口服巯基供体改善动脉粥样硬化兔硝酸酯耐药的实验观察
2018-01-26陈良蒋锦琪冯辉
陈良,蒋锦琪,冯辉
硝酸酯类药物是治疗冠状动脉粥样硬化性心脏病的经典用药,并在多种心血管疾病的急救和常规治疗中发挥举足轻重的作用。然而,持续用药24~72 h以上或短间隙频繁用药则很容易产生硝酸酯耐药,影响长期药效。为此,各种动物模型或临床试验探索硝酸酯耐药的机制和防治方法,国外研究显示鸟苷酸环化酶激活物BAY 60-2770及松弛素可以通过增加血管一氧化氮(NO)水平,减轻氧化应激反应来改善硝酸酯耐药[1,2]。N-乙酰半胱氨酸(NAC)作为一种巯基供给体,可通过抗氧化发挥心脏、肾脏、呼吸系统及神经系统的保护作用。NAC的心脏保护作用主要表现在心肌缺血/再灌注方面,其在改善硝酸酯耐药效应方面鲜有报道。本研究采用5-单硝酸异山梨醇酯(ISMN)建立动脉粥样硬化兔的硝酸酯耐药模型,探讨其耐药机制并观察口服巯基供体NAC对硝酸酯耐药的影响。
1 材料与方法
1.1 主要试剂 单硝酸异山梨醇酯缓释胶囊(H20031224,优时比制药有限公司),乙酰半胱氨酸颗粒(H20000472,海南赞邦制药有限公司),盐酸赛拉嗪注射液(吉林省敦化市圣达动物药品有限公司),硝酸甘油注射液(H11020291,北京益民药业有限公司)。抗超氧及超氧阴离子自由基(·O2-)测试盒、超氧化物歧化酶(SOD)测试盒、丙二醛(MDA)测定试剂盒、NO试剂盒、微量总巯基(T-SH)测试盒均购于南京建成生物工程研究所,内皮素-1(ET-1)放射免疫分析药盒(北京北方生物技术研究所)。Fogarty动脉取血栓导管(YZB/USA 4009-77-2004,美国爱德华生命科学世界贸易公司)。MPA 2000离体实验系统、ALC-M恒温组织浴槽由上海奥尔科特生物科技有限公司生产。K-H溶液配方:NaCl 130 mmol/L、KCl 4.7 mmol/L、MgSO41.17 mmol/L、KH2PO4 1.18 mmol/L、NaHCO314.9 mmol/L、CaCl21.6 mmol/L、Glucose 5.5 mmol/L、EDTA 0.026 mmol/L。
1.2 实验动物及分组 40只雄性新西兰大白兔(上海杰思捷实验动物有限公司提供),体质量(2500 ±200)g。动物的饲养和实验过程遵循国家《实验动物管理条例》和《实验动物质量管理办法》。并随机分为正常组、模型组(AS组)、硝酸酯组(ISMN组)、硝酸酯耐药组(NT组)和用药组(NT+NAC组),各8只。模型组以及药物干预组均建立腹主动脉粥样硬化模型。
1.3 腹主动脉粥样硬化模型建立[3]实验兔麻醉
后,取仰卧位,右下肢备皮,常规消毒铺巾,解剖暴露右膝隐动脉,纵向切开管壁,向近端插入3F Fogarty动脉取血栓导管约20~25 cm至腹主动脉上端,向球囊内注入生理盐水0.1~0.15 ml充盈球囊至适当阻力,沿动脉来回牵拉球囊约5~8 cm,反复3次以保证充分剥脱损伤动脉内皮,拔除导管,结扎隐动脉,缝合伤口。术毕每日肌注庆大霉素8万单位共3 d,并饲以高脂饲料(0.5%胆固醇+5%猪油+15%蛋黄粉+79.5%普通饲料)共8周。通过病理组织学证实兔腹主动脉粥样硬化模型建立情况。
1.4 给药方案 高脂饲料饲养8周后,ISMN组灌胃给予ISMN 25 mg,1/24 h;NT组灌胃ISMN 25 mg,1/12 h;NT+NAC组则同时灌胃ISMN 25 mg和NAC 100 mg,1/12 h;AS组和正常组(普通饲料)不用药。给药期间继续高脂饮食。
1.5 取材与检测 连续给药7 d后,5组实验兔均以相同方法取材和检测。切取腹主动脉,浸于K-H溶液中,而后每5 mm剪为数段。取1段行常规石蜡包埋、切片、HE染色并中性树胶封片,于显微镜下判断动脉粥样硬化形成情况;另取1段用以血管环舒张反应检测;其余各段分别通过相应试剂盒行血管组织T-SH(微量酶标法)、·O2-(化学比色法)、SOD(黄嘌呤氧化酶法)、MDA(硫代巴比妥酸法)、NO2-(亚硝酸盐,硝酸还原酶法)、ET-1(双抗体夹心ABC-ELISA法)测定,其操作严格遵循试剂盒说明书。
1.6 血管环舒张反应检测 将所取血管环一端与肌力传感器相连,悬挂于装有10 ml K-H溶液的ALC-M恒温(37 ℃)组织浴槽中,另一端加以2 g负荷,连续通入含95%O2及5%CO2的混合气体,平衡2 h,使血管平滑肌处于最稳定长度。平衡后通过MPA 2000离体实验系统记录血管环静息张力及收缩舒张曲线,然后加入10-5mol/L的苯肾上腺素,当血管收缩至最大张力时记录数值,曲线平坦稳定后依次加入10-9mol/L、10-8mol/L、10-7mol/L、10-6mol/L、10-5mol/L、10-4mol/L的硝酸甘油(NTG),轻拌搅匀,记录相应浓度梯度的张力值,计算舒张幅度百分比=(最大张力值-梯度张力值)/(最大张力值-静息张力值)×100%。
1.7 统计学方法 采用SAS 8.1软件进行统计分析。计量资料采用均数±标准差(±s)表示,组间比较采用方差分析。P<0.05表示差异有统计学意义。
2 结果
2.1 兔腹主动脉粥样硬化建模结果 取材前所有实验兔均状态良好,无腹泻、感染等并发症。对动脉粥样硬化实验兔的腹主动脉进行肉眼观察,血管内膜均出现不规则隆起的灰黄色斑块、斑点或长短不一的条纹。各建模组HE染色后,于光学显微镜下观察均可见内膜不同程度的增厚,大量泡沫细胞、平滑肌细胞和脂质沉积。提示实验兔的腹主动脉粥样硬化模型均制备成功,图1。
2.2 血管环舒张反应结果 各组血管环的舒张幅度均随NTG浓度的增加而递增。当NTG为10-9mol/L时,正常组、AS组、ISMN组及NT+NAC组之间血管舒张幅度比较,差异无统计学意义(P均>0.05);NT组则显著低于其余四组,差异有统计学意义(P均<0.05)。当NTG浓度为10-8~10-4mol/L时,与正常组比较,AS组、ISMN组、NT组以及NT+NAC组血管舒张幅度均降低,差异有统计学意义(P均<0.05);NT组血管舒张幅度则显著低于其余四组,差异均有统计学意义(P均<0.05)。当NTG浓度达到10-4mol/L时,正常组、AS组、ISMN组和NT+NAC组的最大舒张幅度分别为(98.91±1.99)%、(79.12±6.28)%、(81.17±7.75)%和(81.92±9.59)%,NT组仅为(58.87±8.09)%,表1。
2.3 各组生化指标测定结果 T-SH含量由高至低依次为正常组、AS组、NT+NAC组、ISMN组及NT组,各组间比较差异均有统计学意义(P均<0.05)。·O2-、MDA、ET-1和NO2-含量:正常组、AS组、NT+NAC组、ISMN组、NT组呈升高趋势,除正常组与AS组外,其余各组间比较差异均有统计学意义(P均<0.05)。NT组SOD含量低于正常组,且NT+NAC组SOD含量高于NT组,差异均有统计学意义(P均<0.05),表2。
3 讨论
硝酸酯药物常用于治疗冠状动脉粥样硬化心肌缺血、充血性心力衰竭、高血压等心血管疾病,其主要机制是作为一种非内皮依赖性外源性NO供体[4,5]。低浓度的NO与肌膜上可溶性鸟苷酸环化酶(sGC)血红素结构域的Fe2+结合形成复合物,使sGC处于轻度激活状态,而高浓度的NO可进一步与sGC非血红素结合位点的半胱氨酸-SH结合而完全激活sGC[6,7]。激活的sGC可使环磷酸鸟苷(cGMP)生成增加,从而抑制细胞外Ca2+内流、增加细胞内Ca2+排出、加速肌浆网对Ca2+摄取,最终降低细胞内Ca2+浓度而舒张血管。当持续应用硝酸酯类药物后血管壁-SH逐渐减少或被亚硝酰化,导致硝酸酯源性NO生成减少或sGC活性下降而产生耐药;此外,持续应用硝酸酯还可以使RAAS激活、血管紧张素Ⅱ水平升高产生大量·O2-。·O2-不但可以与NO反应形成过氧亚硝基阴离子,削弱NO对sGC的活化作用,还能使sGC非血红素结合位点的-SH被氧化而失活,导致cGMP生成减少、血管舒张减弱[8]。这是硝酸酯耐药发生的重要环节,影响硝酸酯药效。
NAC的化学结构中含有活性-SH,不仅能为硝酸酯生物转化提供活性-SH,而且能有效清除体内的活性氧成分、保护酶的活性。本研究通过在动脉粥样硬化兔中持续给予长效硝酸酯类药物分析NAC抗硝酸酯耐药的效果及机制。血管舒张反应测定发现,NT组在不同浓度NTG作用下的舒张反应均明显弱于其他组,提示短间隙应用ISMN不仅导致了血管耐药性的产生,而且对NTG产生了交叉耐药。当加用NAC后,NT+NAC组的血管舒张反应较NT组显著改善,提示NAC可有效改善ISMN的耐药效果,维持血管舒张活性。
血管组织生化检测结果发现,T-SH含量由高至低依次为正常组、AS组、NT+NAC组、ISMN组以及NT组。·O2-、MDA、ET-1和NO2-含量:正常组、AS组、NT+NAC组、ISMN组、NT组呈升高趋势;AS组、正常组、NT+NAC组、ISMN组、NT组的SOD含量呈降低趋势。提示ISMN可使-SH消耗增加,且随用药间隙的缩短消耗增多,加用NAC后可使组织T-SH水平显著升高。口服NAC可能具有清除活性氧物质、恢复SOD活性的作用。
表1 各组于不同浓度NTG时的血管舒张幅度(n=8,%)
表2 各组腹主动脉生化指标测定值比较(n=8)
[1] Jabs A,Oelze M,Mikhed Y,et al. Effect of soluble guanylyl cyclase activator and stimulator therapy on nitroglycerin-induced nitrate tolerance in rats[J]. Vascul Pharmacol, 2015,71(S1):181-91.
[2] Leo CH,Fernando DT,Tran L,et al. Serelaxin Treatment Reduces Oxidative Stress and Increases Aldehyde Dehydrogenase-2 to Attenuate Nitrate Tolerance[J]. Front Pharmacol,2017,8:141.
[3] 李红,谭理连,严家荣,等. 兔腹主动脉粥样硬化动物模型的建立[J].中华实验外科杂志,2014,31(2):235.
[4] Daiber A,Münzel T. Organic Nitrate Therapy, Nitrate Tolerance,and Nitrate-Induced Endothelial Dysfunction: Emphasis on Redox Biology and Oxidative Stress[J]. Antioxid Redox Signal,2015,23(11):899-942.
[5] Françasilva MS,Balarini CM,Cruz JC,et al. Organic nitrates: past,present and future[J]. Molecules,2014,19(9):15314-23.
[6] 关文龙,窦豆,高远生. 可溶性鸟苷酸环化酶的调节机制及与心血管疾病治疗关系[J]. 生理科学进展,2011,42(6):431-6.
[7] 潘洁,钟方芳,王红艳,等. 可溶性鸟苷酸环化酶介导NO信号转导的结构基础及其分子机制研究[J]. 国科学:化学,2014,44(4):572-85.
[8] 中华医学会心血管病学分会,中华心血管病杂志编辑委员会. 硝酸酯在心血管疾病中规范化应用的专家共识[J]. 中华全科医师杂志,2012,11(10):725-8.