲短吻鳄等爬行动物聚为一支。硬骨鱼类聚为一大支,贝类聚为一大支。

表2 不同物种与中华鳖Wnt4蛋白氨基酸序列同源性比对Tab.2 Comparative identity of amino acid sequence of Wnt4

2.2 Wnt4基因在中华鳖组织中的表达特征

Wnt4基因在中华鳖雌雄个体不同组织中的表达结果表明,Wnt4基因普遍存在于中华鳖的脑、性腺、心脏、肝脏、脾脏、肺、肾脏、肠以及肌肉等组织中,且广泛表达,但是表达存在一定的组织和性别特异性(图4)。性腺中表达量最高,肺次之;并且雌性卵巢表达显著高于雄性精巢(P<0.05),具有显著的性别二态性。脑、心脏、肝脏、脾脏、肾脏、肠和肌肉中,Wnt4表达量显著低于性腺和肺(P<0.05)。肝脏中雄性的表达显著高于雌性(P<0.05),而在脑、肺、肾脏和肌肉中,雌性表达显著高于雄性(P<0.05)。

2.3 Wnt4基因在中华鳖胚胎不同发育时期的表达特征

为研究Wnt4基因在中华鳖性腺分化中的作用,采用qRT-PCR方法分析中华鳖Wnt4基因在雌雄中华鳖胚胎不同发育时期中的表达情况,结果如图5所示,Wnt4基因在性腺分化前的第14期已经有表达,性腺开始分化后在雌性胚胎中表达持续高于雄性(P<0.05),在第20期和21期雌性胚胎中的表达极显著高于雄性胚胎(P<0.01),表达呈现性别二态性。

2.4 Wnt激动剂对中华鳖Wnt4基因表达的影响

为研究Wnt激动剂对中华鳖性别发育的影响,采用qR T-PCR方法分析了注射Wnt激动剂后中华鳖胚胎发育过程中Wnt4基因的表达水平。不同浓度Wnt激动剂处理后Wnt4基因的相对表达如图6所示。

在雌性胚胎中,注射1.0 g· L-1和2.5 g·L-1的Wnt激动剂后,6~12 h表达显著低于对照组(P<0.05)(图6-A,C),72 h表达达到最大峰值,96 h表达显著降低(P<0.05)。注射5 g·L-1的Wnt激动剂后,在6~24 h内Wnt4表达与对照组无显著性差异(P>0.05)(图6-E),在36 h表达显著增加(P<0.05),72 h表达达到最大峰值,96 h后表达逐渐降低,Wnt4表达量显著高于对照组(P<0.05)。

在雄性胚胎中,注射1.0 g·L-1Wnt激动剂后,6 h后显著上调Wnt4的表达(P<0.05)(图6-B),36 h表达达到最大峰值,48 h后表达逐渐降低,72 h后表达显著低于对照组(P<0.05)。注射2.5 g·L-1Wnt激动剂后,6 h显著上调Wnt4的表达(P<0.05)(图6-D),96 h表达达到最大峰值,120 h时表达开始显著降低(P<0.05)。注射5 g·L-1Wnt激动剂后,6~96 h表达逐渐上升,Wnt4表达显著高于对照组(P<0.05)(图6-F),96 h表达达到最大峰值,120 h时表达开始显著降低(P<0.05),但显著高于对照组(P<0.05)。

在雌性胚胎中,注射1.0 g·L-1Wnt激动剂,Wnt4基因在36~144 h表达上调;浓度2.5 g·L-1时,在24~168 h表达上调;浓度5.0 g·L-1时,在24~168 h表达上调。在雄性胚胎中注射1.0 g·L-1Wnt激动剂,Wnt4基因在6~36 h表达上调;浓度2.5 g·L-1时,在6~96 h表达上调;浓度5.0 g·L-1时,在6~168 h表达上调。在胚胎中,随着注射浓度的增加,Wnt激动剂的作用时间总体上更持久。

3 讨论

Wnt信号通路是在进化上高度保守的信号途径,在胚胎发育、细胞分化、增殖以及凋亡等生理过程中均发挥了重要的调控作用,已经成为细胞生物学和分子生物学研究的一大热点[23]。本研究得到的Wnt4基因cDNA序列全长为2 432 bp,编码364个氨基酸,具有24个Wnt蛋白家族重要的半胱氨酸保守序列,2个N-糖基化位点且有100多个保守位点,符合Wnt结构特点[2]。中华鳖Wnt4与同为龟鳖目的海龟和三趾箱龟同源性最高,达91.74%,与其他物种的同源性也较高。

Wnt4基因在哺乳动物[24-25]、鱼类[26-27]、贝类[28-30]、虾蟹类[31]等生物中的不同组织中均存在表达,Wnt4基因表达具有广泛性且其功能具有多样性,其可能参与了多种组织细胞的生命过程。中华鳖Wnt4基因在脑、性腺、心脏、肝脏、脾脏、肺、肾脏、肠和肌肉等组织均有表达。Wnt4基因在中华鳖中同样具有多种功能,推测其可能参与了多种组织细胞的生命过程。Wnt4基因与多种动物的性别决定和性别分化密切相关,Wnt4基因突变,会导致性腺发育异常甚至性反转[7-9,11]。Wnt4基因缺失的小鼠可导致雌性胚胎发生雄性化[8]。BARRIONUEVO 等[32]研 究 发 现,小 鼠Wnt4基因在性别决定之前的性腺中存在表达,性别分化后在卵巢中仍持续表达,精巢中的表达显著下调,Wnt4基因参与雌性性别分化过程。本研究中华鳖Wnt4基因在性别分化前的第14期就在雌性胚胎中高表达,且在之后的胚胎发育过程中一直维持雌性高表达,雌性胚胎中的表达显著高于雄性胚胎中的表达,Wnt4基因同样也参与了中华鳖雌性性腺分化的过程。Wnt4基因发生突变会引起性腺发育异常甚至性反转[7,9,11]。Wnt信号通路是哺乳动物性别决定的关键因子[7],但其作用机制仍不清楚。本研究中Wnt激动剂能上调中华鳖Wnt4基因的表达,随着浓度的增加Wnt4基因上调表达水平变高,推测其对性别发育有一定的作用,而其作用机制和对性别发育的作用还有待进一步研究。

本研究获得中华鳖Wnt4基因的cDNA全长序列,并分析序列特征、表达特征以及Wnt激动剂对其表达的影响。中华鳖Wnt4基因表达具有广泛性和一定的组织特异性,可能参与多种组织生物学过程,尤其是在卵巢发育或其功能维持上起关键作用,参与了中华鳖雌性性腺分化过程,结果有助于中华鳖性别分化分子机制的进一步研究。

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