表皮生长因子协同体预处理对大鼠脑缺血再灌注的保护作用
2019-03-18渠静许娜奥婷张君张芹肖淑英张瑞华
渠静 许娜 奥婷 张君 张芹 肖淑英 张瑞华
[摘要] 目的 探讨表皮生长因子协同体(EGF-c)预处理对大鼠脑缺血再灌注(IR)的保护作用及其相关机制。 方法 将30只雄性SD大鼠按随机数字表法分为假手术组(sham组)、缺血再灌注组(IR組)及EGF-c预处理+IR组(EGF-c组)。采用线栓法制作大鼠大脑中动脉栓塞模型(MCAO)。术后24 h,应用2%氯代三苯基四氮唑(TTC)染色法检测脑梗死体积,酶联免疫吸附测定(ELISA)法检测脑组织超氧化物歧化酶(SOD)活性和丙二醛(MDA)含量,蛋白免疫印迹法(Western blot)检测高迁移率族蛋白1(HMGB1)的表达。 结果 与sham组比较,IR组脑梗死体积增大(P < 0.01),SOD活性降低(P < 0.01),MDA和HMGB1的含量增加(P < 0.01)。与IR组比较,EGF-c组脑梗死体积减小(P < 0.05),SOD活性上升(P < 0.01),MDA含量下降(P < 0.01),HMGB1的表达量下降(P < 0.05)。 结论 EGF-c预处理可能通过改善脑组织SOD活性、降低MDA含量、下调HMGB1的表达从而对大鼠IR起到保护作用。
[关键词] 表皮生长因子协同体;脑缺血再灌注;超氧化物歧化酶;丙二醛;高迁移率族蛋白1
[中图分类号] R743.31 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2019)01(b)-0008-05
[Abstract] Objective To study the effect of epidermal growth factor-coordination (EGF-c) on cerebral ischemia reperfusion (IR) in rats as well as its mechanism. Methods Thirty male SD rats were divided into sham group, ischemia reperfusion group (IR group), EGF-c pretreatment and IR group (EGF-c group) by random number table method. The middle cerebral artery occlusion (MCAO) model of rats was made by suture method. 24 hours after operation, the cerebral infarction volume was detected by 2% triphenyl tetrazolium chloride (TTC) staining, the activity of superoxide dismutase (SOD) and the content of malondialdehyde (MDA) in brain tissue were measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), the expression of high mobility group protein 1 (HMGB1) was examined by Western blot. Results Compared with sham group, the infarction volume was increased (P < 0.01), the SOD activity was decreased (P < 0.01), the contents of MDA and HMGB1 were increased in IR group (P < 0.01). Compared with IR group, the infarction volume was decreased (P < 0.05), SOD activity was increased (P < 0.01), the content of MDA was decreased (P < 0.01), the expression of HMGB1 was decreased in EGF-c group (P < 0.05). Conclusion EGF-c pretreatment may play a protective effect on IR of rats by improving the SOD activity, decreasing the content of MDA and the expression of HMGB1.
[Key words] Epidermal growth factor-coordination; Cerebral ischemia reperfusion; Superoxide dismutase; Malondialdehyde; High mobility group protein 1
缺血性脑卒中呈现发病率高、致残率高和病死率高的特点,给社会和家庭带来了沉重的负担。近年来大量研究表明,自由基和炎性反应在缺血性脑卒中的病理过程中发挥重要的作用[1-4]。缺血性脑卒中的大鼠超氧化物歧化酶(SOD)活性降低,丙二醛(MDA)和高迁移率族蛋白1(HMGB1)的表达升高[5-7]。目前,缺血性脑卒中的二级预防主要包括抗血小板和控制血压、血糖等危险因素,但此病的临床结局仍不理想[8-9]。因此,探索其他切实可行的干预措施是当前亟待解决的问题。表皮生长因子(EGF)是由53个氨基酸残基组成的小肽,可调节细胞生长、增殖和分化,近年来研究发现EGF在脑梗死后脑保护方面发挥积极作用[10-11]。肝素结合表皮生长因子是EGF家族成员,它可以减少MCAO大鼠的脑梗死体积,减少氧自由基以及氧化物的产生[12-14]。但EGF活性只能保持1周,从而为EGF的临床转化带来了困难。表皮生长因子协同体(EGF-c)是由毛叶绞股蓝萃取物与EGF融合而成,使EGF的活性保持时间显著延长,解决了EGF活性保持时间短这一难题[15]。EGF-c与EGF具有相同的生物学功能,因此本研究用EGF-c代替EGF,探讨其是否对大鼠IR有保护作用,并研究其机制。
1 材料与方法
1.1 实验动物
30只雄性SD大鼠,290~310 g,购自北京维通利华实验技术有限公司[SCXK(京)2009-003]。
1.2 仪器与试剂
倒置显微镜(Nikon公司,型号:ECLIPSE TS100);台式低温离心机(Sigma公司,型号:3K15);手术显微镜(Leica公司,型号:M525);激光多普勒仪(Perimed公司,型号:PeriFlux 5000);全自动酶标仪(美国Biotek公司,型号:ELx808)。
2%氯代三苯基四氮唑(TTC)染色液(北京索莱宝生物科技有限公司,批号:G3005);大鼠SOD和MDA的酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(上海酶联生物科技有限公司,批号:m1540172、m1548189);HMGB1兔单克隆抗体(美国abcam公司,批号:ab79823);β-actin鼠单克隆抗体(北京冠星宇科技有限公司,批号:G1001);二抗(北京索莱宝生物科技有限公司;批号:SE131、SE134)。
1.3 动物分组和模型的建立
将大鼠按随机数字表法分为三组:假手术组(sham组)、缺血再灌注组(IR组)和EGF-c预处理+IR组(EGF-c组)。EGF-c组于脑IR前连续每日腹腔注射EGF-c 20 μg/kg,共5 d。IR组和EGF-c组采用Zea-Longa法制备MCAO模型。手术过程如下:大鼠麻醉后仰卧位固定,行颈正中切口,分离肌肉及筋膜,暴露右侧颈总、颈外和颈内动脉。暂时夹闭颈内动脉,近心端结扎颈总和颈外动脉。在距颈总动脉分叉部4 mm处剪一小口,将栓线插到颈内动脉,当插入深度为18 mm时,系牢颈总动脉远心端的细线,缝合伤口。缺血2 h后将栓线拔出实现再灌注。造模成功标准[16]:术后12 h以Longa神经学评分在1~4分为造模成功。本研究通过首都医科大学附属北京潞河医院医学伦理委员会批准。
1.4 脑梗死体积的测定
IR 24 h后,麻醉大鼠,取脑组织并将其切成6个冠状切片,置于TTC溶液中染色,随后用4%多聚甲醛固定,用ImageJ 1.42软件加以分析。大脑梗死体积百分比由以下公式计算:梗死体积比=梗死体积/总体积×100%。
1.5 脑血流监测
大鼠麻醉后俯卧位固定,沿着头皮正中切开,用H2O2去除骨膜及颅骨表面的脂类,暴露前囟和颅骨。在前囟后2 mm、右侧旁开5 mm处,用颅骨钻将颅骨磨薄(不能钻透)。用激光多普勒仪监测血流。
1.6 SOD活性和MDA含量的测定
IR 24 h后,将大鼠麻醉后用生理盐水进行灌注,取其缺血侧脑组织,匀浆提取蛋白。根据实验说明书进行操作,酶联免疫吸附测定(ELISA)法检测SOD活性和MDA含量,每个样本设3个复孔。
1.7 HMGB1蛋白的测定
取大鼠缺血侧脑组织匀浆提取蛋白,BCA法进行蛋白定量,每孔加入10 μg蛋白样品进行SDS-PAGE电泳,将电泳物转置硝酸纤维膜上,脱脂奶粉室温封闭1 h,洗膜后进行一抗(抗HMGB1抗体1∶10 000;抗β-actin抗体1∶2000)于4℃过夜孵育,随后二抗(1∶10 000)于室温孵育1 h,自动曝光,使用ImageJ 1.42软件进行分析,结果以各目的蛋白与β-actin的灰度比值表示。
1.8 统计学方法
采用SPSS 18.0软件处理数据,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,两两比较采用LSD-t检验。以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 各组脑梗死体积的比较
与sham组比较,IR组脑梗死体积增大(P < 0.01);与IR组比较,EGF-c组脑梗死体积减小(P < 0.05)。
2.2 各组脑血流的比较
IR组与EGF-c组大鼠脑血流较sham组大,EGF-c组脑血流较IR组小,提示EGF-c预处理可以改善大鼠IR后的脑血流。
2.3 各组SOD活性以及MDA含量的比较
与sham组比较,IR组SOD活性显著降低,MDA含量显著升高(P < 0.01);与IR组比较,EGF-c组SOD活性显著升高,MDA含量显著降低(P < 0.01)。
2.4 各组HMGB1含量的比较
与sham组比较,IR组HMGB1含量显著升高(P < 0.01);与IR组比较,EGF-c组HMGB1含量降低(P < 0.05)。
3 讨论
研究表明,自由基在IR损伤的病理过程中发挥重要的作用。正常体内自由基生成与清除呈动态平衡,IR时生成大量的自由基,使脑内脂质过氧化作用加强,导致神经元坏死,加重脑组织水肿[17]。针对这一病理机制,寻找有效的自由基清除剂,阻止神经细胞毒性物质对神经元的损害,是实施脑保护治疗、改善IR预后的重要措施之一。本研究显示EGF-c预处理可以减少脑梗死體积,升高SOD活性,降低MDA含量,下调HMGB1的表达,从而对大鼠IR发挥保护作用。
IR损伤的机制较多,其中炎性反应是重要因素[18]。在炎性反应晚期,肿瘤坏死因子-α等细胞因子可促进HMGB1的释放,加重脑组织损伤[19]。研究发现,IR患者血浆中HMGB1表达明显高于正常人群,HMGB1的升高参与并扩大了炎性反应[19-25]。在自闭症儿童的血清中,EGF含量降低,HMGB1含量升高,二者呈负相关[26-29]。本研究发现IR组HMGB1的表达明显高于sham组,EGF-c组HMGB1的表达明显低于IR组,提示HMGB1参与了IR的过程,并且EGF-c可能通过降低HMGB1的释放从而减少IR后的损伤。
SOD是细胞内主要的自由基清除剂,能清除氧自由基从而抵抗其对细胞造成的损伤。MDA是细胞膜脂质氧化后的产物之一,其含量间接反映自由基含量及脂质过氧化程度。有研究表明,肝素结合表皮生长因子可以减少氧自由基及氧化物的产生[12-13]。本研究发现EGF-c预处理后SOD活性升高,MDA含量降低,提示EGF-c可能通过提高抗氧化酶活性,降低氧化应激产物,从而减少IR后的损伤。
综上所述,EGF-c能减轻脂质过氧化反应,提高SOD活性,降低MDA和HMGB1含量,对IR损伤具有明显的保护作用,在临床转化方面具有一定潜力。
[参考文献]
[1] 赵培,朱金墙,梁钰彬.肿瘤坏死因子-α在脑缺血再灌注炎症损伤中的作用[J].中国老年学杂志,2017,37(14):3628-3630.
[2] 段启瑞,邱颐,王彩霞.炎症因子与缺血再灌注损伤研究进展[J].内蒙古医科大学学报,2016,38(2):181-184.
[3] Sun MS,Jin H,Sun X,et al. Free radical damage in ischemia-reperfusion injury:an obstacle in acute ischemic stroke after revascularization Therapy [J]. Oxid Med Cell Longev,2018,2018:3804979.
[4] Martin A,Domercq M,Matute C. Inflammation in stroke:the role of cholinergic,purinergic and glutamatergic signaling [J]. Ther Adv Neurol Disord,2018,11:1276995835.
[5] 王富明,张亚敏,孙华,等.针刺对大鼠脑缺血再灌注损伤后不同时间点血清SOD和MDA表达的影响[J].针灸临床杂志,2015,31(2):62-65.
[6] 闫艳玲.抑制HMGB1表达对大鼠脑缺血/再灌注损伤后凋亡相关蛋白Bcl-2、Bax表达的影响[D].太原:山西医科大学,2017.
[7] Tsukagawa T,Katsumata R,Fujita M,et al. Elevated serum high-mobility group box-1 protein level is associated with poor functional outcome in ischemic stroke [J]. J Stroke Cerebrovasc Dis,2017,26(10):2404-2411.
[8] 汤建军.缺血性脑卒中治疗的研究进展[J].世界临床药物,2017,38(10):660-663.
[9] 孟文婷,李东翔,佟玲.缺血性脑卒中的治疗研究进展[J].中国新药杂志,2016,25(10):1114-1120.
[10] 沈顺姬,杨净,李婧,等.大鼠局灶性脑缺血损伤中表皮生长因子的表达变化的意义[J].中国临床康复,2003,7(31):4180-4181.
[11] Wang Y,Pennock S,Chen X,et al. Endosomal signaling of epidermal growth factor receptor stimulates signal transduction pathways leading to cell survival [J]. Mol Cell Biol,2002,22(20):7279-7290.
[12] Kuhn MA,Xia G,Mehta VB,et al. Heparin-binding EGF-like growth factor(HB-EGF)decreases oxygen free radical production in vitro and in vivo[J]. Antioxid Redox Signal,2002,4(4):639-646.
[13] Xia G,Lara-Marquez M,Luquette MH,et al. Heparin-binding EGF-like growth factor decreases inducible nitric oxide synthase and nitric oxide production after intestinal ischemia/reperfusion injury [J]. Antioxid Redox Signal,2001,3(5):919-930.
[14] Jin K,Sun Y,Xie L,et al. Post-ischemic administration of heparin-binding epidermal growth factor-like growth factor(HB-EGF)reduces infarct size and modifies neurogenesis after focal cerebral ischemia in the rat [J]. J Cereb Blood Flow Metab,2004,24(4):399-408.
[15] 馮耀宗.能长期保持表皮细胞生长因子EGF活性的EGF协同共生体及其制备方法[P].2013-09-25.
[16] Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats [J]. Stroke,1989,20(1):84-91.
[17] 董梦珍,邓云,刘飞,等.脑缺血再灌注损伤机制的研究进展[J].基层医学论坛,2018,22(14):1981-1982.
[18] 刘秀平,许栋明,王文,等.炎症反应影响脑缺血再灌注损伤的研究进展[J].中国康复理论与实践,2009,15(11):1041-1043.
[19] Rath D,Geisler T,Gawaz M,et al. HMGB1 expression level in circulating platelets is not significantly associated with outcomes in symptomatic coronary artery disease [J]. Cell Physiol Biochem,2017,43(4):1627-1633.
[20] 姚恒臣.HMGB1對大鼠心肌缺血再灌注损伤的作用及信号传导通路[D].济南:山东大学,2015.
[21] 杨利娇,王虹,王文丰,等.高迁移率族蛋白B1与缺血再灌注损伤的研究新进展[J].中华老年心脑血管病杂志,2017,19(7):772-774.
[22] Shekhar S,Cunningham MW,Pabbidi MR,et al. Targeting vascular inflammation in ischemic stroke:recent developments on novel immunomodulatory approaches [J]. Eur J Pharmacol,2018,833:531-544.
[23] Singh V,Roth S,Veltkamp R,et al. HMGB1 as a key mediator of immune mechanisms in ischemic stroke [J]. Antioxid Redox Signal,2016,24(12):635-651.
[24] Tian X,Liu C,Shu Z,et al. Review:therapeutic targeting of HMGB1 in stroke [J]. Curr Drug Deliv,2017,14(6):785-790.
[25] Choi JY,Cui Y,Chowdhury ST,et al. High-mobility group box-1 as an autocrine trophic factor in white matter stroke [J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2017,114(25):E4987-E4995.
[26] 姚期,余资江,孙宝飞,等.松树皮提取物对小鼠脑缺血再灌注损伤的保护作用及机制研究[J].中国实验动物学报,2017,25(6):632-636.
[27] 梁涢.四物汤对脑缺血再灌注小鼠海马结构及脑组织SOD和GSH-PX活力的影响[J].西部中医药,2017,30(2):10-12.
[28] 姜慈静,吴秋慧,任倩瑶,等.芒柄花黄素对大鼠局部脑缺血再灌注损伤保护作用的初步研究[J].中国医药导报,2017,14(32):8-10,14.
[29] Russo AJ. Decreased epidermal growth factor(EGF)associated with HMGB1 and increased hyperactivity in children with autism [J]. Biomark Insights,2013,8:35-41.
(收稿日期:2018-07-16 本文编辑:张瑜杰)