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松弛素对马兜铃酸诱导肾小管上皮细胞MMP-9/TIMP-1 表达的影响

2020-11-24钱盈盈谢祥成钱红萍

浙江中西医结合杂志 2020年11期
关键词:马兜铃胞外基质肾小管

钱盈盈 杨 秀 谢祥成 钱红萍 章 炜

马兜铃酸肾病(aristolochic acid nephropathy,AAN)是摄入含有马兜铃酸类成分中草药(如关木通、广防己、青木香等)导致的肾小管间质疾病,曾被称为中草药肾病[1]。马兜铃酸(AA-I)是中草药肾病和巴尔干地区特有肾病的主要致病原因[2-3],迄今为止,其治疗策略仍然有限[4]。松弛素(relaxin,RLX)是松弛素/胰岛素肽激素家族成员,具有较强的抗纤维化作用[5],本实验拟通过观察RLX 对AA-I 刺激的肾小管上皮细胞(HK-2 细胞)表达细胞外基质、细胞基质金属蛋白酶9(matrix metalloproteinases-9,MMP-9)和金属蛋白酶组织抑制因子1 (tissue inhibitor metallopro-teinase-1,TIMP-1)的影响,探讨RLX 在AAN 中抗纤维化的作用机制。

1 材料与方法

1.1 材 料 人肾小管近端上皮细胞系购自中国科学院细胞库。重组人松弛素购自美国Peprotech(批号130-15);人纤连蛋白(fibronection,FN)ELISA 试剂盒购自武汉博士德(批号EK0349)、人Ⅳ型胶原(human collagen type Ⅳ,Col-Ⅳ)ELISA 试剂盒购自武汉Cusabio(批号CSB-E17116h);PVDF 膜购自美国Millipore 公司(批号ISEQ00010);抗体MMP-9/TIMP-1/ACTIN 购自中国Proteintech(批号分别为27306-1-AP,16644-1-AP,60008-1-Ig);AA-I 购自美国sigma(批号313-67-7)。

1.2 方 法

1.2.1 细胞培养、刺激、分组 HK-2 细胞于DMEM/F12(Gibco,美国,批号11320033)培养基中培养,添加10%胎牛血清,37℃、5%CO2条件下培养。根据刺激方法不同随机分为:对照组(无干预)、AA-I 组(10μg/mL AA-I 刺激48h)、RLX 组(RLX 10ng/mL 干预48h)、RLX+AA-I 组(RLX 10ng/mL 干预48h 后再加AA-I 10μg/mL 刺激48h)。刺激条件参考文献[6-7]。

1.2.2 ELISA 法检测HK-2 细胞外基质分泌情况取对照组、AA-I 组、RLX+AA-I 组HK-2 细胞上清液,依照试剂盒说明测定Col-Ⅳ、FN 浓度。每份标本均设3 个复孔,酶标仪在450nm 处测吸光值,以其均值代表实验数值。

1.2.3 蛋白质印迹分析 对照组、AA-I 组、RLX 组、RLX+AA-I 组HK-2 细胞经胰蛋白酶消化并离心后,以RIPA 裂解缓冲液裂解细胞。经煮沸变性、8% w/v SDS-PAGE 凝胶中电泳后转移到PVDF 膜,在室温下用5%脱脂牛奶封闭1h。膜在TBS-T 中洗涤三次,然后与抗MMP-9、TIMP-1、ACTIN 抗体在4℃下孵育过夜。洗涤3 次,与辣根过氧化物酶标记的相应二抗常温下孵育2h。再次以TBST 清洗膜后用增强的化学发光(ECL)检测试剂盒检测。灰度值强度由TINA 图像软件(Raytest,德国)测定。

1.2.4 统计学方法 应用SPSS 21.0 统计软件进行数据分析,计量资料以均数±标准差() 表示,两组间比较采用独立样本t 检验,P<0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组细胞外基质FN、Col-Ⅳ水平比较 与对照组比较,AA-I 组FN、Col-Ⅳ水平显著升高(P<0.05),RLX+AA-I 组FN、Col-Ⅳ水平明显低于AA-I 组(P<0.05),见表1。

表1 各组细胞外基质FN、Col-Ⅳ水平比较(ng/mL,)

表1 各组细胞外基质FN、Col-Ⅳ水平比较(ng/mL,)

注:对照组无任何刺激;AA-I 组予10μg/mL AA-I 刺激48h;RLX+AA-I 组:RLX 10ng/mL 干预48h 后再加AA-I 10μg/mL 刺激48h;FN为纤连蛋白;Col-Ⅳ为Ⅳ型胶原蛋白;AA-I 为马兜铃酸;RLX 为松弛素;与对照组比较,aP<0.05;与AA-I 组比较,bP<0.05

2.2 各组MMP-9、TIMP-1 蛋白表达比较 与对照组比较,AA-I 组MMP-9 表达降低,TIMP-1 表达显著升高(P<0.05);与AA-I 组比较,RLX+AA-I 组MMP-9 蛋白表达显著升高,TIMP-1 蛋白表达显著下降(P<0.05)。见图1、表2。

3 讨论

图1 蛋白质印迹分析HK-2 细胞MMP-9、TIMP-1 蛋白表达

表2 各组MMP-9、TIMP-1 蛋白表达比较()

表2 各组MMP-9、TIMP-1 蛋白表达比较()

注:对照组无任何刺激;AA-I 组予10μg/mL AA-I 刺激48h;RLX+AA-I 组予RLX 10ng/mL 干预48h 后再加AA-I 10μg/mL 刺激48h;MMP-9 为细胞基质金属蛋白酶9;TIMP-1 为金属蛋白酶组织抑制因子1;AA-I 为马兜铃酸;RLX 为松弛素;与对照组比较,aP<0.05;与AA-I 组比较,bP<0.05

AAN 的主要病理特征是广泛的小管间质纤维化,伴有近端小管萎缩和丧失,偶有少量散在或小灶状淋巴及单核细胞浸润,肾小球无明显病变或呈缺血性基底膜皱缩及硬化[8]。HK-2 细胞有机阳离子转运体选择性摄取AA-I,因此,近端管状上皮细胞是AA-I 的易损伤部位[9]。AA-I 反复作用于肾小管上皮细胞,可诱导释放转化生长因子(transforming growth factor beta,TGF-β)等促纤维因子表达上调,导致肾间质纤维化[10]。此外,AA-I 可诱导HK-2 细胞转分化,转分化后的HK-2 细胞直接分泌细胞外基质,促进肾间质纤维化,细胞外基质的增加在AA-I 的进程中起到非常重要的作用[11]。本研究显示,AA-I 可显著增加HK-2 细胞分泌细胞外基质FN 和Col-Ⅳ水平(P<0.05)。

细胞外基质的过度蓄积是肾间质纤维化的主要病理基础,MMP-9 及TIMP-1 在细胞外基质的降解与重塑过程中发挥了重要作用[12]。细胞基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)是一类锌依赖肽链内切酶系,几乎能降解全部细胞外基质成分[12]。TIMP-1 能特异性地抑制MMPs 的活性,通过不可逆结合抑制MMP-9 活性,从而抑制其对细胞外基质的降解,两者的平衡共同维持着细胞外基质和内环境的稳定[13]。MMP-9 酶活性受到抑制可导致细胞外基质过度沉积,从而导致肾纤维化[12]。本研究显示,HK-2 细胞经AA-I 处理后伴随着细胞外基质水平的升高,细胞表达MMP-9 蛋白减少(P<0.05),表达TIMP-1 蛋白增多(P<0.05),提示MMP-9/TIMP-1 蛋白的失衡可能参与HK-2 细胞分泌细胞外基质。

RLX 与胰岛素结构相似,通过与RLX 家族肽受体(RXFP1、RXFP2、RXFP3、RXFP4)受体结合,可以发挥多种生物效应;RLX 因其在妊娠期间发挥多种生理效应包括子宫收缩、诱导宫颈生长和变软、结缔组织重构等为分娩做准备而被广泛认识[14]。近年来,随着对RLX 的广泛深入研究,其在非生殖领域中的作用引起研究者们的极大兴趣。RLX 的主要代谢作用在于其可以通过抑制胶原合成、激活MMPs、抑制TIMPs 导致结缔组织重塑,并被证明是有效的抗纤维化药物[15-18]。本研究发现,RLX 可以诱导HK-2 细胞MMP-9 表达升高,抑制TIMP-1 的表达,并逆转AA-I 诱导的细胞外基质异常积累(P<0.05),认为RLX 可能通过调节MMP-9/TIMP-1 的平衡状态改善AA-I 所致肾脏纤维化。

综上所述,本实验研究显示,RLX 可上调MMP-9 蛋白表达和下调TIMP-1 蛋白表达,减少细胞外基质的沉积,从而抑制肾小管间质纤维化,可能对AAN起到保护作用。

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