微生物群体感应系统及其在现代食品工业中应用的研究进展

励建荣， 李婷婷， 王当丰

(1.渤海大学 食品科学与工程学院/生鲜农产品贮藏加工及安全控制技术国家地方联合工程研究中心， 辽宁 锦州 121013；.大连工业大学 海洋食品精深加工关键技术省部共建协同创新中心，辽宁 大连 116034；3.大连民族大学 生命科学学院， 辽宁 大连 116600； 4.江南大学 食品学院， 江苏 无锡 214122)

自然界中微生物无处不在，它们之间利用信号分子进行化学交流，用于调节群体行为[1]。群体感应(quorum sensing，QS)作为一种细菌间的通讯机制，于1994年首次被Fuqua等[2]提出并定义。群体感应具有评估群体中细菌数量和密度的能力，允许仅在达到临界阈值浓度时才能引起特定基因表达，进而启动细菌特定的群体行为，促进细菌个体间相互交流以更好地适应生长环境。目前，已有多种微生物的行为特征被证实受群体感应现象的调控：如生物发光、生物被膜形成、毒力因子产生、抗生素合成、质粒的结合转移以及细菌迁移运动[3-5]等。为调节细胞间的相互作用，细菌进化出一些基于信号分子的化学语言，即在繁殖过程中分泌一些特定的小分子- 自诱导物(autoinducer，AI)，在作为单细胞及生物膜生长时发挥特定作用[6]。

正由于微生物存在这种独特的调控机制，使其成为人为调控微生物行为的潜在靶点，从而使其在食品保鲜，生物发酵等领域极具应用潜力。因此，本文着重对食品微生物中所涉及的常见的群体感应类型及机制进行概述，并简述群体感应系统在食品腐败以及生物合成等领域的研究进展。

1 群体感应的类型

微生物之间的生态学关系非常复杂。QS系统使细菌能够识别混合种群中特定物种成员，还可使细菌感知自身与其他物种的比例，即存在自体/种内群体感应及种间群体感应[7]。不同种类细菌通讯的化学信号分子不同，根据细菌所分泌信号分子的不同大致可分为：寡肽类(autoinducing peptides，AIPs)，G+为主；酰基高丝氨酸内酯类(acyl-homoserine lactone，AHL)，G-为主；AI- 2类，G+、G-均可；其他类信号分子，如二酮哌嗪类(Diketopiperazines,DKPs)、喹诺酮类(PQS)及AI- 3等[8]。不同信号分子的功能、系统组成包括不同QS系统之间的关系都相对复杂，对QS系统更深层次的研究在实现微生物资源的高效利用和病原微生物的有效防控方面具有很大潜力。近年来，有关食品腐败菌QS现象的研究热潮愈发强烈。微生物与食品的腐败过程密切相关，这对于现代食品工业的发展也具有非常重要的现实意义。

1.1 革兰氏阴性菌的群体感应系统

在革兰氏阴性菌群体感应系统中，常见的信号分子为N-酰基- 高丝氨酸内酯(N-acyl-homoserine lactones, AHLs)，也被称为AI- 1型信号分子。AHLs以N-酰基- 高丝氨酸内酯环为核心，通常含有4～18个碳的酰基侧链。高丝氨酸内酯环部分来源于S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosylmethionine, SAM)，酰基侧链部分来源于酰基载体蛋白(acyl carrier protein, ACP)或酰基辅酶A[9]。不同菌种分泌的AHLs有所不同，但它们均具有一个高度保守的高丝氨酸内酯环，其区别在于酰基侧链上可能形成双键或第三碳位上容易被羟基或氧取代，这些可变性决定了AHLs的特异性[10]。研究表明，AHLs可以自由地穿过细胞膜，但由于侧链长度不同其进出细胞的方式有所不同，当碳原子数小于8时，AHLs可以自由扩散出入细胞；而碳原子数达到10以上时，则需要转运载体的帮助进行快速转移，因此短侧链不饱和的AHLs比长链更容易扩散[11]。

LuxI/LuxR系统是革兰氏阴性菌中典型的QS调控系统，最早发现于海洋费氏弧菌的生物发光现象中，是目前研究最为深入和广泛的一类QS系统。图1为革兰氏阴性菌QS系统的模型，LuxI及LuxR蛋白主要参与调控过程。LuxI蛋白是自诱导物合成酶，负责信号分子AHL的合成，在LuxI蛋白酶催化下，以SAM和ACP为底物合成 AHL[12]。AHL合成后便通过细胞膜释放到环境中，由于AHL可以自由通过细胞膜，所以膜内外的AHL浓度一致。随着细菌数量的增加，AHL呈正相关增加，当AHL浓度达到一定阈值时，便与细菌膜内的LuxR 蛋白的N端特异性结合形成 AHL-LuxR 复合物，进而激活基因的转录[13]。LuxR蛋白是细胞质内自诱导物感受因子，同时也是一种DNA结合转录激活元件，负责特异性结合AHL。LuxR蛋白具有两个主要的结构域，一个是位于N-末端结构域内的AHL结合域(ligand-binding domain, LBD)，即AHL结合位点，另一个则是位于C-末端结构域内的靶基因结合域(DNA-binding domain, DBD)，此区域具有保守的螺旋- 转角- 螺旋结构。当形成AHL- LuxR复合物后，由于DBD区域的暴露，导致其与下游的靶基因启动子相结合，从而激活下游基因的转录过程，如费氏弧菌在荧光素酶基因被激活后出现发光现象[14]。

图1 革兰氏阴性菌中LuxI/R群体感应系统调控示意图Fig.1 Schematic diagram of LuxI/R QS system in gram-negative bacteria

随着QS相关研究的不断深入，已在许多细菌中发现类似费氏弧菌LuxI/LuxR系统的群体感应系统，其中研究较为透彻的是铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa)。铜绿假单胞菌具有复杂的信息交流机制，至少存在3种QS调控系统，分别为LasI/LasR、RhlI/RhlR和PQS系统[15]。铜绿假单胞菌主要依赖于Las系统和Rhl系统进行QS相关调控。Las系统主要生成3-oxo-C12-HSL信号分子，由自诱导物合成酶LasI及转录调节因子LasR进行QS系统调控[16]。Las系统不仅能调节自身的正反馈循环，其产生的信号分子还能正向调节Rhl系统的转录。弹性蛋白酶、LasA 蛋白酶、碱性蛋白酶及外毒素等毒力因子的表达均受到Las系统的调控[17]。与LasI/LasR相似，RhlI/RhlR系统中的信号分子合成酶 RhlI 能够产生信号分子C4-HSL，当C4-HSL达到浓度阈值时，与转录调节因子RhlR蛋白结合，进而调控相关毒力因子的表达，如鼠李糖脂的生成，嗜铁素、绿脓菌素、LasA 蛋白酶及 LecA/LecB凝集素等的表达[18]。相关研究表明，Las与Rhl系统具有复杂的相互调控及自诱导调节作用，Las系统对转录激活蛋白RhlR的表达具有调控作用，完整且具有活性的Las系统能够将Rhl系统调控基因完全激活。其次，PQS类信号系统以2-庚基-3羟基- 4-喹诺酮为信号分子，能够调控生物被膜的形成和毒力因子的产生。此外，PQS系统与Las/Rhl系统的级联反应有关，能够调控 Rhl的表达，而其自身的合成又受 Las系统的调节，并且PQS系统的生物活性又依赖于RhlR的存在[19]。最近研究还发现了铜绿假单胞菌中一种新型的QS辅助系统GacS/GacA系统，该系统在细菌迁移、生物被膜形成过程中具有重要作用。

1.2 革兰氏阳性菌的群体感应系统

在一些革兰氏阳性菌，如芽孢杆菌、肺炎链球菌、粪肠球菌和金黄色葡萄球菌等病原菌中也发现了群体感应机制。革兰氏阳性菌的QS系统中最普遍的信号分子为AIPs化合物。AIPs是经过加工或加工后修饰的自身分泌的前导肽，由双组分磷酸激酶蛋白产生，其氨基酸侧链通常含有异戊烯、硫内酯环等修饰性基团，氨基酸数量多数为5～17个。与高丝氨酸内酯类信号分子不同，AIPs不能以自由扩散的方式通过细胞膜，需要在细胞质中经前导肽切割、加工、修饰后结合到ATP转运蛋白上，利用ComAB基因编码的ABC(ATP binding cassette)转运系统输出到胞外[20]。当AIPs累积到一定浓度阈值时，双组分系统的感应识别元件被激活，AIPs被磷酸激酶受体识别，并在激酶中组氨酸残基进行磷酸化，经过与之对应的转录调节蛋白的天冬氨酸残基传导磷酸化信号，最终磷酸化的响应调节蛋白与DNA特定位点结合，进而调控QS相关基因的表达，形成动态的交流系统。金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的Agr系统是一种研究较为广泛的QS调节系统[21]，见图2。图2显示，在葡萄球菌的Agr系统中，AIPs信号分子由AgrD蛋白编码合成，通过膜蛋白AgrB进行硫代内酯环化修饰并分泌到胞外。当AIPs达到一定阈值后，与受体组氨酸蛋白激酶AgrC结合并使之磷酸化，由磷酸化级联反应将信号分子传递给调控蛋白AgrA，进而激活Agr系统中的靶启动子P2和P3的转录，分别产生RNAII和RNAIII[22]。由启动子P2启动的RNAII转录框主要包括agrA、agrB、agrC及agrD基因的agr操纵子，而启动子P3启动的RNAIII转录框则是agr系统的效应分子，研究发现，这些因子对宿主的附着、免疫逃逸能力、毒素及入侵相关蛋白酶的产生具有重要作用[23]。

蜡样芽胞杆菌(Bacilluscereus)是一种兼性厌氧的产芽孢杆菌，广泛分布于土壤、植物以及各种食品中。蜡样芽胞杆菌作为一种条件致病菌常常与食物中毒有关，通过自身产生并分泌各种溶血素及毒素从而引起急性胃肠炎等疾病。研究发现，B.cereus中存在着3种QS系统，分别为PlcR- PapR、LuxS/AI- 2和Rap- Phr系统。在PlcR- PapR系统中，PapR编码短的信号肽前体，通过plcR和nprB分别编码的中性蛋白酶NprB在细胞外激活，加工修饰后的AIP通过寡肽通透酶系统(Opp)内化到细胞中，与转录因子PlcR形成四聚体，进而激活QS调控基因的表达[24]。

研究表明，枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis)中也存在AIP类的QS系统，主要以CSF和ComX两种小分子寡肽为信号分子，当其浓度达到一定阈值时，激活感受态转录因子Com K并表达，从而促进细胞的感受态形成[25]。此外，肺炎链球菌感受外源DNA的感受态行为也利用了类似的调控系统[26]。

图2 金黄色葡萄球菌中的双组分群体感应系统Fig.2 Two component QS system in Staphylococcus aureus

1.3 种间的群体感应系统

自然界微生物单一菌落形成的概率微乎其微，同一生长环境下种间相互影响、相互作用。共存体系中多菌间的相互作用相对复杂，正因为如此，人们对于微生物的利用尚处在发展阶段。随着研究的不断深入，研究者对菌间作用的认识不断加深。1933年，Caliver[27]发现布氏瘤胃球菌(Ruminococcusbromii)能够在与其他微生物共培养的条件下分解自身不能分解的抗性淀粉。在共培养条件下，微生物之间或协同代谢，或相互竞争，常见的微生物共培养主要包括接触共培养和非接触共培养两种。接触共培养是指两种细胞没有分开来，如简单的混合培养(按一定比例混合)；非接触共培养是指利用一定的共培养装置将两种细胞接种到同一培养体系中生长，两种细胞分开，存在物质交换。种间群体感应的研究正是在此基础上对群体感应研究的进一步深化，具体是指在竞争环境下能够感受外源微生物释放的种间信号分子及群体数量，从而诱导出现特定的生理现象[28]。革兰氏阴性和阳性细菌之间具有由自身诱导物呋喃酰硼酸二酯(AI- 2)介导的QS系统，该系统由LuxS蛋白催化(luxS)编码产生，可参与细胞代谢，AI- 2也被认为是用于种间通讯的通用信号分子，主要被利用感知群体数量，启动下游基因的表达。

随着对种间群体感应研究的深入，21世纪初，研究者发现细菌群体感应存在“合作- 欺骗”关系，即QS所调控的群体行为不仅表现为菌群协作，还存在部分不参与协作的欺骗行为[29]。群体感应的欺骗现象是相较合作而言的，在共存体系中微生物个体获取其他个体所分泌的公用物质如群体感应信号分子、铁载体、蛋白酶等[30-31]，从而享受群体感应所带来的生长利益，这一现象也被称为群体感应的窃听行为。据报道，埃希氏菌属、克雷伯氏菌属、沙门氏菌属和志贺氏菌等能够产生一种被称为SdiA的LuxR同源物，这些微生物缺乏AHL合成酶而不产生AHL；但SdiA分子可以结合其他微生物产生的AHL并影响不产AHL细菌的转录[32-33]。Case等[34]描述了非AHL产生微生物的窃听行为，它们能够结合并利用其他生物体所产生AHL，通过响应这些信号来调节自身行为。在竞争环境下，种间群体感应能够调控抗生素的合成，参与新抗生物质的产生或提高已有物质的产量，如芽孢杆菌在生存竞争选择压力下会产生大量的细菌素[35]。群体感应调控抗生素合成对种间竞争非常重要，并且允许混杂的信号受体在混合微生物环境中对竞争对手进行窃听。Chandler等[36]构建了双物种共培养模型，表明只要可以产生足够的抗生素来杀死竞争者，窃听就可以促进竞争期间的适应性；如果激活阈值相对较低，窃听也可能是有害的，所以只有在窃听有益的特定情况下，受体才会出现广泛的特异性。因此，窃听行为在种间群体感应调控中的具体作用或是否会存在优势条件均不得而知，该行为容易受复杂的菌群环境、特异性AHL受体的信号传递及野生型菌株的窃听等复杂条件的影响。

1.4 其他群体感应调节系统

除常见的QS调控系统之外，在肠出血性大肠杆菌中还发现了一种由AI- 3 类信号分子介导的QseC/B型QS系统。AI- 3类信号分子与AI- 2完全不同，其由寄主分泌的去甲肾上腺素和应激激素肾上腺素所生成[37]。首先，AI- 3被组氨酸感受器激酶QseC和反应调节器QseB组成的双组分信号识别，与QseC蛋白结合后，QseC蛋白启动自磷酸化，QseB蛋白被激活，从而触发下游信号转导通路，最终激活相关毒力基因的转录过程[38]。随着对QS研究的深入，该型QS系统在志贺氏菌(Shigella)、沙门氏菌(Salmonella)、胡萝卜软腐欧文氏菌(Erwiniacarotovora)、多杀巴斯德氏菌(Pasteurellamultocida)、紫色色杆菌(Chromobacteriumviolaceum)等中也得到了验证，说明此类交流方式不只存在于大肠杆菌。

随着群体感应研究的深入，在野油菜黄单胞菌(X.campestrispv.campestris, Xcc)中发现了一种新型DSF信号分子，其对胞外酶和胞外多糖的产生以及细胞膜的形成具有调控作用[39]。在葱伯克霍尔德菌和铜绿假单胞菌中也检测到了DSF，且DSF可作为信号分子调控细菌的生物行为[40]。此外，DKPs信号分子在铜绿假单胞菌(P.aeruginosa)、异性变形杆菌(Proteusmirabilis)以及腐败希瓦氏菌(Shewanellaputrefaciens)等细菌中均有发现[41]。DKPs具有稳定的六元环结构，是由两个氨基酸缩合而形成的环二肽结构。研究发现，部分二酮哌嗪类化合物对细菌中的信号分子具有竞争作用，能够抑制原本的群体感应系统或者加快LuxR蛋白激活表达而促进QS系统[42]。CAI- 1(cholerae autoinducer-1)型信号分子在哈维氏弧菌(Vibrioharveyi)和霍乱弧菌(Vibriochoierae)中均有发现，其依赖于CqsA合成。CqsA与磷酸吡哆醛结合转氨酶有关，通常催化缩合的氨基酸和羟基硫酯[43]，但目前关于该类信号分子的作用机制和应用却鲜有报道。

2 群体感应与食品腐败

食品的腐败变质不仅会降低食品的食用价值，且在食品腐败变质过程中会产生一些有害物质从而威胁人们的身体健康。因此，食品的腐败变质问题是影响食品质量与安全的最突出问题，每年由此带来的经济及环境污染问题都会给社会带来巨大的损失，而明悉食品的腐败机制，从而针对性地延缓食品腐败显得尤为重要。研究表明，致腐微生物是导致食品腐败的重要因素，而腐败菌中的某些致腐活性能够受到群体感应的调控，且这种系统已经被证明存在于水产品、果蔬制品、畜禽制品以及乳制品等大部分食品体系中。因此了解致腐微生物的群体感应系统能够更好地帮助人们控制食品腐败。

2.1 群体感应对水产品腐败变质的影响

目前，对于水产品腐败变质过程中群体感应作用的研究主要集中于鱼类及虾类中，而对于贝类、藻类等其他水产品的研究相对较少。Flodgaard等[44]研究发现，从真空包装鳕鱼片中分离得到的气单胞菌及发光杆菌均能够产生群体感应信号分子，且相同的信号分子也能够在鳕鱼片提取物中检测得到。Romero等[45]发现，鱼源黄杆菌能够分泌短链的AHLs；黄旭镇等[46]发现，水产品致腐菌嗜水气单胞能够分泌产生C4-HSL,同样荧光假单胞菌的AHLs产量也较高；朱素芹等[47]证明，在凡纳滨对虾中能够检测出AI- 2以及DKPs两种信号分子，且当添加外源AHLs后能够显著提高凡纳滨对虾的腐败进程；张彩丽等[48]发现，从真空包装大菱鲆中分离得到的气单胞菌属及沙雷氏菌属能够分泌产生3种以上的AHLs, 且添加外源AHLs 以及 QSI能够明显干扰其中2株菌的生物被膜形成以及胞外蛋白酶活性。此外，还有众多研究者分析了水产品致腐微生物产生的AHLs对其自身致腐能力的影响。Li等[49]研究发现，大比目鱼的腐败菌为气单胞菌，其能够分泌多种AHLs，其中外源添加的C8-HSL能够调控气单胞菌嗜铁素的产生，且能够与C4-HSL一起使鱼体贮藏过程中的TVB- N值快速上升。虽然实验均证明了信号分子以及群体感应系统能够参与并调控水产品的腐败进程，但总体而言，QS 对水产品腐败的影响还处于起步阶段，其具体的调控机理尚不明晰，因此还需要进一步的研究以探明QS对水产品腐败的调控机制。

2.2 群体感应对畜禽产品腐败变质的影响

畜禽肉制品在我国食品消费中占有重要地位，其产品种类及形式丰富，且畜禽肉制品与水产品相似，同为高蛋白食品，因而导致其腐败变质的因素与水产品相近，同为能够分解蛋白等营养素的致腐菌如气单胞菌、假单胞菌、肠杆菌。研究表明，与水产品情况相同，畜禽肉制品的腐败变质过程也能够受到群体感应系统的调控。目前，已经在贮藏中的牛肉、鸡肉以及猪肉等畜禽制品中检测到了具有活性的AHLs。Bruhn等[50]从真空密封的猪肉中分离得到了蜂房哈夫尼亚菌，并证明它所分泌的3-oxo-C6-HSL类信号分子能够通过QS系统来调节环境中的其他腐败菌的代谢，从而促进猪肉的腐败；Nychas等[51]从腐败的肉制品中检测到了大量的AHLs类信号分子，并发现信号分子的加入能够提高肉中致腐菌黏质沙雷氏菌的生长曲线，从而有利于其成为体系中的优势腐败菌；Gram等[52]证明，当肉制品中的肠杆菌达到一定的密度后，其分泌的AHLs便可以调控自身酶系统，从而使其在相对较低的菌密度下依然能够影响肉制品的品质。研究表明，在新鲜冷却猪肉中依然能够检测出AHLs类信号分子，且腐败菌中已经存在部分群体感应现象。除了AHLs外，还分别在气调包装以及常规包装的牛肉、火鸡肉中检测出了AI- 2型信号分子，这表明多种类型的群体感应系统普遍存在于畜禽肉制品中。因此，检测不同肉制品中存在的群体感应系统及信号分子并探究其对肉制品腐败变质的影响，能够成为未来研究的重要方向。

2.3 群体感应对乳制品腐败变质的影响

乳制品是人们重要的蛋白质摄入来源，同时也是微生物天然的培养基。液态乳制品极易在加工及贮藏过程中受到微生物的污染，从而导致乳制品腐败，货架期减低，并严重危害消费者的身体健康。与其他食品相比，乳制品的贮藏及运输往往在低温环境中进行，因此其腐败菌多为耐冷菌，如荧光假单胞菌等。耐冷菌所分泌的蛋白酶及脂酶具有良好的热稳定性，这使其在经过巴氏灭菌后依然能够对乳制品造成不利影响。Whan等[53]从冷藏牛奶中分离得到了荧光假单胞菌，且证明其所分泌的C4-HSL及3-oxo-C8-HSL能够通过群体感应系统调控自身蛋白酶的活性，从而对牛奶品质造成影响。食品的货架期取决于食品体系中腐败菌的生长速率以及延滞期。Dunstall等[54]证明，荧光假单胞菌所分泌的信号分子能有效缩短自身培养过程中的延滞期，且能够提高自身的生长速率，从而导致乳制品腐败速率加快；此外，研究表明，除了一些嗜冷菌外，沙雷氏菌也能够通过群体感应系统来调节乳制品的腐败。Christensen等[55]研究发现，AHLs合成酶基因缺失的沙雷氏菌对鲜牛乳的致腐能力相较于野生株大大减弱，而当添加外源信号分子后其致腐能力便得以恢复。但Martins[56]也指出，某些荧光假单胞蛋白酶的活性不受AHLs的调控，且在牛奶中也存在能够抑制QS系统的活性成分。

2.4 群体感应对果蔬腐败变质的影响

果蔬及其制品是我国居民最重要的维生素摄入来源，但果蔬制品在采后容易发生组织衰老、机械损伤以及病原菌的侵染等问题，这使得果蔬制品相较于肉制品而言更容易发生腐败现象。每年约有20%～40%的新鲜果蔬因采后品质劣变而失去商品价值，直接经济损失超过1 000亿元。研究表明，微生物在代谢过程中所分泌的果胶酶、纤维素酶等是造成果蔬组织发生软化以及腐败的重要原因之一,而与蛋白酶相似，微生物果胶酶的分泌同样能够受到群体感应系统的调控。Kwak等[57]研究发现,常见蔬菜致腐菌变形斑沙雷氏菌的脂肪酶及蛋白酶分泌能够受到群体感应系统的调控；Rasch等[58]的实验也表明AHLs类信号分子所介导的群体感应系统能够参与并调控豆芽的软腐过程中主要腐败菌，如肠杆菌、假单胞菌和弧菌等的果胶酶的分泌；此外，研究者在胡萝卜、番茄、南瓜、辣椒等蔬菜的提取物中均能够检测出具有活性的AI- 2类信号分子，但AI- 2所介导的群体感应系统是否如AHLs- QS系统一样直接参与了果蔬的腐败调控仍有待研究。

3 群体感应在食品工业中的应用

随着生物技术的不断发展，在食品生产中具有悠久历史的微生物在现代食品工业中正发挥着越来越重要的作用。由于群体感应系统对于微生物广泛而高效的调控作用，使其在现代食品工业中展现出强大的应用潜力。

3.1 利用群体感应淬灭的腐败微生物防控

以微生物繁殖代谢为主要诱因的高蛋白食品腐败以及果蔬产品病害对食品的流通及销售造成了巨大的障碍，并阻碍了相关产业的进一步发展，因此对于食品体系中有害微生物的防控一直是相关研究的重点。通过干预特定微生物的QS系统，阻碍微生物之间的“信息交流”，降低危害因子的表达水平，这种现象被称为群体感应淬灭(quorum quenching, QQ)[59]。具有群体感应淬灭作用的活性物质则被统称为群体感应抑制剂(quorum sensing inhibitor, QSI)。QQ主要通过三种途径起作用，分别为抑制 AHLs 信号分子的形成，阻止AHLs信号分子的扩散，利用 AHLs 类似物竞争结合受体蛋白。与传统的以抑制和杀灭微生物为主要目的的防控手段相比，QQ不会造成微生物的生长压力，也不会诱发微生物耐药性的产生。因此，以QQ为基础的QSI的研究与开发逐渐受到了广大研究人员的关注，并成为一种控制有害微生物的新策略。

3.1.1抑制AHLs的合成

在典型的LuxI/R群体感应系统中，AHLs的合成不仅需要LuxI家族合成酶，还需要酰基载体蛋白(ACP)和S-腺苷甲硫氨酸(SAM)底物的共同作用， 其中烯酰基-ACP还原酶Fabl和酰基载体蛋白(ACP)酶在这一过程中发挥着重要作用。Dong等[60]研究发现，三氯生(triclosan)能够有效降低Fabl酶的活性，从而阻止酰基-ACP被还原，并最终起到抑制AHLs信号分子合成的作用；Morohoshi等[61]研究发现，人工合成的N-九酰环戊胺(C9-CPA)对黏质沙雷氏菌(Serratianarcescens)中QS介导的毒力基因表达具有显著的抑制作用；另外研究发现，人参提取物能够有效抑制铜绿假单胞菌中AHLs的合成，并以此抑制LasA、LasB蛋白酶的产生[62]；同样，假单胞菌JM2的无细胞上清液也对铜绿假单胞菌的绿脓素以及上述两种蛋白酶的产生展现出较强的抑制作用[63]；除此之外，红霉素、阿司匹林和姜黄酮等物质均已被证明具有抑制AHLs合成的作用[64]。

3.1.2抑制AHLs的扩散

阻止AHLs的扩散主要通过降解AHLs实现，从而使其胞外浓度达不到发生调控作用的阈值，以此阻碍AHLs与受体蛋白的结合，并起到群体感应淬灭的效果，这被认为是最直接也是最高效的一种群体淬灭方法。AHLs的降解主要分为化学降解和生物降解两大类，其中化学降解是利用某些合成化合物对AHLs进行体外降解，如氧化卤素(HClO)、2-庚基-3-羟基-4-喹诺酮(PQS)等；而生物降解则是利用微生物自身分泌的某些具有降解AHLs活性的酰化酶或内酯酶对AHLs进行水解。Michels等[65]的研究表明，HClO能够与3-oxo-HSL发生卤代反应产生2, 2-二卤代-3-氧-AHL，并在pH值为8时进一步水解为2, 2-二卤代-N-乙酰基-L-高丝氨和脂肪酸，从而实现对3-oxo-HSL的降解，且反应效率较高，仅1 min便能实现约75%的有效降解。研究发现，某些微生物如肺炎克雷伯氏菌(Klebsiellapneumoniae)、根癌农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens)、芽孢杆菌(Bacillussp.)和铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa)等能够分泌具有降解AHLs能力的酰基转移酶以及内脂酶。如芽孢杆菌所分泌的AiiA内脂酶能够有效降解N-酰基高丝氨酸内酯环中的内酯键，形成相应的N-酰高丝氨酸并使AHLs丧失活性。Yang等[66]研究发现，对氧磷酶(paraoxonase, PON)及其同工酶PON1、PON2及PON3同样能够促使长链AHLs的高丝氨酸内酯环开环，从而使酰基侧链和高丝氨酸内酯环分离，并最终导致AHLs活性发生钝化。此外，链霉菌(Streptomycessp.)及假单胞菌(Pseudomonassp.)中的β-内酰胺酰基酶类同样能够水解长链AHLs的酰胺键。

3.1.3利用AHLs类似物竞争结合受体蛋白

AHLs主要由高丝氨酸内酯环以及酰基侧链组成，而自然界中具有相似结构的化合物众多。研究表明，这种结构类似物能够竞争性地与AHLs的特异性受体蛋白的活性位点进行结合，从而阻断微生物的QS作用通路，以此降低其调控的生物性状的表达。这种具有间接抑制微生物群体感应能力的AHLs 类似物被称为群体感应拮抗剂。这类物质最早发现于海洋红藻(Deliseapulchra)中，其提取物中的卤化呋喃酮(halogenated furanones)能够竞争性地与叶表沙雷氏菌(Serratiasp.)中的LuxR型AHLs受体蛋白进行结合，从而阻断其QS系统，导致其不能在叶片表面形成生物被膜[67]。研究发现，AHLs结构类似物N-癸酰基-L-高丝氨酸卞酯能够显著抑制铜绿假单胞菌中群体感应相关基因lasR、lasI、rhlR和rhlI的表达，并以此降低铜绿假单胞菌的抗生素抗性；此外，大黄素、香芹酚等AHLs结构类似物均被证明能够抑制假单胞菌的群体感应现象；笔者研究团队通过计算机辅助的分子筛选技术从天然化合物中筛选得到了众多具有群体感应活性的化合物，如肉桂醛、香芹酚等，并证明了其在食品保鲜中的应用潜力[68]。

3.2 群体感应在生物合成方面的应用

生物合成作为21世纪最具发展潜力的一种生物技术，能够有效地解决目的产物大量生产所带来的环境污染以及经济成本问题。生物合成在未来食品原辅料生产中同样扮演着至关重要的作用，但研究表明，对生物反应器的过度改造会给天然细胞带来严重的代谢负担。此外，工程途径会与天然代谢竞争碳通量、ATP和氧化还原辅助因子，并可能导致有毒化合物的积累，最终导致抑制微生物的生长，从而限制了产品的效价；同时，计算机模拟预测的许多具有最佳生产效率的基因缺失或过表达策略在体内是不可行的，因为它们同样会对细胞生长或存活造成限制。目前研究者普遍采用在工程途径中引入诱导表达系统，以期将工程菌的生长阶段与生产阶段进行分离，但这种表达策略依然不能实现对代谢过程的动态调控。此外，许多诱导剂昂贵的价格也降低了其在工业生产中的可行性。群体感应系统能够大规模且高效地调控目的基因的表达，且具有明显的自诱导特点，使其成为解决上述问题的理想工具。目前，研究者已经在这方面进行了积极的尝试，如Williams等[69]通过在目的基因前串联受群体感应调控的PFUS1J2启动子，实现了对酿酒酵母中代谢途径的动态调节，并以此提高了莽草酸途径中对羟基苯甲酸的产量；Zou等[70]通过将群体感应启动子与工程菌中的裂解基因相连，并将改造后的工程菌封装入微胶囊内，以此构成能够根据菌密度进行自行裂解并释放目的蛋白的生物合成体系。同样，Anand等[71]将QS系统应用于胞外酶的产生，从而使细胞只有在高密度时才能产生胞外酶。由此可见，群体感应系统的引入确实在生物合成发酵领域具有广阔前景。

4 展 望

群体感应作为微生物研究中的一个新兴研究领域，直到20世纪90年代才逐渐受到关注，目前许多相关研究仍不完善，而食品领域对于群体感应的研究又相对较晚，虽然前人已经做出了大量卓有成效的工作，但群体感应对于多数食品腐败的相关调节机制尚不明晰。由此可见，未来群体感应在食品领域的研究既充满机遇，又极具挑战。笔者认为，为了更好地适应这种发展，今后对于食品领域群体感应的研究应主要集中在以下方面。

1) 鉴于目前群体感应相关调控机制的不完整性，应借助分子生物学手段进一步完善相关研究；

2) 鉴于食品腐败体系的复杂性，应着重加强菌间群体感应的相关研究；

3) 鉴于目前信息群体感应抑制剂筛选的低效性，应着重建立新型高效的群体感应抑制剂筛选技术；

4) 鉴于群体感应系统在合成生物学上的广阔前景，应着重研究发掘多元的群体感应调控组件，实现对目的基因的严谨调控，以适应实际生产中工程菌的多样性。

尽管目前对于群体感应的研究尚存在诸多不足，但随着分子生物学、合成生物学以及组学等技术的不断成熟，未来对于群体感应的研究必将进入一个崭新的阶段，而这也必将对我国食品行业的发展作出新的贡献。