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5-氮杂- 2’-脱氧胞苷抗肿瘤治疗的研究进展△

2019-03-14李冉浩魏枫王玮

癌症进展 2019年7期
关键词:甲基化临床试验化疗

李冉浩,魏枫,王玮

内蒙古科技大学包头医学院第一附属医院内分泌科,内蒙古 包头0140100

目前肿瘤仍是威胁人类健康和生命的一大难题,近年来恶性肿瘤的发病率不断上升,据统计,2012年发展中国家恶性肿瘤患病人数占全球的57%,死亡人数高达全球的65%[1]。近年来,中国恶性肿瘤的发病率和病死率均逐年上升,其治疗仍以手术切除为主,放疗和化疗为辅。尽管近年来医疗诊治水平日益提高,肿瘤的检出率不断提高,肿瘤患者的生存情况得以改善,但80%的肿瘤患者就诊时已属于晚期[2]。因此,了解肿瘤的发生机制,寻找有效的治疗方法是目前临床面临的重要问题。现代医学认为,肿瘤的发生是一个多阶段、多因素和多个异常基因综合作用的过程,其生物学本质是细胞内遗传调控和表观遗传调控的紊乱与失调。DNA甲基化和组蛋白修饰是表观遗传调控的主要方式,其中以DNA甲基化最为常见,即基因的表型受到抑制,表达发生改变,但并不涉及DNA核苷酸序列的变化,而只是部分碱基发生甲基化的修饰。DNA甲基化是一个可以被逆转的过程,通过去甲基化药物可以恢复基因的功能,抑制肿瘤的生长,因此成为肿瘤治疗的新靶点[3]。目前临床上认为5-氮杂-2’-脱氧胞苷(5-Aza-2’-deoxycytidine,5-Aza-CdR)的去甲基化作用较为肯定。本文对5-Aza-CdR在细胞系、动物实验和临床试验中的抗肿瘤研究进展作一综述。

1 5-Aza-CdR的生物学活性及作用机制

5-Aza-CdR是DNA甲基化转移酶抑制剂,于1964年被Pliml和Storm首次合成,其中文名称为地西他滨。2006年5-Aza-CdR作为去甲基化药物被美国食品药品管理局(FDA)批准治疗骨髓增生异常综合征、慢性髓系白血病等恶性肿瘤[4]。5-Aza-CdR为白色或类白色晶体状粉末,无味,分子式为C8H12N4O4,分子量为228.21,可在体内外逆转因DNA异常甲基化导致的恶性肿瘤,使因高甲基化而沉默的抑癌基因被激活,导致细胞分化和(或)凋亡,阻止肿瘤进一步发展[5-7]。研究表明,5-Aza-CdR可通过去甲基化作用有效地抑制肿瘤细胞的生长和增殖,降低肿瘤细胞的侵袭和迁移能力,阻滞肿瘤细胞的生长周期,促进肿瘤细胞凋亡,最终抑制肿瘤的发生和发展[8]。随着研究的深入,5-Aza-CdR在动物模型中的应用也获得了成功,并逐步进入临床试验。有关5-Aza-CdR去甲基化对肿瘤的影响已有许多报道,5-Aza-CdR已成功作用于肺腺癌[9]、结肠癌[10]、膀胱癌[11]等。

2 5-Aza-CdR与肿瘤治疗

2.1 甲状腺癌

研究表明,重组人丝氨酸蛋白酶抑制剂抑制因子A成员5(serpin family A member 5,SERPINA5)的甲基化与BRAF突变有关,而BRAF基因突变会使甲状腺癌的复发风险增加[12]。Lee等[13]应用5-Aza-CdR处理甲状腺癌细胞株(TPC1、WRO82-1和XTC),发现SERPINA5在3种细胞株中均发生了去甲基化,说明5-Aza-CdR可以降低甲状腺癌的复发率,为预测甲状腺癌的复发提供了实验依据。甲状腺髓样癌(medullary thyroid carcinoma,MTC)的恶性程度较高,且对化疗和放疗药物高度耐受。Vitale等[14]研究了5-Aza-CdR与抗肿瘤药物依维莫司在人MTC细胞MZ-CRC-1(对依维莫司单独最耐受的细胞系)中的作用。实验分为4组:A组两种药物等剂量(IC50)、B组依维莫司剂量相对较高[依维莫司(IC50)/5-Aza-CdR(IC25)]、C组 5-Aza-CdR剂量相对较高[依维莫司(IC25)/5-Aza-CdR(IC75)]和空白对照组,应用CALCUSYN软件评估药物之间的相互作用,C组中观察到协同作用,而B组中观察到拮抗作用;采用噻唑蓝测定细胞活力,与对照组相比,B组和C组治疗6天后观察到细胞凋亡数均加倍。提示5-Aza-CdR可以逆转化疗药物的耐药性,从而抑制肿瘤细胞的生长,说明5-Aza-CdR在抗肿瘤中不仅单药有效,在联合用药方面也有显著的效果。

2.2 血液病

2.2.1 淋巴瘤Guo等[15]采用5-Aza-CdR对人伯基特淋巴瘤细胞裸鼠进行研究,造模成功后,随机分为实验组(9只)和对照组(9只),采用腹腔注射的给药方式,实验组采用5-Aza-CdR处理,对照组予以0.9%氯化钠溶液,24天后处死裸鼠,实验组抑瘤率为27.98%。将组织切片行逆转录聚合酶链反应(reverse transcription-polymerase chain reaction,RTPCR)、甲基化特异性聚合酶链反应(methylation specific-polymerase chain reaction,MS-PCR)发现,与对照组相比,实验组抑癌基因CHFR mRNA的相对表达量明显升高,甲基化条带明显变暗,同时出现非甲基化条带。提示5-Aza-CdR不仅能够抑制淋巴瘤裸鼠移植瘤的生长,还能够去除抑癌基因CHFR的甲基化状态,使CHFR的功能得以恢复,从而发挥抗肿瘤作用。Wang等[16]采用浓度为1、4、7、10 μmol/L的5-Aza-CdR处理淋巴瘤Raji细胞作为实验组,对照组予以磷酸盐缓冲液(phosphate buffered saline,PBS),流式细胞仪检测细胞凋亡情况,结果发现,随着5-Aza-CdR浓度的升高,细胞凋亡率增加。采用MS-PCR法检测基因表达情况,出现了与动物实验相似的结果,即甲基化条带变暗,同时出现了非甲基化条带,提示5-Aza-CdR可以促进肿瘤细胞凋亡,并可能通过抑制CHFR的甲基化而加速细胞凋亡。Stathis等[17]对非霍奇金淋巴瘤患者应用5-Aza-CdR联合抗肿瘤药物伏立诺他进行了Ⅰ期临床试验,该研究纳入43例患者,其中14例患者采用最大耐受剂量(maximal tolerable dose,MTD)即先用5-Aza-CdR 10 mg(/m2·d)处理,第6~12天改为伏立诺他200 mg/d,另12例患者先用5-Aza-CdR 10 mg(/m2·d)处理,第3~9天改为伏立诺他200 mg/d,其他患者一直采用联合用药。联合组中11例患者治疗4个周期后病情稳定,3例患者可持续生存8个或更多周期;单药组中4例患者发生血小板减少症,2例患者发生中性粒细胞减少症。由于患者例数较少,两种药物的最佳单药剂量仍然未知,但值得肯定的是所有患者均得到了不同程度的获益。

2.2.2 骨髓瘤Atallah等[18]开展了一项有关5-Aza-CdR治疗多发性骨髓瘤的Ⅲ期临床试验,共纳入170例患者,试验组89例,对照组81例。试验组患者接受5-Aza-CdR联合标准治疗方案,对照组患者接受单纯的标准治疗方案,结果发现,试验组患者的缓解率为17%,对照组患者的缓解率为0,前者的平均完全缓解时间为10.3个月,表明5-Aza-CdR可延长多发性骨髓瘤患者的生存时间。

2.3 肺癌

Liu等[9]将人肺腺癌细胞系A549、H838接种于裸鼠体内,分为A组(0.9%氯化钠溶液处理)、B组(500 nmol/L 5-Aza-CdR处理)、C组[500 nmol/L恩替司他(MS-275)处理]、D组(5-Aza-CdR+MS-275处理)。结果显示,与A组相比,B组和D组的DNA甲基化转移酶1(DNA methyltransferase 1,DNMT1)表达水平降低,Ras相关结构域蛋白1A(Rasassociation domain family protein 1A,RASSF1A)表达水平显著增加、甲基化水平下降,肿瘤体积缩小,提示无论是否有MS-275处理,5-Aza-CdR都可抑制肿瘤生长。Momparler[19]对非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)患者进行了Ⅰ~Ⅱ期临床试验,对未进行过化疗的5例Ⅳ期NSCLC患者静脉输注5-Aza-CdR,剂量为200~660 mg/m2,5例患者的生存时间分别为 4.3、6.7、9.3、15.3和16.0个月,唯一的不良反应是粒细胞减少。该研究结果表明,大剂量输注5-Aza-CdR并未延长患者的生存时间,可能与样本量较小有关。

2.4 消化道肿瘤

2.4.1 胃癌 卞庚等[20]在裸鼠右侧肋部皮下注射0.1 ml胃癌细胞MKN-45悬液,造模成功后随机分为对照组(0.9%氯化钠溶液处理)、5-Aza-CdR组(2 mg/kg 5-Aza-CdR处理)、化疗药物组(1 mg/kg紫杉醇+5 mg/kg氟尿嘧啶处理)、联合组(2 mg/kg 5-Aza-CdR+1 mg/kg紫杉醇+5 mg/kg氟尿嘧啶处理)。3周后处死裸鼠,结果显示,与对照组相比,5-Aza-CdR组和化疗药物组的移植瘤生长速度明显减慢,而联合组的移植瘤生长速度下降最为明显,化疗药物组肿瘤转移相关蛋白波形蛋白(vimentin)的表达水平无明显变化,5-Aza-CdR组vimentin的表达明显下降,联合组vimentin的表达下降更显著。提示5-Aza-CdR可以通过抑制vimentin的表达,抑制MKN-45移植瘤的生长和转移。说明5-Aza-CdR不仅对原发肿瘤具有抑制作用,还具有抵抗肿瘤转移的能力。

2.4.2 肝癌Yuan等[21]以5-Aza-CdR处理的肝癌细胞HepG2作为实验对象,采用实时荧光定量聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)检测基因的表达量,结果显示,5-Aza-CdR明显激活了抑癌基因PTEN和先天免疫相关基因STAT1的表达,而致癌基因CD44和HSPA4的表达则受到了明显抑制。

2.4.3 胰腺癌Pan等[22]采用抗肿瘤药物大黄素(40 μmol/L)、5-Aza-CdR(1 μmol/L)、大黄素+5-Aza-CdR处理胰腺癌PANC-1细胞株72 h,分别作为A组、B组和C组,对照组采用0.1%二甲基亚砜处理。结果发现,与对照组相比,A组和B组的DNMT1和DNA甲基化转移酶3A(DNA methyltransferase 3A,DNMT3A)表达水平均降低,抑癌基因p16和RASSF1A的甲基化水平呈不同程度下降,蛋白表达均显著增加;而B组较A组更明显,C组上述指标的改变较A组和B组更为显著。提示大黄素联合5-Aza-CdR可通过降低DNMT1和DNMT3A的表达,增强p16、RASSF1A的去甲基化作用,从而发挥抗肿瘤效应。

2.5 泌尿系统肿瘤

2.5.1 前列腺癌McCabe等[23]采用5-Aza-CdR治疗TRAMP前列腺癌小鼠,实验组采用5-Aza-CdR处理,对照组予以等量的0.9%氯化钠溶液,结果显示,实验组的14只小鼠在24周龄时被治愈,而对照组13只小鼠中有7只发展为低分化前列腺癌,与对照组相比,5-Aza-CdR处理可以延长小鼠的生存时间。Chiam等[24]应用0~20 mmol/L 5-Aza-CdR每日和隔日处理人前列腺癌细胞LNCaP,与对照组(无药物处理)相比,每日处理组在所有浓度下均能有效抑制LNCaP细胞增殖,隔日处理组较低剂量5-Aza-CdR的作用强,每日处理组达到上述抑制作用需要的5-Aza-CdR剂量较低。

2.5.2 膀胱癌Bender等[25]应用5-Aza-CdR处理膀胱癌T24细胞接种的裸鼠,发现裸鼠的移植瘤较未处理组明显缩小,表明5-Aza-CdR可减缓肿瘤的生长。单用丝裂霉素C(mitomycin C,MMC)后耐药性的发生是膀胱癌治疗中的难题,且P糖蛋白(P-glycoprotein,Pgp)、多药耐药相关蛋白 1(multidrug resistance associated protein 1,MRP1)的表达增加提示肿瘤患者的预后不良[26]。Zhang等[11]应用不同浓度的5-Aza-CdR和MMC处理膀胱癌T24细胞,结果显示,随着5-Aza-CdR浓度的增加,T24细胞增殖率降低,Pgp、MRP1的表达水平降低。

2.6 妇科肿瘤

2.6.1 卵巢癌 卵巢癌化疗失败的主要原因是卵巢癌细胞对顺铂的敏感性降低[27]。低剂量的5-Aza-CdR虽无直接的抗肿瘤作用,但能通过改变卵巢癌耐药细胞中hMLH1基因的甲基化状态,从而逆转肿瘤对顺铂的耐药,因此低剂量的5-Aza-CdR联合化疗药物可能达到更好的临床治疗效果。2.6.2乳腺癌Kang等[28]应用不同浓度的5-Aza-CdR对乳腺癌细胞MCF-7进行体外培养,结果显示,runt相关转录因子3(runt related transcription factor 3,RUNX3)在MCF-7细胞中表达下调且高度甲基化,经5-Aza-CdR处理,RUNX3的mRNA及蛋白表达水平均升高,且较处理前的细胞,其增殖受到抑制且凋亡率增加,表明5-Aza-CdR可以通过降低RUNX3的高甲基化状态并恢复其表达,抑制细胞增殖并诱导细胞凋亡。在卵巢癌[29]、宫颈癌[30]细胞株中也有相似的研究结果。

3 小结

5-Aza-CdR可以通过去甲基化作用阻滞肿瘤细胞周期,诱导肿瘤细胞凋亡,抑制肿瘤细胞和实体瘤生长,还可以有效抑制肿瘤转移,因其与化疗药物具有协同作用,故联合应用可提高化疗药物的敏感性,延缓肿瘤进展。无论是在细胞水平还是动物实验研究,5-Aza-CdR的抗肿瘤作用均得到了广泛的认可,在其抗肿瘤机制不断被发现的同时,5-Aza-CdR作为抗肿瘤药物也已应用于临床。虽然在大部分临床试验中5-Aza-CdR显示出了抗肿瘤作用,但仍有临床试验发现5-Aza-CdR在发挥去甲基化作用的同时反而促进了肿瘤的发展[31]。5-Aza-CdR的应用还出现了许多药物相关的不良事件,如骨髓压迫、恶心和呕吐等,尤其在用药剂量方面,仍然存在诸多未解决的问题。由于5-Aza-CdR在各类肿瘤患者中的抗肿瘤效应及不良反应不同,其临床应用存在一定的局限性,仍需大量深入的研究进一步证实。

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