RHOA/ROCK-2信号通路在甲状腺髓样癌中的表达及意义
2014-03-21汪颖厚陈安杰王斌杨栋辛世杰蔡相军
汪颖厚,陈安杰,王斌,杨栋,辛世杰,蔡相军
(1.中国人民解放军第202医院普通外科,沈阳110812;2.中国医科大学附属第一医院血管甲状腺外科,沈阳110001)
RHOA/ROCK-2信号通路在甲状腺髓样癌中的表达及意义
汪颖厚1,陈安杰1,王斌1,杨栋2,辛世杰2,蔡相军1
(1.中国人民解放军第202医院普通外科,沈阳110812;2.中国医科大学附属第一医院血管甲状腺外科,沈阳110001)
Expression of RHOA/ROCK-2 Signaling Pathway in Medullary Thyroid Carcinoma and Its ClinicalSignificance
采用免疫组织化学染色方法检测RHOA、ROCK-2蛋白在甲状腺髓样癌(MTC)组织及癌旁组织中的表达情况。结果显示:MTC中RHOA、ROCK-2蛋白表达水平较癌旁甲状腺组织中明显增高,二者的表达与患者的性别、年龄及TNM分期无关,而ROCK-2与淋巴结转移有关。RHOA、ROCK-2的表达可能对MTC的发生和发展有重要作用。
甲状腺髓样癌;RHOA;ROCK-2;转移;免疫组织化学
甲状腺髓样癌(medullary thyroid carcinoma,MTC)是甲状腺癌中比较少见的类型,约占所有甲状腺恶性肿瘤的4%~10%[1],属中度恶性甲状腺癌。MTC具有多灶性的特点,淋巴结转移出现较早,且有遗传倾向,预后一般[2]。近年来甲状腺癌发病率迅速增加,MTC的发病率也随之升高[3],但导致其发生发展的具体机制目前尚未明确。研究表明,RET和RAS原癌基因突变可导致甲状腺滤泡旁C细胞内外区蛋白构象的改变,诱导细胞增生过度而发生恶变,引发MTC[4]。而细胞的恶性增殖与多种信号通路的异常激活密切相关。RHOA/ROCK-2信号通路受多种上游因子的调控,通过调节其下游NFκB的转录活性,在众多生理及病理过程中发挥作用,尤其在细胞的增殖、骨架重排、迁移和代谢以及血管重塑等方面起着关键作用[4,6]。实验证明,RHOA、ROCK-2蛋白在多种恶性肿瘤中存在过表达,并在其发生、发展及侵袭过程中起重要作用[7]。然而,RHOA/ROCK-2在MTC中的表达及作用目前鲜有报道。本研究拟检测RHOA、ROCK-2蛋白在MTC中的表达水平,旨在探讨RHOA/ROCK-2信号通路是否与MTC的发生、发展存在相关性。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 标本来源及一般资料:收集中国人民解放军第202医院及中国医科大学附属第一医院2008年至2012年术后病理确诊为MTC的石蜡样本30例,包括癌组织及癌旁组织。30例石蜡样本中,男14例,女14例;年龄24~74岁,中位年龄47岁。依据2013年NCCN标准临床分期:Ⅰ期7例,Ⅱ期6例,Ⅲ期6例,Ⅳ期11例。有淋巴结转移者17例,无淋巴结转移者13例。
1.1.2 主要试剂:RHOA、ROCK-2多克隆抗体(Santa Cruz公司,美国)均为大鼠抗人抗体,兔抗大鼠二抗(北京中杉金桥公司);SP法免疫组织化学试剂盒、DAB显色液(福州迈新公司)。
1.2 方法
组织形态学检查:取标本中段做4 μm切片,行HE染色及免疫组织化学染色(RHOA抗体稀释比例为1∶100,ROCK-2抗体稀释比例为1∶400)。奥林巴斯AX70U、BX61+DP71成像系统采集图像,在高倍镜下随机计数4个视野,以细胞质呈棕黄色为阳性,计算阳性细胞率,以无阳性细胞或阳性细胞<10%为阴性(-),阳性细胞≥10%为阳性(+)。
1.3 统计学分析
2 结果
2.1 组织学检查结果
30例MTC及癌旁组织中,RHOA在MTC组织中呈阳性表达27例,阳性表达率90.00%(27/30),ROCK-2在MTC组织中呈阳性表达24例,阳性表达率83.33%(24/30);癌旁甲状腺组织中无RHOA阳性表达,阳性表达率为0(0/30),癌旁甲状腺组织中ROCK-2阳性表达1例,阳性表达率3.33%(1/30)(图1)。RHOA、ROCK-2在MTC组织中的表达显著高于癌旁组织(P<0.01),差异有统计学意义(表1)。
2.2 RHOA、ROCK-2的表达与MTC临床病理特征的关系
如表2所示:RHOA、ROCK-2的表达均与患者的性别、年龄及TNM分期无关,而ROCK-2与淋巴结转移有关,差异有统计学意义(P<0.04)。
3 讨论
甲状腺癌是最常见的内分泌恶性肿瘤,而MTC较少见,其恶性程度明显高于甲状腺乳头状腺癌(papillary thyroidcarcinoma,PTC)和甲状腺滤泡状腺癌(follicular thyroid carcinoma,FTC)[8]。文献报道,MTC的10年生存率约为80%,而PTC和FTC的10年生存率分别为92%和90%[2]。目前公认的MTC主要发病原因是由RET基因突变引起,大量研究已确认RET基因突变是MTC发病的主要分子病因学基础[4],约94%的遗传性MTC和70%的散发性MTC是由RET基因突变引起。但MTC是否还有其他发病机制,目前尚无定论。恶性肿瘤的发生、发展与组织细胞内的基因变化关系密切,某个或多个基因的缺失或激活都可能造成细胞的恶性增殖。RHOA/ROCK-2信号通路受多种上游因子调控,也可以影响多个下游因子,目前已知该通路与Wnt及Notch等多个经典信号通路存在着极为紧密的关系[9,10],而国内外已有文献报道Wnt信号通路与甲状腺恶性肿瘤的发生发展密切相关[11,12]。RHOA/ROCK-2信号通路一旦被激活,将会影响其下游多种因子,如转录因子NFκB、基质金属蛋白酶(matrixmetallo proteinase,MMP)、金属蛋白酶组织抑制因子(tissue inhibitor of metallo proteinase,TIMP)等,从而参与肿瘤的发生、发展及浸润和转移[13]。
图1 癌旁组织及MTC HE染色及RHOA、ROCK-2免疫组织化学结果×200
表1 RHOA、ROCK-2在MTC及癌旁组织中的组织学检查结果分析
表2 RHOA/ROCK-2信号通路与PTC临床病理特征的关系
目前为止,RHOA/ROCK-2信号通路与MTC发生、发展的相关研究甚少。本研究采用免疫组织化学技术检测了MTC中RHOA、ROCK-2蛋白的表达情况,并根据免疫组织化学结果评估RHOA、ROCK-2与MTC患者的年龄、性别、肿瘤分期及淋巴结转移的相关性。免疫组织化学检测结果发现:30例MTC及癌旁组织中,MTC中RHOA阳性27例(90.00%),ROCK-2阳性24例(83.33%),癌旁甲状腺组织中RHOA阳性0例(0),癌旁甲状腺组织中ROCK-2阳性1例(3.33%),RHOA、ROCK-2在MTC中的表达明显高于癌旁组织。统计学结果显示:RHOA、ROCK-2的表达均与患者的性别、年龄及TNM分期无关,而ROCK-2的表达与淋巴结转移有关。
本研究结果证明RHOA、ROCK-2在MTC中表达水平明显升高,且MTC患者ROCK-2的高表达与肿瘤淋巴结转移有关。尽管这些结果不能直接证明RHOA/ROCK-2信号通路与MTC的发生、发展存在着必然的联系,但结合国外及其他领域的相关研究结果[14],RHOA、ROCK-2极有可能与MTC乃至所有甲状腺肿瘤的发生和发展存在相关性。本研究例数相对较少,未检测RET基因的变异情况,而且缺乏RHOA、ROCK-2基因水平的相关研究,今后我们会完善与之相关的基因水平实验,并在细胞水平上继续探寻RHOA/ROCK-2信号通路与MTC的增殖、迁移、侵袭等方面的相关性。总之,阐明RHOA/ROCK-2信号通路对MTC发生、发展的作用机制有着重要的医学价值。
[1]You YN,Lakhani V,Wells SA Jr,et al.Medullary thyroid cancer[J].Surg Oncol Clin N Am,2006,14(3):639-660.
[2]Gilliland FD,Hunt WC,Morris DM,et al.Prognostic factors for thyroid carcinoma.A population-based study of 14,698 cases from the Surveillance,Epidemiology and End Results(SEER)program 1973-1991[J].Cancer,1997,79(3):464-473.
[3]Chen AY,Jemal A,Ward EM.Increasing incidence of differentiated thyroid cancer in the United States,1988-2004[J].Cancer,2009,14(16):3801-3807.
[4]Boichard A,Croux L,Al Ghuzlan A,et al.Somatic RAS mutations occur in a large proportion of sporadic RET-negative medullary thyroid carcinomas and extend to a previously unidentified exon[J].J Clin Endocrinol Metab,2012,97(10):E2031-E2034.
[5]Xie X,Peng J,Chang X,et al.Activation of RhoA/ROCK regulates NF-κB signaling pathway in experimental diabetic nephropathy[J]. Mol Cell Endocrinol,2013,369(1-2):86-97.
[6]程木秋,霍海洋,张海山.RhoA/ROCK信号系统对血管外膜炎症介导的大鼠颈动脉平滑肌细胞增殖和表型变化的影响[J].中国医科大学学报,2012,41(3):220-223.
[7]Ridley AJ,Schwartz MA,Burridge K,et al.Cell migration:integrating signals from front to back[J].Science,2003,302(4641):1704-1709.
[8]Wartofsky L.Increasing world incidence of thyroid cancer:increased detection or higher radiation exposure[J].Hormones,2010,9(2):103-108.
[9]Peng L,Li Y,Shusterman K,et al.Wnt-RhoA signaling is involved in dental enamel development[J].Eur J Oral Sci,2011,119(Suppl 1):41-49.
[10]Venkatesh D,Fredette N,Rostama B,et al.RhoA-mediated signaling in Notch-induced senescence-like growth arrest and endothelial barrier dysfunction[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2011,31(4):876-882.
[11]杨栋,辛世杰,刘彦,等.Wnt4a在甲状腺乳头状癌中的表达及意义[J].中国普通外科杂志,2013,22(11):1479-1483.
[12]Kremenevskaja N,von Wasielewski R,Rao AS,et al.Wnt-4a has tumor suppressor activity in thyroid carcinoma[J].Oncogene,2004,24(13):2144-2144.
[13]Shimada H,Rajagopalan LE.Rho kinase-2 activation in human endothelial cells drives lysophosphatidic acid-mediated expression of cell adhesion molecules via NF-kappaB p64[J].J Biol Chem,2010,284(17):12436-12442.
[14]Zhong WB,Liang YC,Wang CY,et al.Lovastatin suppresses invasiveness of anaplastic thyroid cancer cells by inhibiting Rho geranylgeranylation and RhoA/ROCK signaling[J].Endocr Relat Cancer,2004,12(3):614-629.
(编辑 王又冬)
R736.1
A
0248-4646(2014)04-0364-03
汪颖厚(1986-),男,医师,硕士.
王斌,E-mail:202wangbin@sina.com
2013-12-19
网络出版时间: