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紫朱软膏对急性创面愈合过程中IL-1β、MMP-9和TGF-β的作用及自噬相关性研究

2020-12-03胡啸明黄仁燕韩强严仕梦柳国斌

中医药学报 2020年11期
关键词:软膏创面炎症

胡啸明,黄仁燕,韩强,严仕梦,柳国斌*

(1.上海中医药大学附属曙光医院中医血管外科,上海 201203;2.上海交通大学生命科学技术学院,上海 200240)

创面修复是临床上外科医生经常面对的难题之一,随着医学技术的发展,急性创面一般预后较好,但常因治疗不当或患者基础疾病的原因,易迁延形成慢性难愈性创面,少数有癌变可能。因此,早期急性创面的处理至关重要。

已有研究提示在创面愈合过程中,细胞的自噬水平呈动态变化,决定创面最终的转归。现代基础医学的不断发展,使我们对外科创面愈合机制的认识深入到了细胞与分子水平,从而为指导临床治疗提供了有力的支撑。前期临床实践中发现,中药外用制剂的有效应用,能促进创面快速愈合,尤其在慢性难愈性创面中优势明显。因此,本研究观察以“清热祛腐生肌法”组方的中药紫朱软膏对急性创面愈合的疗效、作用机制以及自噬和创面愈合的相互关系。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 动物

选取雄性SPF级SD大鼠30只,体质量(250±20)g,购于上海斯莱克实验动物有限责任公司,生产许可证号SCXK(沪)2012-0002,饲养在上海中医药大学实验动物中心,常规饮食进水,饲养环境:温度: 20~25℃,相对湿度40%~50%,光照周期12 h/日。

1.1.2 药物与试剂

紫朱软膏(100 kg生产处方量包括生药朱砂3.5 kg,紫草1.5 kg,龙血竭3 kg,黄芪1.5 kg,阿胶2.5 kg,冰片0.5 kg,辅料白凡士林、羊毛脂、泊洛沙姆等共87.5 kg)为院内经验方,委托马应龙药业集团股份有限公司按照制作工艺和质控标准生产。生理盐水,四川科技药业股份有限公司。4%多聚甲醛、苏木精染液、1%伊红酒精溶液,国药集团(沪试),2.5%戊二醛、丙酮、3%醋酸铀-枸橼酸铅,上海生工生物工程技术有限公司。PMSF、RIPA裂解液、BCA蛋白浓度测定试剂盒、辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG(H+L),碧云天生物工程有限公司,PrimeScriptTM RT reagent Kit(for real time)、SYBR®Premix Ex Taq®II (Tli RNaseH Plus),日本TAKARA公司,Beclin-1、LC3、IL-1β、MMP-9、TGF-β一抗和GAPDH,美国Sigma公司。

1.1.3 仪器

EG1160包埋机、石蜡切片机、HI1120水平式烘干仪(型号:德国Leica),正置显微镜(型号:日本Olympus),透射电子显微镜(型号:荷兰FEI Tecnai G2 Spirit TEM),电泳仪(型号:EPS 300,上海),微型垂直电泳槽(型号:VE 180,上海),荧光化学发光成像系统(型号:ChemiQ4600,上海),荧光定量PCR仪(型号:瑞士罗氏LightCycler®96)。

1.2 造模与分组

实验动物适应性饲养3 d,第4天进行造模。①麻醉:10%水合氯醛腹腔内注射,每只剂量标准3 mL/kg;②脱毛:后背部6×4 cm2范围(后脊正中线两侧各延伸3 cm;③制作皮肤创面:以后脊正中线旁开2 cm,用皮肤打孔器(规格内径12 mm)于脱毛区域钻孔,顺钟向旋转,待皮肤分离,用眼科剪配合连带皮下筋膜一并剪去,止血。造模成功后,大鼠按体质量编号,生成随机数字表,随机分为对照组和治疗组,每组 15只。

1.3 干预

治疗组给予紫朱软膏按0.032 g/cm2比例外用换药,1次/d;对照组给予生理盐水外用换药,1次/d;观察周期21 d。

1.4 检测指标与方法

在创面形成后1 d、4 d、7 d、14 d和21 d共5个时间点,每个时间点每组各取3只大鼠,分别进行指标检测。

1.4.1 创面愈合率

将数码相机(5D Mark III,Canon公司,日本)采集的图片导入计算机,选出最清晰图片,用Image-Pro Plus Version 6.0软件计算4、7、14、21 d创面面积,再计算创面愈合率[1],创面愈合率=(原始创面面积-未愈合创面面积)/原始创面面积×100%。

1.4.2 组织学观察

剪取创面组织标本,4%多聚甲醛固定,石蜡包埋,切片,HE染色,光镜下观察创面组织形态[2]。

1.4.3 自噬体观察

2.5%戊二醛固定,丙酮脱水、包埋、固化、超薄切片机切成50~60 nm切片,3%醋酸铀-枸橼酸铅双染色,透射电镜观察两组大鼠在各时相点的创面组织细胞的自噬体形态、结构[3]。

1.4.4 Western Blot法检测目的蛋白

取大鼠皮肤创面组织50 mg,加入适当量的裂解液,比例为1∶100,充分裂解后,11 000 r/min的4 ℃离心机离心10 min,取上清。按照BCA定量法计算出蛋白浓度,补充适量RIPA液,加入 loading buffer,使各个样本等体积等量上样,煮沸5 min使蛋白变性。50 μg上样量,用15%分离胶使蛋白分离,半干转膜200 mA,1 h使蛋白转至PVDF膜上,5%脱脂牛奶常温封闭1 h,一抗4 ℃孵育过夜( 一抗稀释比例1∶1 000,β-actin作为内参) ,二抗(稀释比例1∶1 000)常温孵育30 min,暗室发光,显影,洗片。拍照,用Image J软件计算灰度值并进行分析。

1.4.5 RT-PCR法检测目的基因

取大鼠皮肤创面组织100 mg置于研钵中,加入500 μL TRIzol试剂及100 μL氯仿提取总RNA,应用Prime ScriptTM RT试剂盒进行逆转录制备cDNA。以GAPDH为内参进行荧光定量PCR扩增以检测各组大鼠皮肤创面组织中Beclin-1、LC3、IL-1β、MMP-9和TGF-β mRNA的表达水平。扩增引物由美国Thermo Fisher Scientific公司合成,引物序列见表1。反应条件:50 ℃预处理2 min,循环1次;95 ℃预变性30s,循环1次;95 ℃变性5 s,循环40次;60 ℃退火34 s,循环40次;72 ℃延伸30 s,循环40次。各组均设3个复孔。以2-ΔΔCt法表示各目的基因的相对表达量。

表1 引物信息

1.5 统计学方法

2 结果

2.1 创面愈合率

4 d,两组组创面逐渐缩小,无明显液性渗出。7 d时,两组创面边缘区域部分已结痂,逐渐向中心靠拢,紫朱软膏组创面愈合率达到45%,两组有统计学差异(P<0.01)。14 d时,两组创面面积缩小明显,愈合面积过半,具有统计学差异(P<0.01)。21 d时,紫朱软膏组已基本愈合,愈合率达到 98%,高于对照组,且有统计学差异(P<0.01)。见表2、图1和图2。

表2 两组创面愈合率的比较

图1 两组创面愈合情况

图2 两组创面愈合率比较

2.2 组织学观察

7 d时,与对照组相比,紫朱软膏组有较多成熟肉芽组织和新生毛细血管;14 d时,紫朱软膏组初步形成毛细血管网,上皮组织可见排列较整齐的胶原纤维组织,而对照组上皮组织间隙较多,未见成熟的胶原纤维;21 d时,紫朱软膏组形成规则的毛细血管网,一定数量的腺体结构,而对照组相对较少(见图3)。

图3创面组织HE染色(×100)

2.3 自噬体观察

透射电镜拍照结果如下图所示,7 d时,可以看出NS组出现自噬现象,细胞核染色质开始凝集,核膜有凹陷,胞浆中出现有多层膜或双层膜包绕的泡状结构即自噬泡;14 d时,NS组自噬现象明显比7 d时有所增加。相同时相点,紫朱软膏组细胞核染色质凝集现象明显,核染色质在核质中呈块状凝集,大小不等地分散于核质内,但自噬泡均较对照组明显减少(见图4)。

图4 创面组织内自噬体的电镜观察(Bar=2 μm),红色箭头所示为自噬体

2.4 Beclin-1 、LC3、IL-1β、MMP-9和TGF-β蛋白的检测

对照组14 d时Beclin-1 、LC3蛋白的表达要高于前一时间点7 d,有统计学差异(P<0.05);MMP-9蛋白的表达在不同时间点有统计学差异(P<0.05),7 d<14 d<21 d;各时相点IL-1β蛋白的表达有统计学差异(P<0.05),7 d>14 d>21 d。相同时间点,紫朱软膏组Beclin-1 、LC3、IL-1β蛋白的表达要弱于对照组,有统计学差异(P<0.05),MMP-9和TGF-β的表达要强于对照组,有统计学差异(P<0.05)(见表3、图5)。

表3 两组创面目的蛋白的表达比较

注:Z指紫朱软膏,N指生理盐水。图5 两组创面LC3、Beclin-1、IL-1β、MMP-9和TGF-β蛋白的表达

2.5 Beclin-1、LC3、IL-1β、MMP-9和TGF-β基因的检测

2.5.1 各时相点Beclin-1、LC3、IL-1β、MMP-9和TGF-β mRNA的表达变化

对照组各时相点Beclin-1、LC3、MMP-9和TGF-β mRNA的表达有统计学差异(P<0.05),7 d<14 d<21 d;IL-1β mRNA的表达在不同时相点有统计学差异(P<0.05),7 d>14 d>21 d。4 d时,紫朱软膏组LC3 、TGF-β mRNA的表达要弱于对照组,有统计学差异(P<0.05),MMP-9 mRNA的表达要高于对照组,有统计学差异(P<0.05);7 d时,紫朱软膏组IL-1β、TGF-β mRNA的表达要弱于对照组,有统计学差异(P<0.05),紫朱软膏组MMP-9 mRNA的表达要高于对照组,有统计学差异(P<0.01);14 d时,紫朱软膏组Beclin-1、TGF-β mRNA的表达要弱于对照组,有统计学差异(P<0.01),紫朱软膏组MMP-9 mRNA的表达要高于对照组,有统计学差异(P<0.05);21 d时,紫朱软膏组IL-1β mRNA的表达要弱于对照组,有统计学差异(P<0.01),紫朱软膏组MMP-9、TGF-β mRNA的表达要高于对照组,有统计学差异(P<0.05)(见表4)。

表4 两组创面目的基因的表达比较

2.5.2 各时相点IL-1β、MMP-9和TGF-β和自噬基因LC3 mRNA表达变化的相关性

创伤14 d时,IL-1β表达量与LC3显著正相关(r=0.953,P<0.01);创伤4 d和14 d时,MMP-9表达量与LC3显著负相关(4 d:r-0.916,P=0.01;14 d:r=-0.756,P=0.019)。创伤4 d、7 d和21 d时,TGF-β表达量与LC3显著负相关(4 d:r=-0.911,P=0.001;7 d:r=-0.862,P<0.03;21 d:r=-0.860,P=0.03)(见图6~8)。

图6 各时相点LC3与IL-1β的相关性分析

图7 各时相点LC3与MMP-9的相关性分析

图8 各时相点LC3与TGF-β的相关性分析

3 讨论

在自噬和创面愈合关系的各种研究中结果显示其具有一定的关联性,在烧伤创面中,Beclin-1自噬相关基因高表达,增加自噬活性有利于创面愈合[4]。然而,同时也存在过度的自噬活性表达导致创面愈合延迟的情况。在多项涉及患者或大鼠模型实验的研究中[5-7],应用自噬诱导剂雷帕霉素,机体最终出现创面延迟愈合。目前,几种小分子调节剂如雷帕霉素、海藻糖、锂和利美尼定参与了自噬途径,已经确定能够调节自噬活性。然而,这些调节剂在临床上的应用仍然有限。常见的雷帕霉素的自噬诱导过程相对缓慢,具有较长的间接作用时间,而且其作用始终是暂时的[8]。因此,寻找新的理想自噬调节剂在临床上具有重要的应用价值。

中医药在治疗创面愈合方面具有显著优势,且多项研究显示中医药对自噬具有调节作用[9-12]。中医认为创面的主要病理因素责之于“热”“瘀”“虚”,病机为“因虚致瘀、瘀久化热、热盛肉腐”,因此以“补气化瘀、清热解毒、化腐生肌”理论来指导创面的治疗[13]。创面愈合不良的因素往往是炎症反应过激及相关生长因子分泌不足,而清热祛瘀生肌中药具有调节炎症反应、促进生长因子生成的作用[14-16]。紫朱软膏是以“清热祛腐生肌法”组方,借鉴我国著名中医外科大家奚九一教授的经验方“捞底膏”,在前期研究的基础上进一步优化形成的经验方,全方以朱砂、紫草为君,其中朱砂具解毒祛腐之功;紫草有凉血活血之效,两君相得益彰,共凑清“热”解毒、祛腐化“瘀”之效;黄芪味甘性微温,为补气生肌之要药,托毒退肿之上品,阿胶、血竭同为甘平之品,均有补血生肌之功,其中阿胶补血滋阴俱佳,血竭为治疗溃疡不敛之要药,三者共为臣药,补气血之“虚”;佐以冰片,味辛,通透肌腠以助药效,有效的针对了“热”“瘀”“虚”病理因素。在本研究中,与对照组比较,紫朱软膏组愈合率高,愈合时间短,创面血管新生、再上皮化速度快,体现出了较好的疗效。

创面修复是一个连续复杂的过程,主要包括炎症阶段、增殖阶段、组织重塑阶段3个密切联系、交互重叠的阶段。在此过程中,细胞的自噬水平呈动态变化。在本研究中,14 d时电镜观察创面自噬现象明显比7 d时有所增加,相同时相点,紫朱软膏组自噬泡均较对照组明显减少;各时相点自噬基因Beclin-1和LC3的表达随时间逐渐升高,相同时相点,紫朱软膏组Beclin-1和LC3的表达要弱于对照组,说明紫朱软膏组可能通过抑制细胞的自噬活性从而促进创面的愈合。

而在创面愈合的各个阶段,自噬发挥的作用有所不同:①炎症阶段,自噬具有调节炎症反应的作用,适度的炎症反应有利于去除异物、细菌和受损组织以防止加重感染,过度持续性、慢性炎症反应会造成创面愈合障碍。自噬可通过调节促炎与抑炎因子的表达,使创面炎症反应趋于平衡,有利于创面修复。自噬体将细胞质成分传递给溶酶体进行降解,而炎症小体是受感染或应激激活的分子平台,这些分子平台调节白介素1β(IL-1β)和IL-18等的成熟。SHI等[17]数据表明自噬伴随着炎症小体活化,活性炎症小体消除可缓解炎症。本研究中,IL-1β 表达量与LC3显著正相关,说明自噬活性增强会加重炎症反应。同一组别IL-1β的表达随着时间变化逐渐下降,而两组同一时相点,紫朱软膏组IL-1β的表达要弱于对照组,表明紫朱软膏组可以抑制过度的炎症反应。②增殖(血管新生和上皮化)阶段,氧化应激会引起局部代谢产物堆积和营养物质匮乏,导致机体进一步损伤,自噬在增殖阶段发挥抗氧化应激作用,通过控制对氧化应激的适应性反应来减少细胞凋亡,促进细胞迁移、增殖和分化。LONG等[18]人的研究表明,诱导降低氧化应激水平,可调节基质金属蛋白酶9(MMP-9)的迁移和增殖相关基因的表达。巨噬细胞对于创面修复至关重要,LIAO等[19]研究显示上调自噬水平,通过MAPK1/3磷酸化途径增加MMP9的活性可促进巨噬细胞的迁移。本研究中, MMP-9 表达量与LC3显著负相关,细胞自噬活性增强减少了MMP-9的表达,与既往研究不尽相同。同一组别MMP-9的表达随时间逐渐升高,而两组同一时相点,紫朱软膏组MMP-9的表达要强于对照组,表明紫朱软膏组表现出更好的血管新生、上皮化能力。③组织重塑阶段,主要涉及成纤维细胞(FB)的过度增殖以及细胞外基质(ECM)的沉积,自噬可通过调控FB的凋亡和ECM的合成与降解来促进组织瘢痕的重建。转化生长因子β(TGF-β)是创面修复中的重要信号分子,可调节各种类型细胞的增殖、分化和死亡,其参与胶原及细胞外基质的合成与降解,TGF-β与瘢痕愈合有关,可诱导体内各种组织纤维化反应等[20]。DING等[21]研究表明,LC3缺乏诱导自噬水平降低可引起促纤维化因子TGF-β的升高,从而导致胶原沉积的增加和成熟,加速纤维化进程。本研究中,TGF-β表达量与LC3显著负相关,细胞自噬活性减弱有利于TGF-β的产生;而同一组别TGF-β的表达随时间逐渐升高,两组同一时相点,紫朱软膏组TGF-β的表达要强于对照组,表明紫朱软膏组更易诱导组织纤维化形成瘢痕。

本研究结果表明,紫朱软膏的作用机制可能是在创伤修复过程中抑制细胞的自噬活性,通过下调IL-1β的表达抑制炎症反应,上调MMP-9和TGF-β的表达促进血管新生、组织纤维化,从而达到创面愈合的目的。相关研究结果显示,IL-1β能通过增强MMP-9 mRNA的稳定性,进而介导MMP-9的高表达[6]。也有研究表明,MMP-9可通过其水解作用使TGF-β转变为活性状态[22]。MMP-9可能在创面修复自噬机制中承担着关键角色,有可能成为潜在的治疗靶点,但有待进一步深入研究证实。

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