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毛木耳原生质体制备与再生条件的研究*

2012-05-30姚方杰

中国食用菌 2012年3期
关键词:原生质渗透压稳定剂

孙 露,姚方杰,2**,方 明

(1吉林农业大学园艺学院,长春 130118;2食药用菌教育部工程研究中心,长春 130118)

原生质体技术是为食用菌细胞生物工程育种提供了新技术,在食用菌育种中具有明显的开拓性[1、2]。在木耳属中大量栽培的有木耳和毛木耳2个种,但是有关原生质体的研究却多集中于栽培量最大的木耳上,而对产量仅次于木耳的毛木耳的研究却较少[3-6]。本试验对影响毛木耳原生质体制备与再生的若干条件进行研究,旨在建立起最佳的毛木耳原生质体制备、再生体系,为进一步开展毛木耳等木耳属食用菌的遗传育种研究提供技术支持。

1 供试菌株

供试菌株由吉林农业大学园艺学院提供 (由云南农科院采集于云南省西双版纳傣族自治州勐腊县内山区)。

2 试验方法

2.1 原生质体制备条件的优化

采用SMY液体培养基培养菌丝。

分别设置4个培养时间、4个酶解温度、5个酶解时间、5个融壁酶浓度、4种渗透压稳定剂及其4浓度进行原生质体制备条件的优化研究。

菌丝培养及原生质体制备参照木耳[4]。

2.2 原生质体再生条件 (培养基)的优化

设计3个配方筛选最佳再生培养基。即在基本配方(马铃薯 200g、 葡萄糖 20 g、 蛋白胨 2 g、 MgSO40.5 g、K2HPO41 g、 KH2PO40.46 g、 VB110 mg、 琼脂 15 g/8 g、 水1 000 mL)内加入 0.5M MgSO4的为 RM1 (MgSO4), 0.5M甘露醇的为RM2(甘露),0.5M蔗糖RM3(蔗糖)。

3 结果与分析

3.1 出发菌龄

菌株的生理状态是影响其原生质体化的内在因素,其中菌龄对原生质体制备的影响尤为明显。本试验选择培养4 d~7 d的幼龄菌丝体进行试验,制得原生质体数量由多到少顺序为5 d>6 d>4 d>7 d,如图1。毛木耳菌株培养5 d时原生质体产量最大达到1.0×107个·ml-1。

图1 不同菌龄制得原生质体数量Figure 1 Protoplast number of different cell ages

3.2 融壁酶浓度

根据不同的食用菌种类及细胞壁成分应选择相应的融壁酶。本试验选用广东微生物所产的融壁酶,制备效果较好。如图2,原生质体数量由多到少顺序为1.5%>2%>1%>2.5%>3%。融壁酶浓度为1.5%时原生质体产量最大达到1.11×107个·mL-1。随着酶浓度的增大,原生质体产量有先上升后下降的趋势。因此,毛木耳原生质体制备的最佳的酶浓度为1.5%。

图2 不同融壁酶浓度制得原生质体数量Figure 2 Protoplast number of different enzyme concentration

3.3 酶解温度及酶解时间

酶解温度和酶解时间是影响原生质体产量的两个重要因素。本试验选择25℃、30℃、35℃、40℃四个温度进行试验,原生质体产量如图3。随着酶解温度的升高,原生质体产量呈现先上升后下降的趋势,在30℃时原生质体产量达到最大值 1.04×107个·mL-1。

不同酶解的时间,会有不同的位置发生酶解,因此所得到的原生质体产量及生理活性也不一样,如图4。随着酶解时间的延长,原生质体产量也呈现先上升后下降的趋势,酶解3 h时原生质体产量达到最大值9.6×106个·mL-1。酶解时间再延长反而会导致原生质体产量的下降。因此,毛木耳原生质体制备的最佳酶解温度为30℃,酶解时间为3 h。

3.4 渗透压稳定剂种类及浓度

图3 不同酶解温度制得原生质体数量Figure 3 Protoplast number of different enzymatic hydrolysis tem perature

图4 不同酶解时间制得原生质体数量Figure 4 Protoplast number of different enzymatic hydrolysis time

图5 不同渗透压稳定剂制得原生质体数量Figure 5 Protoplast number of different osmotic stabilizer

图6 不同渗透压稳定剂浓度制得原生质体数量Figure 6 Protoplast number of different osmotic stabilizer concen tration

由图5、图6看出,利用不同渗透压稳定剂制得的原生质体数量由多到少为甘露醇>MgSO4>蔗糖>KCl。甘露醇作为渗透压稳定剂,浓度为0.5 M时原生质体产量高达1.02×107个·mL-1。 图 7 为供试菌株在最佳原生质体制备条件下得到的原生质体。

图7 毛木耳原生质体 (40倍)Figure 7 Protoplasts of Auricularia polytricha (40 times)

3.5 再生培养基类型

在三种再生培养基中,RM1(MgSO4)的再生菌落极少,再生率几乎为0;RM2(甘露醇)的再生菌落较多,再生率为0.196%;RM3(蔗糖)的再生菌落最多 (如图8),再生率为1.144%。因此,RM3为毛木耳原生质体的最佳再生培养基。

4 讨论与结论

本试验结果表明,毛木耳原生质体制备的最佳条件:菌龄5d;融壁酶浓度为1.5%,酶解温度30℃,酶解时间3h;渗透压稳定剂选择甘露醇,浓度为0.5 M。在最佳酶解条件下, 原生质体数量可达到 1.1×107个·mL-1。

最适再生培养基配方为:马铃薯200 g,葡萄糖20 g,蛋 白 胨 2 g, MgSO40.5 g, K2HPO41 g, KH2PO40.46 g,VB110 mg, 琼脂 15g/8 g, 0.5M 蔗糖,水 1 000 mL。

图8 原生质体再生菌落Figure 8 Protoplast regeneration

但是,与其它食用菌相比,毛木耳原生质体的再生率较低,在最佳制备及再生条件下仅为1.144%。这可能是由于毛木耳菌丝生长速度较慢造成的。有研究表明,食用菌原生质体再生率与其生长速度成正相关,生长速度慢的再生率也低,受其自身的遗传特性的影响

[1]刘祖同,罗信昌.食用蕈菌生物技术及应用[M].北京:清华大学出版社,2002.

[2]李守勉,李明,刑蕾,等.食用菌原生质体技术应用的研究 [J].安徽农业科 2007, 35(25):7770-7771.

[3]姚方杰,张友民,陈影.我国黑木耳产业发展形势 [J].北方园艺,2010, 18:209-211.

[4]罗信昌.光木耳和毛木耳原生质体的形成和再生 [J].华中农业大学学报, 1987, 6(2):189-191.

[5]韩增华,张丕奇,戴肖东,等.黑木耳原生质体制备、再生及单核体荧光鉴定[J].食用菌学报, 2008, 15(3):13-17.

[6]李楠,许修宏.黑木耳原生质体制备及再生的研究 [J].东北农业大学学报, 2009, 40(7):34-37.

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