APP下载

结直肠癌转移相关信号通路

2015-03-21贾陌杨王要军

国际消化病杂志 2015年3期
关键词:整合素激酶磷酸化

贾陌杨 王要军

结直肠癌(CRC)是一种较常见的消化道恶性肿瘤,在世界范围内,CRC的发病率居于恶性肿瘤第三位,在恶性肿瘤引起的死亡中居于第四位。每年约有超过100万的新发病例[1]。中国的CRC发病率也呈上升趋势。CRC的恶性程度较高,较易发生血行、淋巴及远处转移。CRC的转移是一个多基因作用、多步骤的过程,其中也涉及多种信号转导通路。本文就与CRC转移相关的经典信号通路作一综述。

1 转化生长因子-β/Smad信号通路

1.1 信号通路的组成

转化生长因子-β/Smad(TGF-β/Smad)信号通路主要由TGF-β及其受体和Smad蛋白构成。TGF-β超家族包括 TGF-β、lefty、活化素(activin)、抑制素(inhibin)、骨形态发生蛋白(BMP)以及缪勒管抑制物质(MIS)、各种生长分化因子(GDF)等[2]。目前认为 TGF-β家族的受体有 TβRⅠ、TβRⅡ、TβRⅢ3种,均为受体丝氨酸/苏氨酸(Ser/Thr)激酶[3]。细胞质蛋白Smad为TGF-β信号通路中关键的信号转导分子,可将TGF-β信号向细胞核内转导。一般将Smads蛋白分为3类[4]:(1)受体调控的Smad Smad1、2、3、5、8;(2)通用调节Smad Smad4和Smad4B;(3)抑制性 Smad Smad6、7。活化的TGF-β二聚体通过与TβRⅠ/TβRⅡ结合而转导信号。当与TGF-β结合后,TβRⅡ磷酸化,激活TβRⅠ,进一步磷酸化 Smad2/3,Smad2/3与Smad4结合形成Smad2/3/4复合体,转移进入核内,与各种转录因子结合,将信号转导下去[5]。

1.2 信号通路与CRC转移的关系

TGF-β主要通过增加肿瘤血管生成、免疫抑制、增加肿瘤细胞外基质(ECM)的产生和沉积、上调肿瘤周围的蛋白酶水平来促进肿瘤转移。CRC细胞增殖后,可以分泌TGF-β,抑制效应T细胞的功能,并可抑制白细胞介素-17(IL-17)产生Th17细胞,从而调控自然杀伤(NK)细胞和巨噬细胞,抑制机体的免疫功能及炎性反应,帮助肿瘤细胞逃避宿主的免疫监控,从而促进CRC转移[3]。此外,TGF-β在CRC上皮细胞-间充质细胞转化(EMT)中也起到一定的作用。在上皮细胞转化为间充质细胞的过程中,肿瘤细胞可以获得更多的活动能力,进而促进转移。TGF-β可以通过与Smad蛋白形成转录复合体从而促进EMT的发生。Smad蛋白在CRC细胞的侵袭中也起到了重要的作用,目前研究较多的为Smad4。实验研究发现,Smad4缺失与CRC的发生及转移有密切的联系[6-7]。Zhang等[8]的细胞迁移和侵袭实验研究发现,在CRC细胞系CT26中敲除Smad4,可以促进CT26细胞通过人工基底膜屏障及胶原蛋白层,从而促进侵袭及转移。

2 PI3K/Akt信号通路

2.1 信号通路组成

PI3K是一种重要的磷脂酰肌醇激酶,其作为一种重要的信号转导因子而广泛存在于细胞内。研究发现,PI3K由p85和p110两个亚基组成,具有调节细胞增殖、凋亡及分化等功能[9]。Akt是一种由原癌基因c-Akt编码的丝氨酸/苏氨酸激酶,又称为蛋白激酶B(PKB),是PI3K/Akt信号通路的核心,为PI3K的主要下游效应分子,可以直接磷酸化多种转录因子,从而促进肿瘤发生发展[10]。Akt家族有3个亚型,分别是Akt1、Akt2、Akt3,其又可以称为PKBα、PKBβ、PKBγ。Akt2由于其在肿瘤侵袭中的作用,已成为目前研究的热点。研究发现,二聚体构象改变可以活化PI3K,并且Ras和p110亚基的直接结合也可以活化PI3K,PI3K被激活后可以在质膜上产生第二信使3-磷酸磷脂酰肌醇(PIP3),而Akt内的PH结构域可以与PIP3结合,从而使Akt活化,并使其从细胞质转移到细胞膜上[11]。

2.2 信号通路与CRC转移的关系

PI3K首先激活Akt,Akt活化后发生磷酸化作用,进而激活或抑制其下游靶蛋白,如核因子-κB(NF-κB)、mTOR、Bad、Par-4、天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶-9(caspase-9)等,从而介导多种生长因子等诱发的细胞增殖[10]。早期研究表明,相比于非转移性癌细胞,转移性癌细胞中PI3K的活性更高。在转移性癌细胞中,基质金属蛋白酶(MMP)能够降解细胞基底膜及ECM,从而促进肿瘤的转移,而PI3K是MMP产生的重要因素。流行病学研究及动物实验发现,PI3K可激活 MMP-2、MMP-9,导致ECM破坏,从而促进癌细胞转移。此外,MMP-2、MMP-9也是Akt2作用的靶基因,其激活可以促进CRC转移及侵袭。Chu等[12]的研究发现,MMP-9表达升高可以促进CRC Dukes分期的进展及远处转移。活化的Akt还可以调节Bcl-2和黏着斑激酶(FAK)蛋白的表达来介导 CRC转移[13]。另外,Akt2也可以上调β1-整合素从而增加CRC细胞的转移及侵袭作用。Ericson等[14]研究发现,Akt2失活可以减弱CRC转移的能力,从而证明Akt2的活化在CRC转移中起着重要的作用。

3 Wnt/β-连环素信号通路

3.1 信号通路的组成

Wnt/β-连环素(β-catenin)信号通路是 Wnt信号通路的经典通路,是CRC发生发展过程中重要的信号通路之一。研究已证实,约90%的CRC患者存在 Wnt通路过度激活,该通路异常可以促使β-catenin在细胞内异常积聚。β-catenin是该通路的关键分子,主要位于细胞膜上,少量游离存在于细胞质中。细胞膜上的β-catenin与α-catenin、肌动蛋白(actin)、钙黏蛋白(E-cadherin)等构成连接复合体,进而使同型细胞相互黏附。细胞质中的β-catenin与轴抑制蛋白(Axin)、无嘌呤/无嘧啶核酸内切酶(Ape)、糖原合成酶激酶-3β(GSK-3β)等形成降解复合物,经蛋白酶水解作用而降解[15]。Wnt蛋白通过与特异性受体卷曲蛋白(Frizzled)作用后,可以活化存在于细胞内的Dsh蛋白,进而抑制降解复合体的形成,从而使细胞质内累积大量β-catenin,并可以使其转移至细胞核内,与LEF或TCF相结合,刺激Wnt信号下游靶基因的转录,从而调控细胞增殖[16]。

3.2 信号通路与CRC转移的关系

大量实验研究表明,CRC细胞核中β-catenin的异常表达与其侵袭及转移有密切的联系[17-18]。众所周知,肿瘤转移的一个重要先决条件是细胞间的黏附障碍。细胞膜上的β-catenin与E-cadherin等可以结合形成复合物来维持细胞间的黏附,而β-catenin是该复合物的主要调控分子[19]。在CRC细胞系SW480中,由于 Wnt信号异常引起β-catenin磷酸化时,可导致β-catenin/E-cadherin复合体的破坏,从而影响细胞间黏附的稳定性,使细胞脱落进而发生转移[20]。MMP在肿瘤侵袭及转移中的作用已被大量实验研究证实,近年研究表明,在CRC细胞中抑制β-catenin可以抑制MMP的活性,进而影响 CRC的转移[21]。Lee等[22]通过免疫组组织化学方法对83例Ⅳ期CRC组织蜡块进行分析,发现 Wnt3a的表达与淋巴结转移(P=0.038)、MMP-9的表达(P=0.0387)显著相关,从而发现在CRC转移中,Wnt蛋白起着重要的作用。

4 整合素激活FAK介导的信号通路

4.1 整合素及FAK

整合素的本质是一种糖蛋白,广泛存在于细胞膜表面,可以介导ECM的交互作用,从而将信号从细胞外环境连接到肌动蛋白细胞骨架上[23]。整合素由α和β两个亚基构成,目前至少已发现18种α亚基和8种β亚基,研究证明这些亚基可以组成20余种整合素[24]。FAK是一种非受体型酪氨酸蛋白激酶,由氨基端的FERM结构域、羧基端的黏着斑固定区(FAT)和中央激酶区3个结构域构成。FERM结构域可以与整合素的β亚基结合引起FAK聚集,而FAK聚集可以引起其酪氨酸磷酸化位点Tyr397发生自主磷酸化,从而在Tyr397上产生可以与Src家族激酶相结合的高亲和力位点,进一步形成FAK-Src信号转导复合物[25]。FAK-Src复合物形成后可以改变细胞膜黏附力,进一步激活下游通路,从而在细胞的黏附、增殖、迁移及生存中发挥重要的作用[26]。FAK活化后,能够激活多种信号转导分子,因此FAK被认为是整合素介导的信号通路的基础分子,并在其中起着关键的作用。

4.2 信号通路与CRC转移的关系

研究表明,FAK信号通路可以通过调控细胞迁移、侵袭、EMT及肿瘤血管生成等途径来促进肿瘤进展及转移[27]。有研究表明,在肿瘤细胞中,FAK可以磷酸化β-catenin从而导致细胞黏附连接处完整性破坏而失去与整合素的连接[28],而磷酸化血管内皮cadherin在血管内皮生长因子的刺激下同样可以破坏细胞间的黏连[29],进而增加细胞的运动能力。Cicchini等[30]的研究发现,FAK-Src复合物可以调控由TGF-β诱发的EMT。上述均可增加肿瘤细胞的侵袭及转移。Weiner等[31]最早报道CRC及其转移癌组织中FAK呈过表达现象,他们发现85%的侵袭性原发癌及100%的肝转移癌过表达FAK,而正常结直肠黏膜几乎不表达。随着研究的深入,Owens等[32]在蛋白水平通过蛋白(Westernblot)方法检测转移性CRC中FAK的表达,证实FAK的表达升高。Garouniatis等[33]的研究发现,FAK的表达与CRC的转移及进展显著相关(P<0.01),并且与患者存活率也显著相关(P<0.001)。

5 结语

CRC的转移是一个复杂的过程,涉及很多信号通路,随着人们认识及研究水平的不断深入,越来越多的转移机制将被发现,可望为CRC转移患者的治疗提供新的思路。

1 Siegel R,Desantis C,Jemal A.Colorectal cancer statistics,2014.CA Cancer J Clin,2014,64:104-117.

2 Wakefield LM,Hill CS.Beyond TGFbeta:roles of other TGFbeta superfamily members in cancer.Nat Rev Cancer,2013,13:328-341.

3 Massague J.TGFbeta in Cancer.Cell,2008,134:215-230.

4 Samanta D,Datta PK.Alterations in the Smad pathway in human cancers.Front Biosci (Landmark Ed),2012,17:1281-1293.

5 Shi Y,Massague J.Mechanisms of TGF-beta signaling from cell membrane to the nucleus.Cell,2003,113:685-700.

6 Losi L,Bouzourene H,Benhattar J.Loss of Smad4 expression predicts liver metastasis in human colorectal cancer.Oncol Rep,2007,17:1095-1099.

7 Alhopuro P,Alazzouzi H,Sammalkorpi H,et al.SMAD4 levels and response to 5-fluorouracil in colorectal cancer.Clin Cancer Res,2005,11:6311-6316.

8 Zhang B,Zhang B,Chen X,et al.Loss of Smad4 in colorectal cancer induces resistance to5-fluorouracil through activating Akt pathway.Br J Cancer,2014,110:946-957.

9 Engelman JA. Targeting PI3K signalling in cancer:opportunities,challenges and limitations.Nat Rev Cancer,2009,9:550-562.

10 Sheng S,Qiao M,Pardee AB.Metastasis and AKT activation.J Cell Physiol,2009,218:451-454.

11 Vanhaesebroeck B,Guillermet-Guibert J,Graupera M,et al.The emerging mechanisms of isoform-specific PI3K signalling.Nat Rev Mol Cell Biol,2010,11:329-341.

12 Chu D,Zhao Z,Zhou Y,et al.Matrix metalloproteinase-9 is associated with relapse and prognosis of patients with colorectal cancer.Ann Surg Oncol,2012,19:318-325.

13 Tureckova J,Vojtechova M,Krausova M,et al.Focal adhesion kinase functions as an akt downstream target in migration of colorectal cancer cells.Transl Oncol,2009,2:281-290.

14 Ericson K,Gan C,Cheong I,et al.Genetic inactivation of AKT1,AKT2,and PDPK1 in human colorectal cancer cells clarifies their roles in tumor growth regulation.Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107:2598-2603.

15 Liu C,Li Y,Semenov M,et al.Control of beta-catenin phosphorylation/degradation by a dual-kinase mechanism.Cell,2002,108:837-847.

16 Polakis P.Wnt signaling in cancer.Cold Spring Harb Perspect Biol,2012,4:a008052.

17 Pancione M,Forte N,Fucci A,et al.Prognostic role of betacatenin and p53 expression in the metastatic progression of sporadic colorectal cancer.Hum Pathol,2010,41:867-876.

18 Elzagheid A,Buhmeida A,Korkeila E,et al.Nuclear betacatenin expression as a prognostic factor in advanced colorectal carcinoma.World J Gastroenterol,2008,14:3866-3871.

19 Dierick H,Bejsovec A.Cellular mechanisms of wingless/Wnt signal transduction.Curr Top Dev Biol,1999,43:153-190.

20 Piedra J,Martinez D,Castano J,et al.Regulation of betacatenin structure and activity by tyrosine phosphorylation.J Biol Chem,2001,276:20436-20443.

21 Song KS,Li G,Kim JS,et al.Protein-bound polysaccharide from Phellinus linteus inhibits tumor growth,invasion,and angiogenesis and alters Wnt/beta-catenin in SW480 human colon cancer cells.BMC Cancer,2011,11:307.

22 Lee MA,Park JH,Rhyu SY,et al.Wnt3a expression is associated with MMP-9 expression in primary tumor and metastatic site in recurrent or stageⅣcolorectal cancer.BMC Cancer,2014,14:125.

23 Hynes RO. Integrins: bidirectional, allosteric signaling machines.Cell,2002,110:673-687.

24 Humphries JD,Byron A,Humphries MJ.Integrin ligands at a glance.J Cell Sci,2006,119(Pt 19):3901-3903.

25 Cohen LA,Guan JL.Mechanisms of focal adhesion kinase regulation.Curr Cancer Drug Targets,2005,5:629-643.

26 Cabodi S,Di Stefano P,Leal Mdel P,et al.Integrins and signal transduction.Adv Exp Med Biol,2010,674:43-54.

27 Zhao J,Guan JL.Signal transduction by focal adhesion kinase in cancer.Cancer Metastasis Rev,2009,28:35-49.

28 Koenig A,Mueller C,Hasel C,et al.Collagen type I induces disruption of E-cadherin-mediated cell-cell contacts and promotes proliferation of pancreatic carcinoma cells.Cancer Res,2006,66:4662-4671.

29 Chen XL,Nam JO,Jean C,et al.VEGF-induced vascular permeability is mediated by FAK.Dev Cell,2012,22:146-157.

30 Cicchini C,Laudadio I,Citarella F,et al.TGFbeta-induced EMT requires focal adhesion kinase(FAK)signaling.Exp Cell Res,2008,314:143-152.

31 Weiner TM,Liu ET,Craven RJ,et al.Expression of focal adhesion kinase gene and invasive cancer.Lancet,1993,342:1024-1025.

32 Owens LV,Xu L,Craven RJ,et al.Overexpression of the focal adhesion kinase(p125FAK)in invasive human tumors.Cancer Res,1995,55:2752-2755.

33 Garouniatis A,Zizi-Sermpetzoglou A,Rizos S,et al.FAK,CD44v6,c-Met and EGFR in colorectal cancer parameters:tumour progression,metastasis,patient survival and receptor crosstalk.Int J Colorectal Dis,2013,28:9-18.

猜你喜欢

整合素激酶磷酸化
蚓激酶对UUO大鼠肾组织NOX4、FAK、Src的影响
蚓激酶的药理作用研究进展
整合素αvβ6与牙周炎关系的研究进展
整合素α7与肿瘤关系的研究进展
ITSN1蛋白磷酸化的研究进展
整合素与肝纤维化
磷酸化肽富集新方法研究进展
黏着斑激酶和踝蛋白在黏着斑合成代谢中的作用
MAPK抑制因子对HSC中Smad2/3磷酸化及Smad4核转位的影响
整合素αvβ6和JunB在口腔鳞癌组织中的表达及其临床意义