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一株犬种布鲁氏菌的分离与鉴定

2013-10-09周桂兰李旭妮程君生丁家波毛开荣韦海涛薛水玲祝俊杰

中国兽药杂志 2013年2期
关键词:犬种菌体布鲁氏菌

周桂兰,李旭妮,吴 启,程君生,王 楠,丁家波,毛开荣,韦海涛,薛水玲,祝俊杰

(1.北京市畜牧兽医总站,北京 100107;2.中国兽医药品监察所,北京 100081)

犬种布鲁氏菌是布鲁氏菌属的一个种,主要引发犬类动物发生布鲁氏菌病[1],也可以与牛种、羊种、猪种布鲁氏菌合并引发犬的布鲁氏菌病(布病)[2]。患病母犬的主要临床症状是流产,产弱仔,产道炎;患病公犬精液中可携带布鲁氏菌和大量炎症细胞及病变精子,部分病犬出现附睾炎和睾丸萎缩等炎症病变[3]。2012年2月,从贵宾犬的前肢静脉血中培养分离到疑似布鲁氏菌,经过血清学试验、生化试验、PCR试验鉴定确定该菌种是犬种布鲁氏菌,将该菌株命名为Brucella canis GB1。

1 材料

1.1 血样来源 无菌采血样品来自北京一居民家养流产贵宾犬,该犬第一次发情与自家公狗交配,顺利产下4只健康幼犬。第二次发情与他人养的一只贵宾犬交配,怀孕51 d后发生流产。该病犬流产后的第115天体表温度达38.9℃,眼睛有大量脓性分泌物,对其前肢静脉采血,从全血中分离得到该菌。分离血清保存于-20℃。

1.2 菌株 对照用菌株牛种布鲁氏菌A19(CVCC 70202)、羊种布鲁氏菌 M28(CVCC 70003)、犬种布鲁氏菌RM6/66(CVCC 70701)、猪种布鲁氏菌S2(CVCC 70502)均由中国兽医药品监察所提供。

1.3 血清及抗原 犬种布鲁氏菌阳性血清(对RM6/66抗原凝集效价为1∶4096)由课题组研制;布鲁氏菌阳性血清(批号:201001)与阴性血清(批号:2001-1)、布鲁氏菌病虎红平板凝集试验抗原(批号:201201)、布鲁氏菌病试管凝集试验抗原(批号:201201),均由中国兽医药品监察所提供。

1.4 培养基 胰眎琼脂培养基由中国兽医药品监察所制备。胰酶大豆培养基(TSB)为BD/Difco产品(批号:0144388)。

1.5 试剂 PH8.9 Menzel’s缓冲液(蒸馏水1000 mL、Na2CO30.795 g、NaHCO37.14 g、NaCl5 g、苯酚5 g)、石炭酸生理盐水。

1.6 试剂盒 细菌基因组DNA提取试剂盒,宝生物工程(大连)有限公司(Lot:CA1301);PCR反应试剂盒(Lot:DR001B)、DNA Marker DL2000(Lot:D501A),TAKARA 公司。

2 方法

参照世界卫生组织的文献[4],对该菌进行分离培养及鉴定。

2.1 细菌的分离、培养特性和生化试验

2.1.1 细菌培养 试验犬采血后立即全血接种胰眎琼脂斜面培养基,37℃培养72 h。

2.1.2 菌体、菌落染色 将培养后的菌体涂抹于玻璃片上,火焰固定后革兰氏染色,油镜观察。用布鲁氏菌菌落结晶紫染色液对菌落染色15 s后观察。

2.1.3 生化试验 将醋酸铅滤纸条放入增殖的待

检菌样品中,37℃培养72 h,观察结果。

2.2 凝集试验

2.2.1 布鲁氏菌虎红平板凝集试验 试验血清作1∶1、1∶2、1∶6 倍稀释,分别取 30 μL 与布鲁氏菌病虎红平板凝集试验抗原30μL混合反应,4 min后观察结果,出现凝集颗粒,液体完全透明记为++++;有明显的凝集颗粒,液体几乎完全透明记为+++;有较明显的凝集颗粒,液体稍透明记为++;稍能见到凝集,液体混浊记为+;无凝集,液体均匀混浊记为-。

2.2.2 试管凝集试验

2.2.2.1 比浊对照管配制 1∶20稀释抗原等量稀释液稀释(1∶40稀释)后,再用稀释液配制成含1∶40抗原0%、25%、50%、75%、100%的悬液。分别代表:菌体完全凝集和沉淀,液体100%清亮记为++++;菌体几乎完全凝集和沉淀,液体75%清亮记为+++;有显著的凝集和沉淀,液体50%清亮记为++;有清楚的凝集和沉淀,液体25%清亮记为+;无凝集和沉淀,液体均匀混浊记为-。

2.2.2.2 犬种布鲁氏菌病试管凝集试验抗原用pH8.9 Menzel’s缓冲液作 1 ∶20 稀释;被检血清及阴、阳性对照血清用 pH8.9 Menzel’s缓冲液作1 ∶12.5 、1 ∶25、1 ∶50、1 ∶100 倍稀释。

2.2.2.3 稀释好的抗原和各稀释度被检血清(第1管加入0.1 mL混合后弃0.25 mL,第2管从第1管取0.5 mL加入混合后弃0.5 mL,第3管从第2管取0.5 mL混合后弃0.5 mL,第4管从第3管取0.5 mL混合后弃0.5 mL)及阴、阳性对照血清各加0.5mL混合,置37℃温箱中作用24 h,取出与比浊对照管比较读取结果。

2.3 细菌的AMOS-PCR鉴定

2.3.1 菌株复苏和细菌基因组的提取 牛种、羊种、犬种和猪种布鲁氏菌菌种复苏时,用胰眎琼脂划线,于37℃培养箱中培养72 h。各挑取单个菌落到1.5 mL TSB液体培养基中,37℃培养至对数生长中期,按照Qiagen细菌基因组抽提试剂盒说明书,提取各细菌基因组DNA,经初步定量的核酸置-20℃保存备用。

2.3.2 引物设计 参照已发表的文献[5-6],设计表1所示的各引物。其中RIS711存在于IS711基因内,不同的F引物则对应于IS711基因外侧。将Fabortus、Fmelitensis、Fsuis配成引物混合储存液(简称AMS引物),每种引物浓度为25μmol/L,其他各引物的储存浓度均配制成25μmol/L。

表1 用于鉴定布鲁氏菌种属的PCR引物序列

2.3.3 PCR反应体系 50μL的反应体系中,含5μL 10× Buffer;8μL 2.5mmol/L dNTPs;AMS引物混合物2 μL,RIS711、Feri、Reri储存液各2 μL;Taq 酶2U,模板DNA 1μL(或用接种环蘸取少量菌体)。

2.3.4 PCR反应程序 经过优化的PCR反应程序为:95℃ 5min后,按94℃ 1min,60℃ 1.5min,72℃ 1.5min进行28个循环;最后72℃延伸10min。扩增产物用1.5% 琼脂糖凝胶进行电泳鉴定。

3 结果与结论

3.1 细菌的分离、培养特性和生化试验 全血接种2个胰眎琼脂斜面培养基后共培养出8个呈乳白色、圆形、凸起的菌落,经过细菌的分离、培养特性观察和生化试验,对菌体革兰氏染色后,放在显微镜1000倍油镜下观察:菌体呈细小球状,呈红色(阴性),菌落经结晶紫染色后呈紫色,无 H2S产生,初步诊断分离的该流行菌株为布鲁氏菌属犬种。

3.2 凝集试验 病犬血清样品粗糙型布鲁氏菌病虎红平板凝集试验结果呈阳性反应(+),详见表2;病犬血清样品粗糙型布鲁氏菌病试管凝集试验结果也呈阳性反应(+),详见表3。病犬血清样品光滑型布鲁氏菌凝集试验均呈阴性反应(-),本项血清学试验诊断结果证明了该病犬感染了粗粗糙型布鲁氏菌。

表2 粗糙型布鲁氏菌病虎红平板凝集试验结果

表3 粗糙型布鲁氏菌病试管凝集试验结果

3.3 AMOS - PCR 鉴定结果 A19、M28、S2 和RM6/66均在划线接种后72 h均出现可见的小菌落,本研究中的分离菌培养72 h同样形成肉眼可见的菌落,比其它光滑型布鲁氏菌形成的菌落稍大。单个菌落接种TSB液体培养基,37℃摇振培养20 h后,提取基因组DNA。取2μL进行琼脂糖凝胶电泳,在紫外光下均能观察到特异性条带。PCR产物电泳结果见图2。该项试验进一步证明了本次分离的菌株为犬种布鲁氏菌。

图2 AMOS-PCR鉴定结果

通过对该只贵宾犬的病原学诊断,将病犬全血培养收获的布鲁氏菌株命名为Brucella canis GB1。

[1] 尚德秋.动物布鲁氏菌病[M],北京:科学技术文献出版社,1992:283-292.

[2] 吴清民.兽医传染病学[M].北京:中国农业大学出版社,2002:187-193.

[3] 刘秉阳.布鲁氏菌病学[M].北京:人民卫生出版社出版,1989:327-373.

[4] 世界卫生组织著,农业部畜牧兽医局译.哺乳动物、禽、蜜A类和B类疾病诊断试验和疫苗标准手册[M].北京:农业科学技术出版社,2002:363-388.

[5] 丁家波,张存帅,彭小兵,等.布鲁氏菌种属鉴定多重PCR方法的建立及初步应用[J].中国兽医学报.2009,29(5):594 -597.

[6] 彭小兵,程君生,夏业才,等.多重PCR方法鉴别牛、羊、猪种布鲁氏菌株[J].中国兽药杂志.2010,44(2):12 -14.

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