年龄及单眼形觉剥夺对大鼠视皮层AMPA受体GluR2/3表达的影响
2015-05-23贾佳赵堪兴
贾佳,赵堪兴
(1天津市第五中心医院,天津300450;2天津市眼科医院)
α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异噁唑丙酸(AMPA)受体是离子型谷氨酸受体中重要的亚型,在中枢神经系统(CNS)内主要介导快速的兴奋性突触传递,在长时程增强(LTP)、长时程抑制(LTD)和学习记忆等方面均具有重要作用[1]。研究认为,无AMPA受体表达的沉默突触激活转化为表达AMPA受体的功能性突触是LTP形成的重要机制[2,3]。AMPA受体的表达随视觉发育的不同时期而发生变化,早期异常视觉经验亦影响AMPA受体的表达,但不同的干预措施对于AMPA受体表达的影响也存在差异。本研究于2008年10月~2009年1月观察大鼠从出生后7 d到视觉发育关键期结束(45 d)视皮层Ⅱ/Ⅲ层AMPA受体GluR2/3的表达变化以及单眼形觉剥夺(MD)对大鼠视皮层GluR2/3表达的影响,探讨AMPA受体在视觉可塑性中的可能作用机制。
1 材料与方法
1.1 动物分组及模型建立 40只健康新生(产后4~5 d)Wistar大鼠,雌雄不限,平均体质量9.4 g,均在自然光线环境下饲养。大鼠随机分为对照组25只、MD组15只。MD组大鼠于生后14 d,固定,点表麻药,剪除右眼睑缘周围毛发,碘伏消毒上下眼睑局部皮肤,距上下睑缘各1.0 mm处剪去皮肤和睑板组织,用6-0丝线间断缝合上下眼睑约3~4针。术后1周内每天涂抗生素眼膏,检查创口情况,避免感染及缝线脱落。约1周创口愈合,上下眼睑粘连,MD模型建立成功。
1.2 动物脑组织取材 实验大鼠称重后用10%的水合氯醛(0.3 mL/100 g)腹腔注射,麻醉满意后,仰卧固定四肢,剪开胸腔将胸壁抬起,暴露心脏及升主动脉,将灌注针头由心尖部导入升主动脉,固定,在右心耳处剪一小洞,先用0.01 mol/L的PBS灌洗至溢出液变清,然后用4%多聚甲醛(1 mL/g)全身灌注固定(前2/3体积快灌、后1/3体积慢灌)。打开颅骨,切取大鼠脑组织,放入4%多聚甲醛溶液,4℃冰箱固定过夜,转移至30%蔗糖溶液中脱水,4℃至沉底,再重复脱水1次。对照组分别于生后7、14、21、28、45 d,MD组缝合右眼后继续饲养至出生后21、28、45 d,各取5只多聚甲醛全身灌注后切取脑组织固定、脱水。
1.3 视皮层GluR2/3表达检测 将脱水后的组织块根据《大鼠脑立体定位图谱》切取正常大鼠视皮质部分,OCT包埋,固定于-20℃恒冷箱,冷冻切片机切片,片厚12 μm,每只大鼠视皮层切片5张。如不能立即进行染色,切片置于-20℃冰箱中存放。采用荧光免疫组化染色法,严格按照试剂盒说明书操作,阴性对照用PBS代替一抗。采用Nikon TE2000-U倒置荧光显微镜下观察,用Olympus显微摄像系统采集图片。显微镜为200倍时将亮度调节定位于初级视皮层Ⅱ/Ⅲ层,在相同放大倍数及相同光强度条件下采集图像。用Image-proplus 6.0专业图像分析软件,记录视皮层17区Ⅱ/Ⅲ层GluR2/3的阳性细胞(手工计数)、阳性面积(area)和累积吸光度值(IOD),计算平均吸光度(AOD)值=IOD/area。
1.4 统计学方法 采用SPSS16.0统计软件。计量资料以±s表示,比较采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
镜下观察可见,GluR2/3阳性反应物呈绿色荧光,在大鼠皮层组织广泛分布。视皮层17区各层可见不同密度的阳性细胞分布,Ⅰ层几乎未见明显阳性细胞,Ⅱ/Ⅲ层分布较密集,Ⅳ、Ⅴ及Ⅵ层中等密度。阳性部位主要位于细胞膜及部分胞质。两组大鼠出生后 7、14、21、28、45 d 视皮层Ⅱ/Ⅲ层内GluR2/3表达水平比较见表1。对照组大鼠视皮层Ⅱ/Ⅲ层GluR2/3阳性细胞数、AOD值14 d最小,与7 d比较差异无统计学意义(P均>0.05),与21、28、45 d比较差异有统计学意义(P均<0.05),14~45 d阳性细胞数、AOD值逐渐增加。MD组21、28、45 d阳性细胞数及AOD值呈递增趋势,但与对照组比较均明显下降(P均<0.05)。
表1 两组大鼠不同时间视皮层Ⅱ/Ⅲ层GluR2/3表达水平比较(±s)
表1 两组大鼠不同时间视皮层Ⅱ/Ⅲ层GluR2/3表达水平比较(±s)
注:与同组14 d比较,#P<0.05;与对照组同时点比较,*P<0.05。
组别 n阳性细胞数(个/视野)7 d 14 d 21 d 28 d 45 d对照组 5 143.13±9.53 135.20±9.47 150.40±8.19# 154.40±10.23# 164.93±9.14#MD组 5 - - 140.13±11.06* 141.27±8.70* 145.13±8.47*组别 n 阳性细胞AOD值7 d 14 d 21 d 28 d 45 d对照组 5 0.054 5±0.010 7 0.065 5±0.011 8 0.084 8±0.011 4# 0.096 7±0.014 7# 0.105 1±0.015 2#MD组 5 - - 0.065 6±0.012 0* 0.081 3±0.011 1* 0.089 3±0.013 7*
3 讨论
Rumpel等[4]发现,大鼠生后发育早期视皮层内存在一定比例的沉默突触,但只含有功能性N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)受体,未检测到AMPA受体反应。随着发育,AMPA受体逐渐插入突触内,导致沉默突触转变为功能性突触。相对于NMDA受体的稳定,突触后膜上的AMPA受体的状态和数目高度可变[1],这种动态变化对于调节突触传递效能具有十分重要的作用,而传递效能的变化是突触可塑性的主要表现,因此AMPA受体在介导突触可塑性方面具有重要作用。Gordon等[5]观察猫视皮层及海马神经元AMPA受体的表达,在生后7~42 d二者AMPA受体的表达均逐渐增高,从42 d至成熟期表达下降,但不明显。Smith等[6]研究表明,雪貂生后视皮层GluR1含量较低,在生后2周急剧增加,2~3周达最高值,然后逐渐降至成年水平。王昌鹏等[7]研究发现,GluR2阳性神经元数量在大鼠生后5周时达顶峰,随后保持稳定水平;GluR2免疫反应的AOD值也随发育逐渐增加,生后6周时达顶峰,随后保持稳定水平。王昌鹏等[8]采用脑片膜片钳全细胞记录技术记录生后3~8周正常大鼠视皮层AMPA受体介导的兴奋性突触后电流,生后3~6周AMPA受体电流的幅值随发育时间逐渐增加,6~8周幅值变化不显著。由此推测,突触后AMPA受体的功能变化可能参与了视觉发育可塑性关键期的终止过程,包含GluR2亚基的AMPA受体可能代表一种成熟的兴奋性突触后受体,在视觉发育可塑性关键期终止前插入未成熟突触内,促进突触稳定,关键期终止后到成年阶段,维持突触结构稳定并介导稳定的兴奋性突触传递。本研究发现,生后7 d至关键期结束大鼠阳性细胞数、AOD值随年龄增长呈现逐渐增高的趋势。随着年龄增长,视觉通路各级神经元及神经纤维逐渐发育,神经元间的联系逐渐增强,神经纤维对视觉刺激的反应逐渐同步,突触递质的释放逐步集中,GluR2/3的表达也逐步增加,直至视觉发育关键期末,视觉神经系统已基本发育成熟,突触联系已基本建立,并且达到一种相对稳定的状态。
AMPA受体的表达受早期视觉经验的影响,但不同的干预措施对于AMPA受体表达的影响也存在差异。Rossner等[9]观察正常幼年大鼠视皮层AMPA受体亚单位的mRNA表达,发现GluR1低于成年水平,而GluR2~GluR4均高于成年水平,单眼剥夺对GluR4无影响,而GluR1~GluR3均有不同程度下降。Kumar等[10]采用放射性自显影方法定量观察大鼠视皮层AMPA结合位点,发现其从出生至生后20 d表达增加,而单眼剥夺引起视皮层Ⅱ~Ⅵ层AMPA受体表达减少。Wrong-Riley等[11]研究证实,初级视皮层Ⅱ/Ⅲ和Ⅵ层GluR2的表达受视觉输入及神经元活性影响,单眼输入阻滞可引起剥夺眼优势柱及GluR2的下调。孙晓楠等[12]研究表明,敏感期内形觉剥夺组SD大鼠视皮层AMPAGluR2的蛋白表达及mRNA均较对照组下降。本研究观察的3个时段MD组大鼠视皮层Ⅱ/Ⅲ层内GluR2/3阳性细胞数量及AOD值较正常对照组均明显下降,与上述研究结果一致。由此可见,异常的视觉经验可以影响GluR2/3的正常表达;但形觉剥夺后(出生后21~45 d)GluR2/3的表达仍呈现递增趋势,由此推测,形觉剥夺仅能部分影响GluR2/3的表达,但并不能完全阻断GluR2/3增多的趋势。
综上所述,在视觉发育关键期内大鼠GluR2/3的表达同时受年龄及视觉经验双重因素的影响与调控。但视觉经验是通过何种途径影响AMPA受体的表达以及AMPA受体在视觉可塑性及弱视发病中的具体作用机制有待进一步研究。
[1]Song I,Huganir RL.Regulation of AMPA receptors during synaptic plasticity[J].Trends Neurosci,2002(25):578-588.
[2]Liao D,Scannevin RH,Huganir R.Activation of silent synapses by rapid activity-dependent synaptic recruitment of AMPA receptors[J].Neurosci,2001,21(16):6008-6017.
[3]Montgomery JM,Pavlidis P,Madison DV.Pair recordings reveal all-silent synaptic connections and the postsynaptic expression of long-term potentiation[J].Neuron,2001,29(3):691-701.
[4]Rumpel S,Kattenstroth G,Gottmann K.Silent synapses in the immature visual cortex:layer-specific developmental regulation[J].Neurophysiol,2004,91(2):1097-1101.
[5]Gordon B,Tseng YL,Jaeger R,et al.The development of MK-801,kainate,AMPA,and muscimol binding sites in cat visual cortex[J].Vis Neurosci,1995,12(2):241-252.
[6]Smith AL,Thompson ID.Distinct laminar differences in the distribution of excitatory amino acid receptors in adult ferret primary visual cortex[J].Neuroscience,1994,61(3):467-479.
[7]王昌鹏,阴正勤,秦伟,等.大鼠视觉发育可塑性关键期终止前后视皮层神经元AMPA受体GluR2亚基表达的变化[J].眼科新进展,2008,28(7):481-485.
[8]王昌鹏,阴正勤,秦伟,等.大鼠视觉发育可塑性关键期终止前后视皮层AMPA受体电流的发育变化[J].眼科新进展,2008,28(9):641-645.
[9]Rossner S,Kumar A,Kues W,et al.Differential laminar expression of AMPA receptor genes in the developing rat visual cortex using in situ hybridization histochemistry.Effect of visual deprivation[J].Int J Dev Neurosci,1993,11(4):411-424.
[10]Kumar A,Schliebs R,Bigl V.Postnatal development of NMDA,AMPA,and kainate receptors in individual layers of rat visual cortex and the effect of monocular deprivation[J].Int J Dev Neurosci,1994,12(1):31-41.
[11]Wong-Riley MT,Jacobs P.AMPA glutamate receptor subunit 2 in normal and visually deprived macaque visual cortex[J].Vis Neurosci,2002,19(5):563-573.
[12]孙晓楠,陶军,郝旭红,等.左旋多巴及胞二磷胆碱对单眼形觉剥夺大鼠视皮质 α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异噁唑丙酸 GluR2表达的影响[J].中华实验眼科杂志,2012,30(12):1065-1069.