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猪IL-18增强猪细小病毒灭活疫苗猪体细胞免疫效果的研究

2016-09-26何潇湘王瑞宁曹贝贝耿静微陈红英魏战勇

河南农业大学学报 2016年2期
关键词:介素细小活疫苗

韩 丽,何潇湘,,王瑞宁,曹贝贝,耿静微,陈红英,,魏战勇,

(1. 河南农业大学牧医工程学院,河南 郑州 450002;2. 河南省动物性食品安全重点实验室,河南 郑州450002)

猪IL-18增强猪细小病毒灭活疫苗猪体细胞免疫效果的研究

韩 丽1,何潇湘1,2,王瑞宁2,曹贝贝1,耿静微2,陈红英1,2,魏战勇1,2

(1. 河南农业大学牧医工程学院,河南 郑州 450002;2. 河南省动物性食品安全重点实验室,河南 郑州450002)

为了研究猪白细胞介素18是否增强猪细小病毒(PPV)灭活疫苗在猪体免疫效果,分别将猪白细胞介素18与自制猪细小病毒灭活疫苗和猪细小病毒灭活疫苗联合免疫仔猪,并设猪白介素18和生理盐水对照组。免疫后分别用间接ELISA方法和流式细胞技术检测仔猪抗体水平变化和仔猪外周血T淋巴细胞亚群动态变化。结果显示,免疫后猪白细胞介素18联合灭活疫苗组抗体水平与无猪白介素18灭活疫苗组相似,但免疫后猪白介素18联合PPV灭活疫苗组的CD3+、CD3+CD4+、CD3+CD8+T淋巴细胞所占比值均高于相应的PPV灭活疫苗组,但差异不显著,且CD4+/CD8+在正常范围内。研究证实猪白介素18主要增强PPV油乳剂灭活疫苗的细胞免疫应答。

猪白细胞介素18;猪细小病毒;灭活疫苗

猪细小病毒病是由猪细小病毒(Porcine Parvovirus, PPV)感染引起的妊娠母猪繁殖障碍性疾病。该病毒主要导致初产母猪出现不孕、流产、产死胎、木乃伊胎及弱胎等临床症状。猪细小病毒病广泛存在并流行于世界各地养猪场,严重制约了养猪业的发展,给全球养猪业带来了巨大的经济损失。PPV的感染尚无有效的治疗方法,疫苗免疫预防仍是控制该病的主要手段。目前,PPV疫苗主要包括灭活疫苗、弱毒疫苗、基因工程亚单位疫苗、基因工程活病毒载体疫苗等,其中灭活疫苗具有安全性好、产生抗体时间长、不需要低温保存的优点;弱毒疫苗免疫效力较强、产生抗体快、用量少、成本低,但安全性较差;基因工程亚单位疫苗免疫源性较好,但成本和技术要求都比较高;基因工程活病毒载体疫苗可以同时预防两种病或多种病的、能够诱导较强的免疫反应,但生产技术复杂、 成本较高;基因疫苗生产工艺简单、免疫剂量小、成本低廉、可构建多基因或多价疫苗,但其安全性受到广泛关注[1-3]。目前使用最广泛的猪细小病毒病疫苗是灭活疫苗。灭活疫苗具有安全性好、保护力持久等优点,但也存在免疫应激强、有效免疫抗体产生慢、引起细胞免疫弱甚至无法引起细胞免疫等诸多问题。因此,开发一种安全、高效的灭活疫苗免疫增强剂对猪细小病毒病的防制至关重要。猪白细胞介素18(Interleukin-18,IL-18)是在一种具有多种生物学活性的蛋白质[4]。它既能增强抗原的免疫原性,又能作用于体内免疫细胞,促进其分化、增殖,具有较好的疫苗免疫佐剂效应,在提高免疫应答水平方面发挥着重要作用,是一种重要的细胞免疫调节因子。IL-18能使HBV核酸疫苗诱导的免疫反应向Thl型为主的细胞免疫反应转变,并增强特异性的CTL反应[5]。故可以用IL-18联合PPV灭活疫苗来增强猪体的细胞免疫,从而弥补灭活疫苗的不足。由于IL-18可通过对IFN-γ的诱导作用,促进MHC I类分子的表达,因此可作为免疫佐剂增强疫苗的免疫效果[6]。本实验通过PPV特异性IgG抗体、猪外周血CD3+、CD3+CD4+、CD3+CD8+T淋巴细胞亚群百分数指标的检测,研究了其对猪体免疫效果的影响,为新型免疫增强剂的开发提供了理论基础和试验依据。

1 材料与方法

1.1试剂及仪器

猪细小病毒ELISA诊断试剂盒(PPV ELISA KIT 96T,NC27606 USA)购自BioXL公司;Multiskan MK3型酶标仪购自Therm公司);FACsort流式细胞仪(Becton Dickinson,USA);大鼠抗小鼠CD3+、CD4+和CD8+T细胞亚群单克隆抗体以及异硫氰酸荧光素(FITC)标记兔抗大鼠IgG抗体购自北京邦定泰克生物技术有限公司。

1.2疫苗

猪细小病毒油乳剂灭活疫苗购自中牧实业股份有限公司(批号1009006-2);自制猪细小病毒油乳剂灭活疫苗,灭活病毒的血凝(HA)效价为1∶29。

1.3猪白细胞介素18

由河南省动物性食品安全重点实验室构建的重组质粒pcDNA-IL18,已经被证实具有一定的生物学活性[7]。经试验测定,猪白细胞介素18免疫仔猪的最佳免疫剂量为2 mL·头-1。

1.4安全性检验

1.4.1 小鼠的安全性检验 取10 d SPF健康昆明乳鼠15只,分3组,每组5只。将自制猪细小病毒油乳剂灭活疫苗和猪白介素18分别皮下接种每组小鼠,每只0.1 mL,另外1组设不接种对照组。观察2周,看是否出现不良反应;如无异常则证明该疫苗和白介素18对乳鼠安全。

1.4.2 仔猪的安全性检验 取PPV阴性健康仔猪9头,分3组,每组3头。将自制猪细小病毒油乳剂灭活疫苗及猪白细胞介素18分别肌肉注射每组仔猪,每头接种10 mL,另外1组设不接种对照组。观察2周,看是否出现不良反应。如无异常则证明该疫苗和白介素18对仔猪安全。

1.5试验动物及免疫

试验所用30头35日龄断奶仔猪(由郑州市某猪场提供)随机分为6组,每组5头,经ELISA检测,PPV抗体阴性。试验分组及免疫情况见表1。

1.6特异性抗体水平测定

应用间接ELISA方法,按照猪细小病毒ELISA诊断试剂盒(BioXL)说明书用试剂盒检测仔猪血清中PPV特异性IgG抗体。

1.7外周血T淋巴细胞亚群测定

免疫后0、1、2、3、4周,每组分别随机挑选2头仔猪,前腔静脉采血2 mL于含柠檬酸钠抗凝剂的采血管中,分离淋巴细胞并计数,用无菌PBS溶液将细胞浓度调至5.0×106个·mL-1。用流式细胞仪检测分别检测其CD3+、CD3+CD4+、CD3+CD8+T淋巴细胞亚群含量。

表1 试验分组及免疫情况Table 1 Grouping and vaccination of tested pigs

2 结果与分析

2.1安全性检验结果

2.1.1 小鼠安全性检验 接种小鼠观察2周,小鼠精神食欲正常,无不良反应,注射部位没有出现红肿,瘙痒,破溃等局部反应。

2.1.2 仔猪安全性检验 接种健康仔猪观察2周,猪群体温正常、采食、精神正常,注射部位未发现肿块,无不良反应。证明该自制疫苗和白细胞介素18对仔猪安全。

2.2特异性抗体水平测定

采用PPV诊断试剂盒分别对每周采集分离的血清进行PPV特异性IgG抗体水平的检测,对各试

验组所测数据进行统计学分析,得到猪细小病毒IgG抗体消长的规律(图1)。从图1可以看出,免疫后各疫苗组IgG抗体水平均逐渐上升,并在第4周达到峰值,猪白细胞介素18组及生理盐水组抗体水平无显著变化。免疫后第3~5周,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的抗体效价高于相应的灭活疫苗免疫组,但差异不显著。灭活疫苗免疫组的抗体水平与生理盐水对照组差异显著(P<0.05),猪白细胞介素18对照组与生理盐水对照组差异不显著。

疫苗接种后时间/周Time after vaccination

2.3外周血T淋巴细胞亚群动态变化

2.3.1 免疫仔猪外周血CD3+T淋巴细胞动态变化 免疫后各组CD3+T淋巴细胞百分比值均出现了动态的变化(如图2-A)。从图2-A可见,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗的CD3+T淋巴细胞的所占比值高于相应的无猪白细胞介素18 PPV灭活疫苗组,但差异不显著(P>0.05)。在免疫后第3~4周,各免疫组与生理盐水对照组差异显著(P<0.01)。

疫苗接种后时间/周Time after vaccination

2.3.2 免疫仔猪外周血CD3+CD4+T淋巴细胞动态变化 免疫后各组CD3+T淋巴细胞百分比值均出现了动态的变化(如图2-B)。从图2-B可见,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的CD3+CD4+T淋巴细胞所占比值高于相应的无猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组,猪白细胞介素18对照组高于生理盐水对照组,但差异均不显著(P>0.05)。

2.3.3 免疫仔猪外周血CD3+CD8+T淋巴细胞动态变化 免疫后各组CD3+T淋巴细胞百分比值均出现了动态的变化(如图2-C)。从图2-C可见,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的CD3+CD8+T淋巴细胞所占比值高于相应的无白细胞介素18 PPV灭活疫苗组,猪白细胞介素18对照组高于生理盐水对照组,但差异均不显著(P>0.05)。

2.3.4 免疫仔猪外周血CD4+/CD8+淋巴细胞动态变化 CD4+/CD8+的正常比值范围为1.0~2.87,过高或过低都反映机体免疫功能紊乱。从图3可见,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的(CD4+/CD8+T淋巴细胞比值)均趋于正常范围,说明没有对机体免疫功能造成坏的影响。

疫苗接种后时间/周Time after vaccination

3 讨论

IL-18能诱导淋巴细胞产生IFN-γ[8],IFN-γ是IL-18诱导抗病毒免疫的介导因子[9]。IL-18可通过诱导CD4+、CD8+T淋巴细胞而明显提高细胞免疫和体液免疫功能,从而有效地发挥IL-18的免疫佐剂作用。而且,IL-18能够促进Th1类细胞因子的表达,促进机体诱导特异性Th1细胞和CTL细胞反应,增强机体的特异性细胞免疫功能[5]。IL-18还能显著提高T淋巴细胞的转化率,提高机体的细胞免疫水平。IL-18的早期应用还能起到防御病毒入侵和保护心肌的作用[10]。因此,本试验就通过用猪白介素18作为免疫增强剂来增强猪细小病毒灭火疫苗在猪体的细胞免疫功能。

间接ELISA方法检测免疫后仔猪血清PPV抗体动态变化,结果显示猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组抗体效价均高于相应的灭活疫苗单独免疫组,并呈持续增长趋势,在第3、4周抗体效价显著增高(P<0.05)。猪白细胞介素18单独免疫组的抗体效价在免疫后第4-6周上升比生理盐水对照组高。结果表明,猪白细胞介素18能够增强PPV灭活疫苗的体液免疫应答强度。

T淋巴细胞亚群是构成机体免疫系统的重要成分。CD3分子是存在于所有成熟T淋巴细胞膜表面的重要分化抗原,是成熟T细胞的特征性标志,其主要功能是传递T细胞活化信号[11-12]。CD4+T淋巴细胞是免疫系统的主要调节细胞,能分泌多种细胞因子,具有诱导和增强免疫应答的作用[13-14]。CD3+、CD4+淋巴细胞亚群激活后可增殖分化为Th1和Th2 效应细胞,并通过表达不同的细胞因子介导各自的免疫功能[13-15]。本研究利用流式细胞技术检测免疫后各组仔猪脾脏T淋巴细胞亚群的动态变化,评价猪白细胞介素18对PPV灭活疫苗的细胞免疫水平的影响。结果显示,猪白细胞介素18 联合PPV灭活疫苗组的CD3+、CD3+CD4+、CD3+CD8+T淋巴细胞所占比值均高于相应的PPV灭活疫苗免疫组。免疫后21~28d,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗试验组的CD4+T淋巴细胞数与相应的灭活疫苗单独免疫组差异显著(P<0.05)。免疫后第21天,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的CD8+T淋巴细胞所占比值比相应的灭活疫苗单独免疫组高,且差异显著(P<0.05)。从本研究的CD4+、CD8+T淋巴细胞比值变化情况看,CD4+T淋巴细胞在猪白细胞介素18增强细胞免疫应答中发挥着重要作用,表明猪白细胞介素18佐剂主要通过CD4+T淋巴细胞介导作用增强仔猪的细胞免疫应答。各免疫组免疫仔猪后,猪白细胞介素18联合PPV灭活疫苗组的CD4+、CD8+T淋巴细胞比值比相应的灭活疫苗单独免疫组高。研究结果表明,白细胞介素18能够提高PPV油乳剂灭活疫苗的体液免疫水平细胞,同时还能增强PPV油乳剂灭活疫苗的细胞免疫应答强度,证明猪白细胞介素18能够被用作PPV油乳剂灭活疫苗的免疫增强剂。

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(责任编辑:蒋国良)

Enhancingimmuneresponsestoinactivatedporcineparvovirusoilemulsionvaccinebyco-inoculatingporcineinterleukin18inporcine

HAN Li1, HE Xiaoxiang1,2, WANG Ruining2, CAO Beibei1, GENG Jingwei2, CHEN Hongying1,2, WEI Zhanyong1,2

(1. College of Animal Husbaudry and Veterinary Science, Henan Agricultural University, Zhengzhou 450002,China; 2. Key Laboratory for Animal-derived Food Safety of Henan Province, Zhengzhou 450002, China)

The objective of this study is to characterize the enhancing immune responses to inactivated porcine parvovirus(PPV) oil emulsion vaccine by co-inoculating porcine interleukin 18 (IL-18) in porcine. In this study, the immunogenicity of PPV vaccine and the immuno-regulatory activities of IL-18 were investigated. The inactivated PPV vaccines with or without IL-18 were inoculated into piglet by subcutaneous injection. Then humoral and cellular immune responses were evaluated by indirect enzyme-linked immunosorbent assays(ELISA) and fluorescence-activated cell sorter analyses (FACS). The results demonstrated that after immunity, the swine IL-18 joint inactivated vaccine group antibody levels were similar to inactivated vaccine without IL-18, and the T lymphocyte ratio of swine IL-18 joint PPV inactivated vaccine group CD3+,CD3+CD4+,CD3+CD8+were higher than PPV inactivated vaccine group,but the difference was not significant. In conclusion, these results suggest that IL-18 possess better cellular immune-enhancing capability and can be exploited into an effective immune-adjuvant for inactivated vaccines.

porcine interleukin 18; porcine parvovirus; inactivated vaccine

S852.4

:A

2015-12-12

河南省重大科技攻关项目(132102110034);河南省科技开放合作项目(142106000042)

韩 丽(1989-),女,河南南阳人,硕士研究生,主要从事动物分子病毒学研究。

魏战勇(1975-),男,河南安阳人,教授,硕士生导师。

1000-2340(2016)02-0224-05

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