补饲日粮不同精粗比对妊娠后期藏母羊生产性能及血清指标的影响

2016-01-10崔晓鹏侯生珍王志有马辽伟

饲料工业 2016年13期

■崔晓鹏侯生珍王志有马辽伟

(青海大学农牧学院，青海西宁810016)

饲粮营养平衡是反刍动物生产的基础，饲粮中精饲料比例不适宜或粗饲料使用不适当均会导致反刍动物瘤胃健康受损、营养物质消化率降低及生产性能的下降，甚至会影响反刍动物繁殖性能的发挥。因此，适宜的精粗比是科学饲养反刍动物的基础，粗饲料的合理使用及其与精饲料的合理配比对提高动物生产性能具有非常重要的意义[1]。藏羊是青藏高原数量最多的牲畜，其分布范围广，构成了青藏高原养羊业的主体，也是我国养羊业的重要组成部分。青海省藏羊在各类家畜中所占比重最大，约占绵羊总数的80%以上[2]。前人研究表明，妊娠期的藏羊正好处于冬季放牧期，此时藏羊需要合理的营养物质用于维持日常需要及生产需要。但是，冬季牧草干枯，营养价值降低，致使妊娠期的藏羊无法获得足够的营养[3]，尤其是妊娠后期随胎儿增长和乳腺细胞发育，需要更多的营养物质供给，当地牧民群众为了满足妊娠后期母羊营养需求，习惯于补饲燕麦青干草，燕麦青干草的营养价值比成熟的作物秸秆和其他禾本科青干草都高，其中含有较多的蛋白质、矿物质和维生素，而粗纤维的含量却较低，是营养元素较平衡的粗饲料[4-6]。由于燕麦青干草加工、贮藏、饲喂方式不当，造成藏羊采食过程中产生大量的浪费，降低了养殖效益，因此，在自然放牧的基础上对妊娠期的藏羊进行合理的补饲，并且探索合理精粗比的妊娠后期母羊补饲混合饲料配方（精料补充料+燕麦青干草）是非常必要的，也是实际生产中藏羊养殖的关键技术。本试验结合青海省科技厅支撑项目“藏羊系列全价营养补饲料开发及示范推广”，旨在从青海省养殖现状及饲草料资源的现状出发，研究不同精料添加量对妊娠后期藏母羊生产性能及血清指标的影响，为高寒牧区妊娠后期藏母羊生产过程中选择适宜精料添加量的补饲混合饲料进行补饲提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 试验时间与地点

本试验于2014年12月至2015年1月在刚察县试验牧场进行。

1.2 试验藏母羊选择与分组

选择900只体重、胎次和配种时间接近的妊娠后期105 d的藏母羊，随机分为3组，并进行耳标编号，每组试验母羊300只。其中试验Ⅰ组日粮精粗比为4∶6，试验Ⅱ组日粮精粗比为5∶5，试验Ⅲ组日粮精粗比为6∶4。

1.3 燕麦青干草

试验燕麦青干草购于青海省刚察，营养成分测定在西北高原生物研究所，各营养成分含量（以干物质为基础），粗纤维为32.6%如图1所示。

图1 燕麦青干草营养成分

1.4 试验设计与日粮组成

1.4.1 试验设计

试验采用单因素完全随机区组设计，研究三种不同精料添加水平对育肥藏羊生产性能的影响。设Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ三个处理组，各试验组互为对照，试验设计方案见表1。

1.4.2 补饲日粮设计

以藏羊营养需要量的相关研究和生产中的应用为依据，并结合当地饲料资源，进行精料补充料和试验日粮配方的设计，其组成与营养水平见表2和表3。

表1 试验设计

表2 妊娠后期母羊补饲精料补充料组成及营养水平（以干物质为基础）

表3 妊娠后期母羊补饲日粮组成及营养水平

1.5 藏羔羊饲养管理及防疫措施

藏母羊妊娠前期天然草场放牧，妊娠后期45 d开始每天上午9：30放牧饲养，下午16：30归牧后分别按各组的试验要求，补饲精粗比不同的混合日粮各0.15 kg（混合料由精料营养补充料和燕麦青干草组成）。所有试验藏系母羊饲养在同类矮嵩草草场上，日饮水2次，早晚各1次，所有试验羊夜间暖棚管理。试验母羊在产前30日龄肌肉注射“羊四联”药物（1 ml/只）。

1.6 血样采集

血液采集当天，早上饲喂前，由颈静脉采血，将藏羊侧卧绑定，采血部位剪毛，用75%酒精消毒，用手指压迫颈静脉，待血管怒张后刺入一次性采血器采血约5 ml。血液采集后，管口向上，垂直放置。避免振荡而造成的溶血。在室温条件下放置30～60 min，待析出血清，3 500 r/min离心15 min，收集血清，于低温-20℃冷冻，待测。

1.7 测定项目与方法

1.7.1 母羊生产性能

随机选择60只母羊，测定母羊配种前体重、分娩后体重、母羊的产羔率、羔羊的初生重、羔羊成活率。

1.7.2 血清指标

总蛋白TP、白蛋白（ALB）、血糖（GLU）、甘油三酯（TG）、总胆固醇（CHO）。

1.8 数据处理

试验数据用 Excel 2003初步整理后，利用SAS 9.1统计软件进行单因素方差分析和显著性检验，多重比较采用one-way ANOVA中的Duncan's法，试验结果以“平均值±标准差”表示。P＜0.05和P＜0.01分别表示差异显著和极显著。

2 试验结果与分析

2.1 补饲日粮不同精粗比对妊娠期母羊生产性能的影响(见表4)

表4 补饲日粮不同精粗比对母羊生产性能的影响

由表4可以看出，随着精粗比例的提高，母羊分娩后失重越小，其中，试验Ⅲ组分娩体重为增重；羔羊初生重Ⅰ组分别与Ⅱ组、Ⅲ组有极显著差异（P＜0.01），Ⅱ组和Ⅲ组间差异不显著（P＞0.05），其中试验Ⅲ组母羊的产羔率和羔羊的羔羊初生重是最高的；三组试验对羔羊成活率无显著影响（P＞0.05），都为100%。

2.2 补饲日粮不同精粗比对母羊血清指标的影响（见表5）

由表5可以看出，随着精粗比的提高，总蛋白（TP）、白蛋白（ALB）、甘油三酯（TG）、总胆固醇（CHO）都出现先上升后下降的趋势，Ⅱ组含量都较Ⅰ组和Ⅲ组高，但差异不显著（P＞0.05），只有血糖（GLU）含量Ⅰ组＜Ⅱ组＜Ⅲ组，且Ⅰ组和Ⅲ组差异显著（P＜0.05），Ⅰ组、Ⅲ组和Ⅱ组相比，差异都不显著（P＞0.05）。

表5 补饲日粮不同精粗比对母羊血清指标的影响

2.3 补饲日粮不同精粗比对妊娠后期母羊养殖效益的影响(见表6)

由表6可以看出，随着精料的增加，粗饲料的减少，饲料单价和饲料成本都逐渐升高，分别为Ⅰ组＜Ⅱ组＜Ⅲ组。初生羔羊增重效益为Ⅱ组＜Ⅰ组＜Ⅲ组，以Ⅱ组最好。

表6 不同饲养方式对妊娠后期母羊养殖效益的影响(只)

3 讨论

3.1 补饲日粮不同精粗比对妊娠期母羊生产性能的影响

冬季放牧期的藏羊处于妊娠阶段，期间怀孕藏羊需要大量的营养物质来维持自身的营养代谢和羔羊的生长发育，因此这一阶段补饲日粮的精粗比水平对藏母羊及其羔羊影响较大。本试验中母羊分娩后的体重、羔羊初生重随精料水平的升高而升高，且差异显著，这与前人的研究结果一致[7-11]，可能与日粮高比例的精粗料提高了母羊干物质采食量，改善了羔羊胎儿期的营养状况有关；而本试验条件下母羊产前和产后体重差异显著（P＜0.05），而失重差异不显著可能是因为精、粗饲料的种类和比例不同所导致的；本试验还发现随着精粗比例的升高，母羊分娩后的失重随之减少，这与前人研究的结果基本一致[3，10，12-14]，试验Ⅲ组呈现增重的趋势，这可能与瘤胃产甲烷能的下降[15-17]、总消化能的升高有关[18-19]；同时，Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组的初生羔羊重随精料水平的升高而升高，Ⅱ组和Ⅲ组差异不显著（P＞0.05），都极显著的高于Ⅰ组（P＜0.01），这可能与不同补饲水平促进了羔羊器官的生长发育，这与高峰等[20-22]的研究基本一致；本试验补饲后产羔率随精料水平的升高呈上升趋势，Ⅱ组=Ⅲ组，为5%，都极显著的高于Ⅰ组（P＜0.01），这可能是在整个受精过程中，精子需要消耗大量的能量，高精料水平的日粮促进了精子获能，进而完成顶体反应和受精过程，使精子和卵子结合为合子，提高了受精率[23-24]；本试验条件下三个处理组羔羊的成活率都较好，这与李芳芳（2012）的研究一致[10]，表明母羊经过长期的选育，已基本适应了外界的营养调控，具有较强的抗逆性[25-26]。

3.2 补饲日粮不同精粗比对母羊血清生化指标的影响

血清总蛋白质可分为白蛋白和球蛋白两类，具有维持血管内正常胶体渗透压和酸碱度的作用，参与物质代谢，并与机体的免疫功能有着密切的关系。本试验研究发现，随着补饲日粮中精粗比例的提高，血清中总蛋白和白蛋白的含量没有显著差异，这与Ghasemi H A等[27]和杨彬彬等（2012）[28]的研究得到了相似的结果，但Ⅰ组＜Ⅱ组＜Ⅲ组，这可能与日粮中蛋白水平的增加有关，Ghasemi H A等研究发现，向颗粒精料中添加40%的紫花苜蓿干草可以改善幼年鸵鸟的生长状况，但紫花苜蓿干草不同添加量对血清中总蛋白、白蛋白含量没有显著影响。这与本试验的研究结果一致。

血糖是指血液中的葡萄糖，其含量的变化能够反映机体对糖的吸收、转运和代谢动态平衡状态，也是评价反刍动物能量代谢的重要生化指标。本试验结果表明，随着日粮精粗比的提高，精料采食量增加，从而增加了可发酵淀粉的摄入量，血糖浓度逐渐增加，且Ⅰ组和Ⅲ组有显著差异，分别和Ⅱ组没有显著差异，这与前人研究的结果一致[29-32]。

甘油三酯和胆固醇是血脂的重要组成成分，是生命细胞的基础代谢必需物质。甘油三酯（TG）主要是参与体内的能量代谢；胆固醇（CHO）则是细胞膜和胆汁酸的主要组成成分，并参与类固醇激素的合成。本试验发现，血浆甘油三酯和总胆固醇的浓度都没有显著变化，但Ⅰ组＜Ⅲ组＜Ⅱ组，但都使瘤胃的代谢和自我调控保持在正常的变化范围内。这与贾玉东[33]的研究日粮精粗比对奶牛瘤胃厌氧细菌和挥发性脂肪酸及血液指标的影响，随精料水平的逐渐提高，血清TG浓度逐渐上升，但CHO浓度先上升再下降，但精粗比40∶60、45∶55、50∶50、50∶45、60∶40、70∶30、100∶0日粮组差异不显著（P＞0.05），结果一致；夏中生等研究发现，精粗比3.5∶6.5、5∶5后备杂交母水牛日粮组血清总胆固醇浓度较0∶10日粮组分别显著提高37.40%、41.46%（P＜0.05）[34]，产生这一差异可能因试验条件和试验动物的不同。