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CD133联合外周循环肿瘤细胞在结直肠癌预后评估中的应用研究

2018-06-29杨国华郑圣斌林彩锋黄若磊

腹部外科 2018年3期
关键词:分化直肠癌阴性

杨国华 郑圣斌 林彩锋 黄若磊

结直肠癌发病率为恶性肿瘤第三位,病死率位居恶性肿瘤第四位,常见死亡原因为肿瘤复发或转移。近年来,国内外学者研究发现结直肠癌组织中存在一群细胞表面表达CD133的亚组癌细胞,含有该组癌细胞的肿瘤组织其复发率及转移率明显升高。外周循环肿瘤细胞(circulating tumor cell,CTC)指外周循环血液中的肿瘤细胞,学者研究[1-2]发现CTC数量与病人预后呈负相关,数量越多其预后越差。结直肠癌预后判断一直是结直肠癌临床研究热点,本文拟对CD133联合CTC两因素在结直肠癌预后评估应用的可行性作一研究。

资料与方法

一、一般资料

收集自2012年1月至2013年1月福建省立医院胃肠外科及肿瘤外科132例结直肠癌手术标本,年龄为(52.7±13.9)岁,年龄范围为35~86岁。132例均行术前肠镜及术后标本病理证实,其中高分化29例,中分化72例,低分化31例;按美国国立综合癌症网络(NCCN)指南2016年第2版TNM分期Ⅰ期26例,Ⅱ期32例,Ⅲ期51例,Ⅳ期23例。

二、随访方法及内容

采取病人门诊随访及电话随访,术后前2年每3个月复查,第3年每半年复查,复查内容:血常规、生化、癌胚抗原(CEA)、CTC,胸片、腹部B超;每半年复查全腹及胸部CT,每年复查肠镜。

三、标本组织中CD133测定

10%甲醛溶液固定新鲜组织标本,连续薄切厚4 μm病理切片共3张,常规病理HE染色,采用ABC法行免疫组织化学病理染色。步骤如下:切片常规脱蜡后用梯度乙醇水化,3%H2O2灭活内源性过氧化物酶,磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗后加入一抗鼠抗人CD133单克隆(1∶40),用二氨基联苯胺(DAB)显色后加入苏木精复染,树脂封片。参考文献[3]标准:CD133阳性表达为境界清晰、突出于背景的棕黄色,定位于细胞质、细胞膜同时呈棕黄色亦为阳性。计分标准参照Hilbe等[4]的方法,随机选取4个高倍视野约200个细胞,计数肿瘤细胞CD133阳性数,取三张阳性切片平均值作为计数结果,细胞数>10%为阳性,≤10%为阴性。

四、CTC测定

术前采外周血10 ml,置于50 ml离心管中1 500 r/min离心,后加入CS1血小板裂解液45 ml后再次离心,去除血清等上清至12 ml,摇匀加入CS2红细胞裂解液裂解红细胞,离心去除上清,留下白细胞与特种细胞沉淀,加300 μl CS1摇匀沉淀细胞,加入磁微粒吸附离心,去除结合白细胞的磁微粒沉淀。再次离心去上清至100 μl,加CF1混匀细胞悬液涂片,置25℃~33℃无风烘箱烘干。染色鉴定:将细胞干片加CF2固定液固定8 min后,浸泡SSC试剂10 min后,加入杂交探针,放入杂交仪杂交1.5 h后,取出浸泡43℃预热后的甲酰胺试剂15 min,再次浸泡SSC试剂10 min,用BSA清洗标本区后加入CD45孵育1 h后取出加入4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPA)染色,盖上盖玻片,放置4℃冰箱保存。最后使用荧光显微镜先在蓝色通道下找到靶细胞层面,换到20倍物镜,分别在三种通道(蓝色、红色、橙色或绿色)下观看信号、细胞状态、CD45着色等情况。CTC细胞表现为:单个细胞状态,核质均匀,未发现分层,细胞表面无或仅一颗结合白细胞磁微粒;红色通道下未见CD45红色,CD45阴性。橙色或绿色信号3个或3个以上,且在细胞核上。我们参考文献[5]标准:CTC>3个/7.5 ml为高水平量(H-CTC),≤3个/7.5 ml为低水平量(L-CTC)。

五、观察指标

观察CD133、CTC与临床病理各因素之间的关系,并进一步将实验分为4个组,第1组为CD133阴性(CD133-)L-CTC,第2组为CD133-H-CTC,第3组为CD133阳性(CD133+)L-CTC,第4组为CD133+H-CTC,绘制各组的3年生存曲线。

六、统计学分析

结 果

一、随访情况

本组完整随访了124例,失访8例;随访病例中CD133-L-CTC共59例,CD133-H-CTC共21例,CD133+L-CTC共35例,CD133+H-CTC共9例。

二、临床各因素与CD133、CTC之间的关系

CD133阳性组与CD133阴性组病人在淋巴结转移、远处转移、腹膜种植、组织分化、神经脉管侵犯等因素方面比较,差异均具有统计学意义(P<0.05或P<0.01);而在结肠癌位置(P=0.755)、病人性别(P=0.069)、年龄(P=0.697)、肿瘤浸润深度(P=0.231)、CEA水平(P=0.054)方面两组差异均无统计学意义。CTC高水平量组与CTC低水平量组病人在肿瘤位置、肿瘤浸润深度、淋巴结转移、远处转移、腹膜种植、组织分化、神经脉管侵犯等因素方面比较,差异均具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。(表1)

三、各组生存曲线关系

CD133-L-CTC组生存时间与CD133+L-CTC组之间差异无统计学意义(P=0.452);但明显高于CD133-H-CTC 组(P=0.037)及CD133+H-CTC

表1 临床各因素与CD133、CTC之间的关系(例)

组(P<0.01);CD133+L-CTC组生存时间明显高于CD133-H-CTC组(P=0.042)及CD133+H-CTC组(P<0.01);CD133-H-CTC组生存时间明显高于CD133+H-CTC组,两组之间差异具有统计学意义(P=0.035)。(表2、图1)

表2 各组生存时间及95%可信区间(d)

注:与CD133-L-CTC组比较,aP<0.05;与CD133-H-CTC组比较,bP<0.05;与CD133+L-CTC组比较,cP<0.05

四、CTC镜下特征

CTC在镜下表现:细胞呈单个细胞状态,核质均匀,红色通道下未见CD45红色,CD45阴性。橙色或绿色信号3个或3个以上,且在细胞核上。(图2、3)

图1 4组3年生存曲线图

图2 CTC在荧光显微镜(×40)镜下表现 A.CTC单个细胞状态,细胞核上呈3个橙色及1个绿色信号,核质均匀,CD45阴性,未见红色;B.CTC单个细胞状态,细胞核上呈3个橙色及2个绿色信号,核质均匀,CD45阴性,未见红色

图3 CD133免疫组织化学染色切片(×20) CD133阳性表达为境界清晰、突出于背景的棕黄色(箭头所示),定位于细胞质、细胞膜

讨 论

结直肠癌是全球肿瘤死亡的主要原因之一,其致死的主要原因为肿瘤复发或转移,大约有15%~25%的病人就诊时同时合并肝转移,25%~50%在原发灶切除术后发生肝转移[6-7]。本研究发现:结直肠癌组织中CD133阳性与肿瘤淋巴结转移、远处转移、腹膜种植、组织分化、神经脉管侵犯明显相关。这可能与CD133表达上调在结直肠癌中增高肝转移率,其预后更差;学者研究表明对于结直肠癌CD133阳性干细胞样细胞,它们与结直肠肿瘤的侵袭和分化呈正相关[8-11]。本研究还发现,CD133阳性与阴性病人在术后3年内二者生存曲线无明显差异,但术后2年时CD133阳性病人其生存时间开始低于CD133阴性组,远期生存时间有待进一步随访。

近年来国内外学者从结直肠癌肝转移病人外周血发现CTC,血液中CTC的分子表征提供了替代或补充的非侵入性方法组织活检[12-13];CTC可作为结直肠癌伴肝转移病人的独立预后因素,CTC阳性组的总生存期及无病生存期明显低于阴性组[14]。本研究结果表明:CTC数量与肿瘤浸润深度、淋巴结转移、远处转移、腹膜种植、组织分化、神经脉管侵犯呈明显正相关,而上述几个因素是结直肠癌术后预后不良主要因素[15];本研究结果表明:CTC低水平量组其3年生存期明显好于高水平量组,CD133-L-CTC组生存时间为(1 002.8±39.1) d,CD133+L-CTC-组为(980.5±38.8) d,明显高于CD133-H-CTC组的(782.5±75.8) d及CD133+H-CTC组的(368.6±31.0) d,差异均具有统计学意义,说明CTC高水平的结直肠癌预后差,其原因与上述结直肠癌预后不良因素相关。本研究还发现,CTC还与肿瘤位置有关,左半结肠CTC水平明显高于右半结肠,两组比较差异具有统计学意义。这与临床左半结肠癌预后明显差于右半结肠相符,其具体分子机制目前尚不明,有待进一步分子机制研究。

通过本研究表明,CD133联合CTC可用于结直肠癌术后3年生存时间评估,CD133阴性且CTC低水平量组预后好,而CD133阳性且CTC高水平量组预后差。CD133可能与病人3年生存期无明显相关,可能与远期生存时间有关;而CTC水平与病人近期生存时间明显相关。其远期预后评估有待一步随访。

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