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MiR-145-5p对胶原诱导的关节炎小鼠关节炎症的影响

2019-05-05明建松王晓雪杨梦晨袁玉华

天津医科大学学报 2019年2期
关键词:胶原滑膜免疫组化

明建松 ,王晓雪 ,杨梦晨 ,汤 可 ,袁玉华

(1.天津医科大学总医院检验科,天津300052;2.天津港口医院检验科,天津300456)

类风湿关节炎(rheumatoid arthritis,RA)是一种常见的慢性并累及多个关节的自身免疫性疾病,它的发病机理是一种涉及到多种细胞、细胞因子和免疫活性物质的复杂过程,其发病机制尚不完全清楚。近几年发现microRNA参与免疫应答反应,可能在RA的疾病进展中发挥重要作用。前期实验发现,miR-145-5p在RA中与对照组骨关节炎(OA)滑膜组织和滑膜细胞相比,在RA外周血单个核细胞(PBMC)、滑膜组织和成纤维细胞样滑膜细胞(FLS)中miR-145-5p水平显著增加[1]。通过调节ADAM17的表达,miR-145-5p调节RA-FLS的增殖、细胞周期进程和炎性细胞因子的表达;通过下调Ets-1,miR-145-5p模拟上调IL-17水平和基质金属蛋白酶MMP-3,MMP-9和MMP-13的表达。现结合胶原诱导的关节炎CIA小鼠模型,增强miR-145-5p表达,观察CIA小鼠关节变化情况,分析miR-145-5p在CIA中的作用。

1 材料和方法

1.1 材料 DBA/1小鼠36只,雄性,8周龄左右,SPF(Specefic Pathogen Free,无特定病原体)级,体质量(20±2)g,由北京华阜康公司提供,标准饲料喂养,自由饮水、饮食,适应性饲养7 d,进行实验。动物于天津医科大学总医院饲养。本研究经天津医科大学动物护理与使用委员会批准。

1.2 试剂 牛Ⅱ型胶原(液)及弗氏完全佐剂购于美国chondrex公司,agomiR-145-5p购于中国广东Ribobio公司,小鼠麻醉剂水合氯醛购于美国sigma公司。将冻干的牛II型胶原蛋白在4℃下在0.05 mol/L乙酸中过夜溶解,在弗氏完全佐剂中乳化至最终浓度为2 mg/mL。

1.3 CIA小鼠模型建立 取36只8周龄,雄性DBA/1小鼠,适应性饲养2~3 d之后,随机分组选出10只小鼠作为miRNA阴性对照(miR-NC)组,其余作为模型构建组,进行初次免疫。按照每只100 μL牛Ⅱ型胶原进行根部皮下注射,注射部位为距尾根部2 cm至0.5 cm区间,miR-NC组按同样方法注射等体积的生理盐水。初次免疫21 d后,进行加强免疫,模型构建组每只小鼠腹腔注射100 μL牛Ⅱ型胶原,miR-NC组同样方法注射等体积生理盐水。

1.4 成模小鼠免疫及分组给药 加强免疫后,每天观察记录小鼠精神状态及关节肿胀情况,筛选出发病时间相近的关节炎指数大于4分的发病小鼠20只,随机分为agomiR-145-5p组及agomiR空载体(agomiR-NC)组,每组10只,在初次免疫后第30天将等体积的agomiR-145-5p和agomiR-NC进行鼠尾静脉注射,之后每隔3 d注射1次,共进行3周。

1.5 关节评分观察及CIA小鼠足跖肿胀程度比较 加强免疫后,隔天观察诱导小鼠关节肿胀情况;于小鼠分组治疗后,每天进行关节炎评分,记录关节炎指数(AI),相加得总评分[2]。

1.6 micro-CT扫描 小鼠膝关节和踝关节在固定后进行micro-CT扫描重建。

1.7 病理分析及免疫组化检测 用10%水合氯醛(0.04 mL/10 g)麻醉小鼠后,处死所有小鼠。取小鼠踝关节进行固定、脱水、透明,并用石蜡包埋切片,进行HE染色,镜下观察小鼠关节病变情况。通过对小鼠踝关节组织切片进行免疫组化染色,检测MMP-1、MMP-3、MMP-9、MMP-13、IL-17和 ADAM17 的表达。

1.8 统计学分析 采用SPSS19.0软件进行统计学分析,计量资料采用±s表示,采用配对样本t检验进行分析。P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 模型建立及关节炎评分指数变化情况 对DBA/1建模,约85%小鼠成功建立CIA模型,足部出现关节炎症状。对小鼠四肢进行评分记和。与agomiR-NC组比较,agomiR-145-5p组的小鼠在给药后第4天关节炎评分指数开始相对下降(P<0.05)(图 1)。

2.2 小鼠足部变化 miR-NC组小鼠足部呈正常粉红色,足掌、踝、掌指及指关节均无肿胀。发病小鼠足掌增厚、多关节红肿,行走不便,急性期受累足不能负重。胶原诱导成功小鼠足厚度、足体积较miR-NC组小鼠高。agomiR-145-5p治疗后部分减轻了小鼠足部的肿胀和发红(图2)。

图1 CIA小鼠的关节炎评分Fig 1 Arthritis scores for CIA mice

图2 注射前后CIA小鼠的后爪Fig 2 Hind paws of CIA mice before and after injection

2.3 HE染色观察miR-145-5p对CIA小鼠关节软骨损伤的治疗效果 HE染色结果如图3所示,与miR-NC组比较,agomiR-145-5p组小鼠膝关节滑膜组织明显增生肥厚,滑膜周围结缔组织中有大量淋巴细胞和少量中性粒细胞浸润,有丰富的血管翳形成,关节软骨及软骨下骨侵蚀破坏严重。与agomiR-NC组比较,agomiR-145-5p组滑膜增生显著降低,骨破坏显著增强(P<0.05)(图 4)。

图3 来自CIA小鼠后爪切片的HE染色Fig 3 Hematoxylin and eosin staining of sections from the hind paws of CIA mice

图4 CIA小鼠的组织病理学评分Fig 4 Histopathological scores of CIA mice

2.4 micro-CT扫描评价miR-145-5p治疗对CIA小鼠关节损伤的影响 与miR-NC组比较,agomiR-145-5p组与agomiR-NC组都表现出踝关节的骨侵蚀;与agomiR-NC组相比较,agomiR-145-5p组骨侵蚀更严重(图5)。

图5 骨破坏的比较Fig 5 Comparison of bone destruction

2.5 免疫组化检测 与agomiR-NC组相比较,agomiR-145-5p组小鼠的后踝中MMP-3,MMP-9,MMP-13和IL-17蛋白水平增加,MMP-1水平没有差异,ADAM17蛋白减少(图6)。

图6 CIA小鼠的MMP-1,MMP-3,MMP-9,MMP-13,IL-17和ADAM17的免疫组化检测Fig 6 Immunohistochemistry (IHC)and quantification of MMP-1,MMP-3,MMP-9,MMP-13,IL-17,and ADAM17in CIA mice

3 讨论

为进一步明确miR-145-5p在RA关节软骨损伤中的作用,本实验选用造模成功率高的DBA/1小鼠,通过II型胶原和完全弗氏佐剂混合尾根部皮下注射的方法制备CIA小鼠模型,初次免疫后4周,小鼠出现足爪红肿、活动受限等RA相关症状,由此可见本实验所建立的CIA模型是成功的。通过关节评分、micro-CT分析、病理分析及免疫组化检测等相关实验发现miR-145-5p加重关节破坏的同时部分抑制了CIA小鼠的关节炎症,同时发现与agomiR-NC组相比较,agomiR-145-5p组小鼠的后踝中 MMP-3,MMP-9,MMP-13 和 IL-17 蛋白水平升高,MMP-1水平没有差异,ADAM17蛋白水平降低。

ADAM17是一种TNF-转换酶,被鉴定为切割TNF-α前结构域的酶,并且被认为是在炎症反应期间负责释放TNF-α的主要蛋白酶[3]。另外,据报道ADAM17通过激活EGFR/PI3K/AKT途径促进神经胶质瘤细胞的增殖和侵袭[4]。本实验相关实验的结果证实ADAM17促进FLS增殖并且还表明ADAM17减少RA-FLS中的TNF-α产生。此外,敲减ADAM17减少TNF-α产生并增加miR-145-5p以及IL-17和MMPs的表达,这可能表现为miR-145/ADAM17/TNF-α的反馈环。据报道,FLT1,TLR4,TGFB2和APRIL分别与炎症反应有关,涉及RA中的细胞增殖、细胞周期、炎性细胞浸润和血管生成[5-8]。今后需要进一步研究miR-145-5p是否可以 直 接 降 低 ADAM17,FLT1,TLR4,TGFB2 和APRIL的表达,从而抑制炎症反应。

IL-17主要由Th17细胞释放,Th17细胞是一种特殊类型的人类辅助性T细胞[9]。这种细胞因子在炎症和包括RA在内的自身免疫性疾病的发展中起着至关重要的作用[10]。研究表明,IL-17诱导RA中MMP-3,MMP-9和MMP-13的产生[11-12]。众所周知,RA患者的骨和软骨破坏部分由MMP活化的滑膜细胞和软骨细胞构成[13]。此外,Ets-1被报道为Th17分化的负调节因子。miR-145过表达导致RA-FLS中IL-17,MMP-3,MMP-9 和 MMP-13 水平升高与Ets-1水平降低的相关性,以及RA-FLS中Ets-1调节IL-17的机制仍需进一步深入研究。

即使CIA小鼠模型中关节炎症被部分抑制,施用miR-145-5p也会加重骨破坏,说明miR-145-5p可能调节多种信号通路,例如miR-146a和miR-155与炎症反应和RA疾病呈正相关,但在关节破坏中起负面作用[14-15]。这项研究证实了RA中miR-145-5p介导的基因调节的复杂性,为后续研究提供了参考。

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