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芹菜素的抗炎作用及其机制

2012-11-01阚伟娟喻婉莹于鹏霞李敏敏宋吉帅

亚太传统医药 2012年1期
关键词:芹菜烟台抗炎

阚伟娟,喻婉莹,于鹏霞,李敏敏,宋吉帅,赵 烽*

(1.烟台大学 药学院,山东 烟台 264005;2.烟台赛尔斯生物技术有限公司,山东 烟台 264006)

芹菜素,化学结构为5,7,4’-三羟基黄酮(见图1),是芹菜中的主要生物活性成分,有“植物雌激素”之称,广泛存在于多种水果和蔬菜中,车前子、络石藤、藿香等药材中含有大量的芹菜素。研究表明,其具有抗氧化、清除自由基[1]、抗肿瘤、抗炎[2]等作用。鄂裘恺[3]以小鼠为实验对象,灌胃法芹菜素给药。阿司匹林为阳性对照药,以醋酸所致扭体反应为疼痛指标,以二甲苯所致小鼠耳廓肿胀为炎症指标。结果发现:芹菜素高低剂量组均有镇痛作用,芹菜素高剂量组与阿司匹林组相当。各剂量组均有明显的消炎作用,芹菜素高剂量优于阿司匹林。以上结果提示芹菜素具有良好的镇痛消炎临床应用价值。然而,芹菜素药理学作用的研究大多尚处于动物模型阶段,作用机制仍不清楚。本研究利用LPS诱导体外炎症模型,检测芹菜素对LPS诱导巨噬细胞RAW 264.74释放炎症介质TNF-α、IL-6及NO的抑制作用,以及对iNOS、COX-2蛋白表达水平的影响,旨在探讨芹菜素抗炎的分子机制。

图1 芹菜素(Apigenin)结构

1 材料与方法

1.1 材料

芹菜素(HPLC≥98%)由烟台赛尔斯生物技术有限公司提供,以DMSO溶解、-20℃保存,使用前稀释至指定浓度。RPMI 1640、胎牛血清购自Hyclone公司;LPS(Escherichia coli 0111:B4)、MTT购自Sigma公司;青霉素-链霉素双抗溶液、0.25%胰酶消化液、小鼠TNF-αELISA试剂盒、小鼠IL-6ELISA试剂盒、一氧化氮检测试剂盒为烟台赛尔斯生物技术有限公司产品;Colorimetric COX Inhibitor Screening Assay Kit(760111),anti-murine iNOS polyclonal antibody,COX-2 (murine)polyclonal antibody购自 Cayman公司;β-actin antibody购自Santa Cruz Biotechnology,Inc。

1.2 细胞培养及传代

小鼠单核巨噬细胞株RAW 264.7购自中科院上海细胞库(ATCC TIB-71);用含10%胎牛血清、100μg·mL-1链霉素,100U·mL-1青霉素的RPMI 1640培养液于37℃CO2培养箱中常规培养,隔天传代,细胞于对数生长期呈半贴壁状态生长。

1.3 NO浓度测定

按照文献中所述的方法进行测定[4]。

1.4 细胞体外生长活性检测

采用MTT法检测细胞体外生长活性。吸取培养液上清100μL测定NO的浓度后,于上述96孔板内每孔加入4μL MTT(终浓度200μg·mL-1),继续培养4h后弃去上清,吸干残留液,每孔加入DMSO 100μL,振摇至生成的蓝紫色甲瓒结晶完全溶解后,以630nm为参比波长,用酶标仪测定570nm处的吸光值(A570)。细胞生长抑制率(%)=100×(1-实验组平均A570值/空白对照组平均A570值)。

1.5 ELISA法测定TNF-α、IL-6水平

取对数生长期的RAW 264.7细胞,用胰酶消化,制成每毫升含5×105个细胞的单细胞悬液,接种于96孔细胞培养板(每孔200μL),每组设3个平行孔。培养1h后分别加入不同浓度的芹菜素及LPS(终浓度1μg·mL-1),同时设LPS组和空白对照组,置37℃培养箱中培养6h后收集细胞上清液,按照相应的ELISA试剂盒说明书方法进行测定,根据标准曲线计算各组培养上清中TNF-α、IL-6的浓度[5]。

1.6 比色法测定COX-2酶活性

每个样品设两个平行孔,按照说明书方法进行测定。

1.7 Western Blotting法检测iNOS、COX-2及内参蛋白β-actin表达水平

取RAW 264.7细胞接种于60mm培养皿,37℃培养1h后给药,同时设空白组、LPS组。培养24h后,收集细胞,超声破碎提取总蛋白,采用Bradford法进行定量。取30μg总蛋白行12%SDS-PAGE电泳后,转膜,5%脱脂奶粉4℃封闭过夜,T-TBS洗膜3次,加入一抗溶液4℃孵育2h,用相同方法洗膜,加入HRP标记的二抗溶液4℃孵育1h,相同方法洗膜后加入ECL发光剂,放入暗盒中压片、显影、定影。

1.8 统计学方法

2 结果

2.1 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放NO的抑

空白组细胞上清中检测到的NO浓度非常低,仅为0.47μmol·L-1,在1μg·mL-1的LPS刺激下,巨噬细胞释放出大量的NO(12.39μmol·L-1),经3~4次重复实验表明两组间有显著性差异,P<0.01,表明LPS能明显诱导RAW 264.7细胞释放大量炎性介质NO。与LPS组相比,经芹菜素作用的RAW 264.7细胞上清液中,NO的含量明显减少,随着用药浓度的增高NO的浓度逐渐降低,呈现出良好的剂量依赖关系。50~100μmol·L-1芹菜素能够完全抑制LPS诱导的NO释放,25μmol·L-1芹菜素能够显著抑制LPS诱导的NO释放,作用强度与100μmol·L-1抗炎药物氢化可的松相当,结果见图2。

2.2 芹菜素对RAW 264.7细胞增殖无显著影响

芹菜素在12.5~100μmol·L-1浓度范围内,对RAW 264.7细胞的正常增殖均无明显抑制作用,高浓度下(100μmol·L-1)作用24h后,给药组细胞的存活率为99.80%,无细胞毒性。

2.3 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放IL-6水平的影响

如表1所示,空白对照组细胞上清液中IL-6的浓度为190.15pg·mL-1,经过1μg·mL-1的LPS刺激6h后,细胞释放大量的IL-6,此时上清液中IL-6的浓度为1526.62 pg·mL-1,与空白组比较有显著性差异,P<0.05。不同浓度的芹菜素可以极为显著地抑制LPS诱导RAW 264.7细胞释放IL-6,P<0.05。

图2 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放NO的抑制作用

表1 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放IL-6的抑制作用

2.4 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放TNF-α的影响

如表2所示,空白对照组细胞上清液中TNF-α的浓度为7.23pg·mL-1,经过1μg·mL-1的LPS刺激6h后,细胞释放大量的 TNF-α,此时上清液中 TNF-α的浓度为4943.85pg·mL-1,与空白组比较有显著性差异,P<0.01。12.5~100μmol·L-1的芹菜素可以显著抑制LPS诱导RAW 264.7细胞释放TNF-α,作用强度优于阳性对照药物氢化可的松。

表2 芹菜素对LPS诱导RAW 264.7细胞释放TNF-α的抑制作用

2.5 芹菜素对COX-2酶活力的影响

以纯化的COX-2酶活力值为100,芹菜素在0.125~1mmol·L-1浓度范围内对COX-2酶活力无明显抑制作用。而阳性对照药物1mmol·L-1氢化可的松可使COX-2酶活力明显降低,P<0.01,结果见图3。

图3 芹菜素对COX-2酶活力的影响

2.6 芹菜素对iNOS、COX-2蛋白表达的抑制作用

如图4所示,以 Western blot法检测iNOS、COX-2及内参蛋白β-actin的水平,结果表明正常细胞中几乎不表达iNOS和COX-2蛋白,经过1μg·mL-1的LPS刺激24h后,iNOS和COX-2的蛋白水平显著升高。高浓度芹菜素可以轻微抑制LPS诱导的iNOS蛋白表达升高,但是对COX-2蛋白水平升高无明显抑制作用。

图4 芹菜素对LPS诱导iNOS和COX-2蛋白表达升高的抑制作用

3 讨论

芹菜素及其制剂作为抗炎中药制剂,在临床上得以广泛应用,但其作用机理尚未充分阐明。本研究针对芹菜素对LPS诱导小鼠巨噬细胞释放NO、IL-6及TNF-α等炎症因子的抑制作用进行了研究,结果表明芹菜素能显著抑制LPS诱导RAW 264.7细胞分泌NO、IL-6和TNF-α等炎性因子,并且对iNOS蛋白表达也有抑制作用。由此可以明确芹菜素是通过下调iNOS蛋白表达,抑制巨噬细胞产生NO、IL-6和TNF-α等炎性细胞因子从而发挥抗炎作用。

[1]文赤夫,董爱文,罗庆华,等.紫花地丁中芹菜素提取和清除自由基活性研究[J].现代食品科技,2006,22(1):20-25.

[2]隋海霞,徐海滨,荫士安.芹菜素的生物学作用[J].国外医学·卫生学分册,2008,35(2):103-107.

[3]鄂裘恺,谢焕松,周鸣鸣.芹菜素镇痛消炎作用研究[J].辽宁中医药大学学报,2008,10(7):145-146.

[4]赵凯华,赵烽,刘珂.腺梗豨莶提取物对脂多糖活化巨噬细胞释放一氧化氮的抑制作用[J].烟台大学学报:自然科学与工程版,2009,22(2):137-140.

[5]ZHAO F,XU H,WANG L,JIANG YT,Liu K.Inhibitory effects of sesquiterpenes from Saussurea lappa on the overproduction of nitric oxide and TNF-αrelease in LPS-activated macrophages[J].Asian Nat Prod Res,2008,10(11):1045-1053.

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