猪伪狂犬病的诊断与防控净化

李天芝，于新友

（山东绿都生物科技有限公司，山东 滨州 256600）

猪伪狂犬病的诊断与防控净化

李天芝，于新友

（山东绿都生物科技有限公司，山东 滨州 256600）

伪狂犬病是由伪狂犬病病毒引起的多种家畜和野生动物共患的一种烈性传染病。猪是该病毒的自然宿主，该病具有高度传染性，可造成种猪繁殖障碍、仔猪早期大量死亡、商品猪生长迟滞，给养猪业造成了巨大的经济损失。文章从猪伪狂犬病的病原学、流行病学、临床症状、病理变化、诊断、防控措施及净化等方面对猪伪狂犬病进行了较全面的阐述，以期为该病防控与净化工作提供参考。

猪伪狂犬病；防控；净化

伪狂犬病（Pseudorabies,PR）是由伪狂犬病病毒（Pseudorabies Virus,PRV）引起的多种家畜和野生动物以发热、奇痒（猪除外）及脑脊髓炎为主要特征的传染性疾病[1]。各日龄猪均可感染发病，母猪表现为繁殖障碍、仔猪出现神经症状及高死亡率，肥育猪以腹泻及呼吸系统疾病为主。该病是对养猪业危害最严重的传染病之一，给养猪业造成了巨大的经济损失[2]。世界动物卫生组织（OIE）将其列为B类传染病，我国也将其列为二类动物传染病[3]，为畜产品进出口贸易必检项目之一。

PRV感染猪后，可在猪外周神经系统定植，并终生潜伏感染，当其免疫力降低或受应激等其它因素影响时，病毒还可被重新激活而排毒，易导致该病的暴发流行。PR尚没有特效的治疗方法，疫苗接种则是防制乃至根除该病的主要手段之一。疫苗免疫虽然不能阻止已感染猪的排毒，但可缓解猪群临床症状，缩短排毒时间，减少排毒数量，使猪群感染需要的病毒量增加，当病毒排出的数量低于感染所需的数量时，病毒的传播就能被有效阻止。

PR最早于1813年在美国牛群中发现，1902年匈牙利Aujeszk博士首次分离出PRV[4]。我国自1947年首次报道猫病例以来，已有31个省（市、自治区）报道发生PR[5]。综合国内外临床防控经验，猪群PR的净化是控制该病的唯一正确方向。目前已经净化PR的国家有美国、德国、荷兰、比利时、法国、挪威、丹麦、澳大利亚等。根据《国家中长期动物疫病防治规划》（2012—2020），PR 已被列入其中[6]，做到要优先防治，到2020年全国所有种猪场达到净化标准。近年来，我国已出台一系列政策来支持开展PR净化，同时将猪PR列入优先防治病种之一，本文从猪PR的病原学、流行病学、临床症状、病理变化、诊断、防控措施及净化等方面对猪PR进行了较全面的阐述，以期为今后防控与净化工作提供参考。

1 病原学

PRV属于疱疹病毒科、猪疱疹病毒属。病毒粒子呈圆形或椭圆形，直径约为150～180 nm[7]。有囊膜，囊膜表面有呈放射状排列的纤突，长约8～10 nm。PRV只有一种血清型[8]，但不同毒株毒力及在感染过程中的毒素排出量和持续时间不同。PRV可以在多种组织器官细胞中繁殖，属泛嗜性病毒。感染哺乳仔猪需要101～3TCID50的病毒含量，感染青年猪需要104TCID50的病毒含量，感染成年猪需要104～5TCID50的病毒含量，感染已经免疫的猪需要100～1 000倍的野毒，一旦感染，疾病的严重性跟增加的病毒量无关。

病毒对外界环境抵抗力强，在畜舍内干草上的病毒，夏季能存活30 d，冬季可存活46 d。冬季在猪粪便中PRV可保持长达5个月的感染力，在病猪肉腌制后3个月仍可检出活病毒。保存在50%甘油水的病料，在0～6℃条件保存154 d病毒感染力基本不变，保存到3年仍具有感染性。在腐败条件下病料中病毒经11 d丧失感染力。附着在金属及谷物表面的病毒的致病性可保持7 d，在颗粒饲料中病毒能存活3 d。污水中病毒能存活7 d，水泥地板中存活4 d，湿润空气中存活7 d。在8℃存活46 d，24℃存活30 d，60℃经50 min才能灭活，80℃经3 min灭活。PRV保存在-20℃一般100 d以内丧失感染力，而在4℃可存活300 d以上，一般短期保存选择4℃保存。病毒在pH 6.8～7.4中，一般较稳定。

PRV对乙醚、氯仿、福尔马林和紫外线照射等敏感。常用消毒药如0.2%戊二醛癸甲溴铵、0.2%三氯异氰尿酸、5%石炭酸、2%氢氧化钠迅速使其灭活。但0.5%石炭酸处理32 d后仍具有感染性。PRV可在 PK-15、IBRS-2、Vero、BHK-21、MDBK 等多种细胞上增值培养，产生核内包涵体，引起细胞病变和蚀斑，毒力较低的毒株能产生较大的蚀斑。PRV分离时也可用鸡胚，一般采取绒毛尿囊膜接种，接种后3～4 d可见绒毛尿囊膜有白色的大小不一的痘斑，通过鸡胚的卵黄囊或尿囊腔继代适应后，可于接种后2～3 d致死胚体，并使全身出血水肿。

PRV基因组为线状双链DNA，PRV基因组全长约150 kb，GC含量高达73%，由72个阅读框组成，可编码 70 种蛋白[9]，主要包括 gB、gC、gD、gE、gG、gH、gI、gK、gL、gM、gN 等 11 种糖蛋白，其中编码gC、gE、gG、gI、gM、和 gN 的基因，为病毒复制非必需的，gB、gC、gD、gE 和 gI与病毒的毒力有关，其中 gE对PRV在神经系统中扩散有重要影响，缺少gE的PRV只能局限性神经感染，糖蛋白gB、gC、gD在免疫诱导方面最为重要。此外，胸苷激酶（TK）、核苷酸还原酶（RR）也与病毒的毒力密切相关，其中TK是PRV最主要的毒力基因，TK基因是在神经细胞中的增殖主要毒力相关基因，是产生感染性病毒粒子的关键基因，RR基因在急性感染和潜伏感染中起关键作用。同其它疱疹病毒一样，PRV基因组可整合于细胞基因组内形成长期潜伏。潜伏期间，病毒基因组表达受到抑制，不产生感染性病毒粒子，对细胞生命无影响，当机体抵抗力降低或应激等可被重新激活，引起复发性感染并散毒，此时可能体液抗体水平很高，但仍不能阻止复发。

2 流行病学

PRV 可引起猪、牛、羊、犬、猫、鼠、兔、貂、熊和狐等多种动物发病。除猪和鼠外，其它动物多为散发且为致死性的，排毒量低，在流行病学的传播意义有限。鼠因带毒成为顽固传染源，随其迁徙活动致该病在不同猪场间传播，试验动物中，家兔最易感。该病潜伏期一般为 3～6 d，最短 36 h，最长 10 d[10]。PRV在感染后2～5 d开始向体外排毒[11]。该病一年四季均可发生，冬春季节和产仔旺季多发[12]，通常分娩高峰的母猪舍先发。2周龄内仔猪病死率100%，3～4周龄病死率50%左右。随着日龄增大，病情有所缓解，有明显日龄抵抗现象。成年病愈猪呈隐性感染状态，多表现呼吸道病症状，但长期带毒、排毒，是该病主要的散毒者。潜伏感染猪不表现临床症状，病毒潜伏的主要位点是三叉神经节、嗅球和扁桃体，潜伏期有病毒核酸存在，但复制的病毒不具有传染性，在外界不良环境刺激等造成的免疫力减弱时，潜伏状态的病毒可转化为具有感染性的病毒，导致本病呈暴发性流行。病猪、带毒猪及带毒鼠为本病的重要传染源[13]，猪一旦感染后可终生带毒、排毒。

该病可垂直传播也可水平传播，猪感染后2～4周内可通过猪唾液、鼻液、乳汁、胎盘、尿液、精液等排出体外，污染饲料、饮水及周围环境，经消化道、呼吸道、损伤的皮肤以及生殖道均可感染健康猪只。一头病猪可向外排出105.3TCID50病毒[14]。妊娠母猪感染后可经胎盘垂直传播感染胎儿，致胚胎死亡。泌乳母猪在感染本病后1周左右乳汁中有病毒出现，可持续3～5 d，仔猪可因哺乳而感染本病。带有病毒的空气和飞沫可随风传到3 km或更远的地方，使健康猪群受到感染。病毒在猪场中通过猪多次传代，毒力明显增强。PRV首先在扁桃体、咽部和嗅上皮组织内增殖，然后通过嗅神经和舌咽神经等到达脊髓，增殖后扩散到整个大脑，导致脑和脊髓炎症。病毒也可以由白细胞携带经过血液传播，病毒血症出现的时间极短，因此，一般很难从血液中检测到病毒。抗体一般在感染后10～14 d出现。

3 临床症状

不同日龄的猪临床表现不同，日龄越小的猪受到的危害越严重，2周龄以内的仔猪常表现为最急性型，体温突然升高（41～42℃），被毛粗乱，耳尖发紫，食欲减退，眼睑水肿、口吐白沫、流涎、呕吐、腹泻，腹部有粟粒大小的紫色斑点，有的全身呈紫色，肌肉呈痉挛性收缩，运动不协调，有时不自主地前进、后退，转圈、抽搐、尖叫、眼球震颤发展至头向后仰、后躯麻痹、四肢划水等神经症状，最后昏迷死亡。病程不超过72 h，死亡率高达100%，保育猪体温升高，精神不振，采食量下降，主要表现为腹泻，部分猪有咳嗽、气喘、呼吸困难等症状，仔猪整齐度差，临床用药治疗过不明显。肥育猪症状与猪流感类似，体温升高，厌食，主要表现气喘、咳嗽、流鼻液、呼吸困难，有的呈“犬坐姿势”，耳部出现紫色，其中以耳尖紫色最为严重，有时也会出现腹泻，发病率可高达100%，一般不发生死亡，病程一般10 d左右，病猪消瘦，易继发细菌感染，死亡率升高，耐过后呈长期隐性感染带毒或排毒。成年猪常呈隐性感染，临床症状一般较轻，轻微咳嗽、呕吐、体温升高，多在1周左右恢复正常，一般死亡率不超过10%。母猪常表现为流产、产死胎、木乃伊胎和弱仔，多发生于怀孕后期，其中死胎最常见，母猪产仔数减少，无论是头胎母猪还是经产母猪都发病，产出的弱仔多在1～3 d内死亡，死前表现呕吐腹泻、运动失调等神经症状。母猪返情率高达90%，且屡配不孕。公猪可出现睾丸肿胀、萎缩、阴囊水肿、精子活力下降[15]，种用性能降低或不育。

4 病理变化

病理变化主要表现为脑膜充血和水肿，脑脊液增多。喉头出血、水肿，扁桃体出血、化脓或坏死[16]。气管、支气管内有充满白色的泡沫状液体，肺脏水肿、有出血点。心包积液，心外膜、心肌上有出血点。肝脏、脾脏表面均有灰白色坏死灶，胆囊肿大。肾脏有针尖样出血点或白色坏死灶，有时肾脏畸形，大小不对称。胃底部黏膜出血，小肠黏膜充血、水肿、黏膜形成皱褶并有稀薄黏液附着，大肠呈斑块状出血。母猪子宫内感染后可见胎盘坏死性炎症，胎衣出现白色坏死灶。

5 诊断

根据流行情况、临床症状及特征性病变可作出初步诊断，对存在繁殖障碍的母猪需要同猪的繁殖障碍型疾病做出鉴别诊断，如与猪细小病毒、流行性乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒、猪瘟病毒、猪衣原体、弓形虫及布鲁氏菌等引起的母猪繁殖障碍相区别。如要确诊，最好采用实验室检测方法进行确诊。

常用的实验室检测方法有动物接种试验、病原分离、血清学诊断和分子生物学检测，可通过家兔接种，对疾病作出进一步判断，采取病死猪脑组织、扁桃体等病料，按1∶4加入灭菌PBS，研磨，每毫升悬液加入青霉素、链霉素各2 000单位，4℃作用6 h，2 000 r/min离心10 min，取上清液2 mL，皮下注射家兔，通常在48 h内注射部位出现剧痒，病兔啃咬注射部位皮肤，皮肤脱毛、破皮和出血，继之四肢麻痹，体温下降，卧地不起，最后角弓反张，抽搐死亡。据此，结合临床症状和实验室诊断，该病例被确诊为猪伪狂犬病。可采取处于发热期病猪的脑组织和扁桃体作为分离病毒的样品，效果较好。对亚临床感染的猪，多采取鼻咽洗液作为分离病毒的样品。常将处理的病料接种PK-15、Vero、BHK-21等细胞进行病毒分离，一般3 d内即能出现细胞病变，PRV是相对容易分离的一种病毒。条件较差的实验室，可通过鸡胚进行病毒的分离。

常用的猪血清学检测方法有血清中和试验、乳胶凝集反应ELISA（酶联免疫吸附试验）。血清中和试验是检测PRV的一种标准试验方法，它需要48 h才能完成。乳胶凝集反应敏感性高、检测速度快，适合基层应用，但特异性差，较常用的还是ELISA检测方法，该法适宜于对大量血清的筛选，PRV gE蛋白ELISA抗体检测试剂盒能鉴别酶联免疫吸附试验已被用于区分接种疫苗后所产生抗体与自然感染后产生的抗体。如果猪gE抗体阳性，说明猪可能存在PRV野毒感染，有一点需要注意的是，3月龄内的猪gE抗体也可能来自母源抗体，然而该方法的特异性可能很低。

分子生物学检测方法在诊断该病上有明显的优势，常用的方法有PCR方法和荧光PCR检测方法，尤其是荧光PCR检测方法，敏感性高、特异性好，随着技术的不断发展，现在已经有适合基层猪场使用便携式的荧光定量PCR仪器设计出来，且有配套的试剂盒，一般是冻干保存的，使用时只需要加上水稀释和模板，就能进行相应的扩增反应。可检测隐性感染的母猪，采集母猪的脐带血进行病原检测，判断母猪是否带毒，从而为猪伪狂犬病疫情的监测、防控提供强有力的技术支持。对中公猪的精液一定要进行荧光PCR检测，一旦确诊为阳性，一定要弃用，否则可能导致全群猪被感染。对临床发病猪可采集猪的唾液进行检测，确诊后，可采取紧急接种疫苗及一些综合性防控措施，使该病可能导致的损失降到最低。如果是病死猪一般采集脑、扁桃体等病料，病料一定要新鲜，及时送达相关检测机构或用适合现地检测的荧光PCR仪器及配套的试剂盒进行检测。

6 防控措施

坚持自繁自养全进全出的饲养模式，尽量减少引种，引种时，严禁从疫区引种，必须隔离饲养半个月，并对引进的种猪进行抗原和抗体检测，一旦发现PRV阳性带毒猪，必须坚决淘汰。对公猪精液进行检查，PRV阴性者方可使用。分娩栏和病猪死后的栏用3%氢氧化钠消毒，哺乳母猪乳头用2%高锰酸钾水洗后，才允许吃初乳。猪场鼠类在伪狂犬病的流行和传播过程中起着非常重要的作用，猪场要开展防鼠灭鼠工作，可在猪舍外围铺设70 cm宽的石子路。猪场还要开展灭蚊、蝇工作，防止猫狗等进入猪场，同时猪场要远离牛、羊场。保持圈舍卫生，及时清除猪舍内粪尿，经常清洗食槽、水槽，猪1周消毒1次，消毒液可用3%氢氧化钠溶液或10%新鲜的石灰水消毒。

加强饲养管理，饲喂优质全价配合饲料，加强饲养管理，提高机体抵抗力。加强通风，猪舍保持干燥、卫生，提供适宜的温度和湿度，猪群饲养密度要合理，保证猪只有个舒适的环境。做好猪蓝耳病、猪圆环病毒病等免疫抑制病的防控。猪场严格限制车辆和外来人员进入，外出归场的工作人员，尤其是生产区的饲养人员和技术人员，需在办公区或生活区隔离2d。外来参观人员严禁进入生产区，确属必须，隔离2d后须再沐浴更衣后才能进入生产区。其鞋帽和工作服应经高压灭菌消毒，防止人为扩散病原，做好猪流、车流、人流和物流的管理，保证猪群只能单向流动，应在离猪场至少1km外，同时设置转运车和转运站，转猪和卖猪时人员应避免交叉，减少人为病原传播，装猪台与生产区的距离至少50m以上，严禁与日常办公区交叉。

对本病尚无特效治疗药物，猪伪狂犬病疫苗分为灭活疫苗和活疫苗，灭活疫苗免疫剂量大，且不能诱导细胞毒T细胞反应，不能控制处于潜伏期的PRV，在猪病的防控中起辅助作用，猪场主要用猪伪狂犬病基因缺失弱毒活疫苗防控。科学的免疫可以控制伪狂犬病的临床症状，减少阳性动物排毒量、缩短排毒时间、降低血清学阳性率，即使周边地区存在伪狂犬病感染场，通过努力也可最终成为gE阴性场。最终用生产的阴性后备猪逐步替代和淘汰阳性猪，达到PR净化的目的。在现有疫苗没有更新的情况下，提高免疫频次、缩短免疫间隔是控制该病的有效措施。一般采用种猪普免3～4次/年，仔猪1日龄滴鼻免疫，45～50日龄二免，80～90日龄三免的免疫程序。对有条件的猪场，最好检测猪群抗体水平，制定适合本场的免疫程序。免疫是采用正规厂家生产优质疫苗，对冻干疫苗一定要冷冻保存，稀释后要在2h内用完，肌肉注射时要注意注射器及注射部位的消毒，注射部位一般在猪耳后，一定要保证疫苗注射入肌肉，不要注入脂肪，否则会引起大的鼓包，猪群免疫时尽量做到一猪一针头，避免因注射疫苗，引起的猪交叉感染。

猪群发病后要及时采取隔离措施，淘汰病猪，全群紧急接种猪PRV活疫苗，2～4头份/头，控制疫情发展，猪舍每周消毒2次。全群饲喂电解质多维、维生素C、葡萄糖等提高机体抗病能力，同时饲喂抗生素，控制继发感染。对病死猪、流产胎儿和其它污染物要进行深埋或焚烧等无害化处理。

7 净化方案

猪伪狂犬病的净化是必然的趋势，但因PRV可感染多种哺乳动物，且能在猪三叉神经等部位潜伏，因此，净化工作存在一些难度。国外很多国家实现了该病的净化，说明猪伪狂犬病的净化是可以实现的，首先要做的就是保证猪场的生物安全，再就是加强猪只的饲养管理，防控免疫抑制病。

猪场要净化伪狂犬病必须要有gE基因缺失弱毒活疫苗及配套ELISA试剂盒检测gE抗体。净化时先要对猪群进行监测、采血、检测猪群gE抗体情况。PRV最重要的感染源是公猪，要净化伪狂犬病，对种公猪群全部进行gE抗体检测，条件允许的话，淘汰所有阳性公猪，引入阴性公猪。对母猪群进行抽检，所抽检样品全部为gE抗体阴性，则种猪群逐头检测。如所有血清样品均为阴性，可认为种猪群为伪狂犬病阴性，进入“监测阶段”（需监测是否有病毒存在以及是否有病毒循环传播）。如果抽检血清样品的gE抗体阳性率小于或等于10%时可以实行一次性净化，一般1年后可见效。而阳性率大于10%～30%时应实行分阶段净化，对全部种猪群按程序进行免疫，提升抗体的高度和长维持时间，可抑制野毒排毒，把野毒禁锢在神经细胞，减少或者不排病毒进入血液，不产生败血症，逐步使血液野毒抗体呈阴性，从而使所产仔猪野毒抗体呈现阴性，即阳性种猪也能产出阴性的后备猪，用阴性后备种猪逐步替换阳性种猪、降低带毒种猪数量，每年更新种猪30%～35%。每个季度抽样监控gE抗体阳性率，待阳性率下降到10%左右时，一次性淘汰所有阳性猪，3年后可见效。同时，在野毒净化方案执行后，仍需对猪群伪狂犬病gE抗体进行定期检测，一般可按季度进行检测，样本数为猪群数量的5%～10%，最终实现伪狂犬病阴性场。如果阳性率大于30%，则该猪群不具备净化条件。对拟选留的后备种猪，可分别在5月龄（或进入后备舍）和配种前1个月检测gE抗体，任何1次为gE抗体阳性或2次可疑，应淘汰处理。

完成“检测淘汰”阶段1年后，进入监测阶段，根据猪场实际情况，可先设立哨兵肥育猪，随后设立哨兵母猪。哨兵肥育猪的数量为每条生产线30头猪，均匀分散在不同的猪栏。1个月后全部检测，应该为野毒抗体阴性，哨兵母猪占净化群体母猪数量2%～3%，或最低为10头母猪，分别在配种前、妊娠后40～50 d、妊娠后80～90 d、分娩后2周检测野毒抗体，其后代于断奶时3～4周龄全部检测，均应该为野毒抗体阴性。公猪伪狂犬病野毒抗体阴性，疑似病例为伪狂犬病病原阴性，猪群生产成绩正常稳定，同时猪群仍执行伪狂犬病基因缺失疫苗免疫策略。如在“监测阶段”后1年内，猪群生产成绩正常，检测全群种猪，所有种猪野毒抗体均为阴性，即可认为是伪狂犬病阴性猪群，完成净化任务，即为“伪狂犬病净化”猪场。完成伪狂犬病净化后，就要取消伪狂犬病免疫预防措施，杜绝弱毒活疫苗在猪场环境中的存在，或者是仅使用基因缺失灭活疫苗。

8 小结

2011年以来，猪群PRV发生变异，毒力增强，猪群野毒抗体阳性率不断上升[17]，目前，针对伪狂犬病变异株的疫苗尚未研发出现，现有的疫苗依然有效，只要采取合适的方法仍然能很好的防控该病。因PRV具有持续感染、终身带毒的特点，所以，PR公认的控制措施是猪场净化，借鉴国外猪伪狂犬病净化的经验，利用现有的基因缺失疫苗配合相应的鉴别检测方法，通过疫苗免疫，做到阳性猪群最少排毒或不排毒，提高后备种猪对病毒感染的抵抗能力。根据猪群的抗体消长规律或病毒感染阶段来确定猪群的免疫程序，及时检出和淘汰野毒感染猪。结合生物安全措施，如猪群的全进全出，以及猪流、物流和人员的流动等，环境消毒一定落到实处，从而达到控制和根除伪狂犬病的目的。

[1] 殷震，刘景华.动物病毒学[M].第2版.北京：科学出版社，1997：998-1009.

[2] 于新友，李天芝，高鹏，等.猪伪狂犬病毒分子生物学检测方法研究进展[J].猪业科学，2016（1）：42-44.

[3] 陈树霞，蒋法成，蒋锁俊，等.猪伪狂犬病防控与净化[J].中国畜禽种业，2016（12）：119-120.

[4] 吴运谱.猪伪狂犬病的诊断与防治[J].现代畜牧兽医，2013（8）：31-34.

[5] 马沛，王和平.猪伪狂犬病的流行情况及净化对策[J].湖南畜牧兽医，2013（4）：23-25.

[6] 王长江，王琴，沙依兰古丽，等.动物疫病净化的基本要求和方法探讨[J].中国动物检疫，2013（8）：40-43.

[7] 廖飞，黄增荣，赵孝木，等.猪伪狂犬病的致病机制与防控措施[J].贵州畜牧兽医，2015，39（1）：20-23.

[8] 李相钊.猪场伪狂犬野毒净化实战方案[J].猪业科学，2017（4）：86-87.

[9] 陈叶，付新亮，粟硕，等.猪伪狂犬的防控策略和净化[J].广东饲料，2014，23（6）：46-48.

[10]朱连德，姚建聪，方树河，等.猪伪狂犬病及其控制[J].当代畜禽养殖业，2005（10）：58-60.

[11]潘余乐，Scott A.Dee.伪狂犬病概述[J].国外畜牧学（猪与禽），2015（8）：1-3.

[12]陶顺梅.猪伪狂犬病的研究进展[J].畜牧兽医科技信息，2011（3）：15-16.

[13]于桂阳，黄武光，黄杰河.规模化猪场猪伪狂犬病的控制与净化[J].中国猪业，2007（11）：31-33.

[14]何启盖，童光志，杨汉春，等.猪伪狂犬病流行病学特征、净化技术及其应用示范[J].中国畜牧杂志，2015（24）：68-74.

[15]万遂如.关于猪伪狂犬病的净化问题[J].养殖与饲料，2016（3）：1-4.

[16]方奎，陈基萍.育肥猪群猪伪狂犬病的防控[J].中国猪业，2016（8）：29-32.

[17]朱秀高，李艳青，叶晶，等.2015年北方部分省份规模化猪场伪狂犬病感染状况分析与建议[J].养猪，2016（3）：111-112.

二十八醇可用来解压助眠

【美国每日科学网站9月5日报道】每个人凭经验就知道压力肯定会影响睡眠。日本睡眠研究机构的科学家发现，甘蔗和其他天然产品中富含的活性成分或许可以改善压力状况并帮助睡眠。

当今不断变化的环境中，繁忙的工作和一些社会经济因素迫使人类失眠。缺觉会导致巨大的压力，而压力本身就是造成睡眠缺乏和难以入睡的主要因素之一。目前可用的安眠药并不会缓解压力，而且往往具有严重的副作用。睡眠缺失还同其他疾病有联系，包括肥胖、心血管疾病、抑郁、焦虑和躁狂症等。

日本筑波大学国际综合睡眠医学研究所的马赫什·考希克和裹出良博领导的研究团队发现，二十八醇会减少压力，并让受到压力影响的睡眠恢复正常。

甘蔗、米糠、麦胚油和蜂蜡等各种日常食物中包含丰富的二十八醇。初级提取物是甘蔗原素，其中二十八醇是主要成分。在人类当中，甘蔗原素和二十八醇已经被用于治疗其他各种疾病。

在目前的研究中，研究人员调查了二十八醇在睡眠管理方面的作用。他们通过口服给药将二十八醇用于受到轻微压力的小鼠。二十八醇降低了血浆中皮质脂酮的水平，皮质脂酮水平是一个压力标志。服用二十八醇的小鼠恢复了正常的睡眠。而之前由于压力，小鼠的睡眠受到干扰。因此，研究人员宣称，二十八醇会减轻小鼠的压力，并让小鼠受到压力影响的睡眠恢复正常。由二十八醇触发的睡眠同自然睡眠类似。不过，研究人员还说，二十八醇不会影响正常动物的睡眠。这些结果清楚地显示，二十八醇是一种有效成分，能够减少压力、增进睡眠。它或许还能用于治疗由压力引起的失眠。可以认为，二十八醇用于人类治疗是安全的，因为它是食物中包含的成分，并且据信没有副作用。

人类使用二十八醇/甘蔗原素补充剂来帮助脂类代谢、降低胆固醇水平或提供活力。然而，我们需要规划良好的临床研究来确认它在人类身上解压和助眠的作用。考希克说：“未来研究内容包括识别二十八醇影响的脑区，它的血脑屏障渗透性，以及二十八醇降压的机制。”

（转自 参考消息[N]，2017-09-09）

S858.285.3

A

1002-1957(2017)06-0124-05

2017-08-29

山东省现代农业产业技术体系生猪产业创新团队项目（SDAIT-08-17）

李天芝（1985-），女，山东菏泽人，助理研究员，硕士，主要从事动物传染病诊断及防控研究.E-mail:517493935@qq.com

（编辑：柳青）