我国NADC30-like毒株流行现状及猪繁殖与呼吸综合征防控策略再思考

郭振华

（河南省农业科学院动物免疫学重点实验室，河南郑州 450002）

我国NADC30-like毒株流行现状及猪繁殖与呼吸综合征防控策略再思考

郭振华

（河南省农业科学院动物免疫学重点实验室，河南郑州 450002）

猪繁殖与呼吸综合征病毒在我国流行已20余年，但其病原变异的复杂程度在进一步加大，流行程度也并未明显减弱，特别是2013年以来，NADC30-like毒株的出现导致了PRRS再次大范围的流行。需要特别注意的是，本次PRRS疫情的大范围流行是在高强度免疫弱毒疫苗的基础上发生的，这提醒有必要对PRRS的现行防控措施进行重新的梳理和反思。

猪繁殖与呼吸综合征病毒；NADC30-like；防控措施

猪繁殖与呼吸综合征（Porcine Reproductive and Respiratory Syndrom,PRRS）是危害世界养猪业的重要疫病，临床主要表现为妊娠母猪繁殖障碍和各年龄段猪的呼吸道疾病。据估计，PRRS每年给美国养猪业造成的经济损失约6.64亿美金。考虑到美国的年生猪出栏量仅有1.2亿头左右，PRRS对我国养猪业造成的经济损失可想而知。根据其病原猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRS Virus,PRRSV）基因组序列的遗传差异，可以分为欧洲型（genotype 1）和美洲型（genotype 2）。我国目前以美洲型毒株为主，但欧洲型毒株也偶有检出。

PRRSV一个显著的特点是基因组具有高度的变异性，且不同毒株间交叉保护性差，每一次新毒株的引入或者大的变异事件的发生都有可能引起PRRS新的暴发和流行。总体来说，我国PRRS流行经历了3波大的疫情。1995—2000年发生的以母猪流产为主要特征的PRRS疫情，当时称为“流产风暴”，代表性分离毒株为CH-1a，也是我国经典毒株的代表；2006年以来，高致病性变异毒株（HP-PRRSV）的出现导致各年龄段猪的高热、高发病率和高死亡率的PRRS疫情，代表性分离株为JXA1、HuN4等；2013年以来，北美新的输入性毒株NADC30-like毒株的出现，引起了PRRS在我国猪群中的再度大范围流行，代表性分离株有JL580、HENAN-HEB和CHsx1401等。

1 NADC30-like毒株的发现及流行

周峰等[1]首先报道了NADC30-like毒株在河南地区的流行，在常规的分子流行病学调查过程中，他们从2012年的临床样本中检测到了与美国流行毒株NADC30高度同源的新的流行毒株。NADC30株是美国2008年分离到的毒株，它与美国2001年分离的毒株MN184具有很高的同源性，并且其显著特点是Nsp2基因上存在不连续的131个（111 aa+1 aa+19 aa）氨基酸的特征性缺失。我国流行的NADC30-like毒株Nsp2基因也存在一致的缺失模式，并且与NADC30同源性较高，因此将我国新出现的这一类毒株称为NADC30-like毒株或者类NADC30毒株。

2013年以来，NADC30-like毒株在我国猪群中逐步流行开来，越来越多的省份报道了该毒株的流行，临床病例样本中检出率也越来越高。2014—2015年河南地区NADC30-like的临床检出率达到了50%左右[2]。目前NADC30-like毒株主要在我国东北、中东部和东南沿海地区流行，范围涉及十几个省市地区，但各地区的临床检出率差异较大。西部地区（包括西北和西南）尚未有本毒株的相关报道。

关于我国NADC30-like毒株的来源，目前比较一致的观点是由北美地区通过种猪贸易等输入我国，在我国猪群适应过程中，发生了广泛的变异，并且和我国本土流行毒株发生了广泛的基因重组。

2 NADC30-like毒株的变异及致病性差异

NADC30-like毒株除了具有高度的变异性外，和我国本土流行毒株易发生高频率的基因重组事件，也极大增加了NADC30-like毒株的遗传多样性。目前已有的研究显示，NADC30-like毒株和高致病性毒株、经典毒株以及各种弱毒疫苗毒株均可以发生基因重组。遗传的多样性也导致我国的NADC30-like毒株在致病力上不尽相同，总体上可以分为两类：一类表现为高致病性，致病力和我国流行的HP-PRRSV相当，如JL580、FJ1402等；一类表现为中等毒力，致病力介于经典毒株和高致病性毒株之间，如Chsx1401、HNjz15等。毒力的差异可能与基因重组具有一定的关系，JL580和FJ1402都是和我国的HP-PRRSV发生了基因重组，而Chsx1401则是和经典毒株VR-2332发生了基因重组。新的重组基因片段很大可能会赋予该毒株新的生物学特性，如致病力或者免疫原性的改变等。

3 PRRS防控的再思考

3.1 疫苗免疫

我国针对PRRSV的防控，过去和现在主要依赖于高强度的疫苗免疫。实践证明，这一策略并不成功，PRRSV在我国的流行并未减弱，临床流行毒株的遗传多样性在进一步加大，毒株遗传进化的速度也在进一步加快。特别是NADC30-like毒株的出现，NADC30-like毒株的扩散流行是在我国猪群高强度免疫疫苗的背景下发生的。临床PRRS发病的猪场大多都在执行常规的PRRSV疫苗免疫。与临床观察相一致的是，多篇研究报道也显示现有的弱毒疫苗针对当前流行的NADC30-like毒株，不能提供有效的保护[3,4]。

高强度的疫苗免疫还有一些其他方面的负面效果，表现在：1）弱毒疫苗免疫后可以在猪群中存在相当长的时间，并且可以在猪群中滚动传播，极大干扰了临床PRRS疫情的监测诊断；2）高强度的免疫压力为病毒的演变进化提供了驱动力，加速了这一进程；3）弱毒疫苗毒力返强会对猪群产生致病性；4）极大增加了流行毒株与弱毒疫苗毒株发生基因重组的概率。

因此，建议对疫苗的使用保持审慎的态度，做到科学适度，有条件的情况下应尽可能减少或者停止疫苗的免疫。一些养殖企业已经在做这方面的尝试，并且取得了不错的效果。一般来说，不建议对商品猪和公猪进行疫苗的免疫，特殊情况下可以短时间使用。

3.2 生产模式的调整

PRRS的出现，是养猪行业向现代化、规模化转型升级的过程中产生的，是伴随着养殖模式的转变而出现的。因此解决PRRS问题，还需要从养殖模式的革新上着手。已有的经验表明，多点式生产体系在控制、根除棘手的传染性疫病（如圆环病毒病、伪狂犬病、蓝耳病）时，具有很好的效果。简单来说，就是母猪生产场和商品猪生产场完全分开，仔猪断奶后转移到相距较远的区域进行专业化饲养。这种模式的缺点是对于猪场选址具有一定的要求、降低了土地利用效率、增加了运输和管理成本等。而对于一点式的猪场，各功能分区之间也应尽可能进行相对隔离，最好找专业的公司来进行猪场的建设。

3.3 全进全出与批次化生产管理

全进全出（All in All out,AIAO），即将日龄接近的猪群整批转入和整批转出的生产策略；批次化生产管理则是按照固定的时间间隔（通常以周为单位）来安排生产活动，也称为节律性生产。二者不仅可以极大地提高工作效率和生产效率，同时在疫病的防控方面也发挥着巨大的作用，可以有效阻断病原在不同批次的猪群之间滚动反复传播。养殖规模越大，越比较容易实现全进全出和批次化生产管理。主要是规模在300头以下的中小规模企业，比较难以实现，建议可以通过小单元生产或者调整为3周批或者4周批的生产来实现。

3.4 环境控制

环境控制可以说是我国生猪养殖产业最为薄弱的环节之一，特别是对于季节转换明显的地区。秋冬和冬春季节转换，是病原微生物（特别是PRRSV）相对活跃的阶段，温差带来的应激往往成为疫病的诱发因素，此外有害气体含量和湿度变化等也是重要因素。我国养殖企业在温度调节和通风换气方面的投入还远远滞后于养猪业发达的国家。因此，建议从温度、氧含量、湿度三方面着手来做环境调控的规划和投入，将三者的波动控制在合理的范围之内。好的微环境控制将极大改善疫病防控和提高生产效率。

3.5 生物安全

良好的生物安全体系对于猪场疫病的防控具有重要意义。生物安全的范畴较为广泛，在PRRSV防控中，重要的生物安全关键点有以下几方面：1）避免不同日龄阶段、不同免疫状态的猪群混群；2）建立严格的猪群转运体系，确保母猪和商品猪不进行接触；3）推行批次化生产，严格执行全进全出的生产流程；4）严格执行空舍消毒制度和程序，阻断批次间病原的连续传播；5）做好后备猪的引入工作，包括隔离检疫工作、本场病原驯化工作，有条件的应进行分胎次饲养，应确保入群的后备母猪PRRSV处于稳定的状态。

3.6 Lode,Close,Homogenise（LCH）策略实现PRRSV的稳定净化

LCH策略是实现PRRSV区域净化的有效策略，也是猪场实现PRRSV稳定的有效方法。其核心是通过一次性引入足量的后备猪群、通过采取闭群策略，使本场猪群中存在的PRRSV在一定的时间内自然消亡（或者处于稳定状态），然后再引入全阴性的后备猪（或者经驯化后处于PRRS稳定状态）。其关键点在于后备猪的驯化和健全的生物安全体系，其挑战在于通过LCH策略成功实现PRRSV净化或者稳定的猪群如何避免区域内外来PRRSV的再感染。关于后备猪的驯化，可以通过弱毒疫苗免疫或者直接接触本场的流行毒株来实现[5,6]。而预防外来毒株的感染，除了健全的生物安全体系外，构建区域性的PRRSV净化是一个很好的选择，这一尝试在美国中西部地区得到了有效的实施。即在一个区域内，通过政府、猪场、兽医的通力协作，共同实现PRRSV的净化根除，这通常需要猪场生产者的决心和支持，是一个很具有挑战性的项目，它比较适用于养殖水平比较一致的区域。如果一个区域内养殖水平差异较大，则很难保证整个项目可以按计划进行实施。

[1] 周峰,常洪涛,赵军,等.2012-2013年猪繁殖与呼吸综合征病毒河南流行株的分离鉴定及分子流行病学调查[J].中国兽医学报,2014,34(9):1398-1404.

[2] Wang LJ,Xie W,Chen XX,et al.Molecular epidemiology of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in Central China since 2014:The prevalence of NADC30-like PRRSVs[J].Microbial Pathogenesis,2017,109:20-28.

[3] Bai X,Wang Y,Xin X,et al.Commercial vaccines provide limited protection to NADC30-like PRRSV infection[J].Vaccine,2016,34(46):5540-5545.

[4] Zhou L,Yang B,Xu L,et al.Efficacy evaluation of three modified-live virus vaccines againsta strain ofporcine reproductive and respiratory syndrome virus NADC30-like[J].Veterinary Microbiology,2017,207:108-216.

[5] Rathkjen PH,Dall J.Control and eradication of porcine reproductive and respiratory syndrome virus type 2 using a modified-live type 2 vaccine in combination with a load,close,homogenise model:an area elimination study[J].Acta Veterinaria Scandinavica,2017,59(1):4.

[6] 孙龙,韩定角,伍少钦,等.血清驯化及疫苗驯化对猪场蓝耳病控制效果的对比[J].四川畜牧兽医,2017,44(5):30-33.

S852.65

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1673-4645(2017)11-0026-03