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MicroRNA与心肌梗死研究新进展

2012-04-01综述周建中审校

重庆医学 2012年29期
关键词:靶点特异性编码

张 睿 综述,周建中 审校

(重庆医科大学附属第一医院心内科 400016)

MicroRNA(简称miRNA)是一类生物进化过程中高度保守的非编码小分子RNA,其并不编码蛋白质,但通过对基因表达、蛋白质翻译及靶RNA的稳定性的调控,参与到许多重要的生物过程中。自2006年以来,有研究发现miRNA在心血管疾病发生、发展过程中起到重要作用,使miRNA成为心血管研究领域的热点。其中,miRNA与心肌梗死关系的研究特别引人注目,现就近年来与心肌梗死相关的miRNA进行综述,探讨其在心肌梗死发生、发展过程中的作用机制及应用展望。

1 miRNA概述

1993年,有学者在线虫发育调控研究中发现了第1个miRNA,并命名为Lin-4,但直到7年后let-7的发现,才拉开了miRNA研究序幕。成熟miRNA长度约22nt左右,通过与靶mRNA的3′非翻译区(3′UTR)特异性结合,切割或促进mRNA降解,或者抑制其翻译,降低编码蛋白质水平,实现对基因转录后的调控,从而参与许多重要的生物进程。

编码miRNA的基因有的位于功能基因编码区,有的则位于非编码区,其可能成簇表达或独立表达。miRNA的生成开始于细胞核内,编码miRNA的基因经RNA聚合酶Ⅱ(或聚合酶Ⅲ)作用产生初级miRNA(pri-miRNA),再经Drosha-DGCR8复合体剪切为70~100bp的具有发夹结构的前体miRNA(pre-miRNA)。这些发夹结构的RNA被核输出蛋白Exportin5转运至细胞质后,Dicer酶将其剪切成21~25bp的双链miRNA。其中一条链与RNA诱导的沉默复合物(RNA-induced silencing complex,RISC)相结合,成为成熟 miRNA,发挥miRNA的功能,另一条则被降解。

miRNA调控基因是通过降解或沉默特定基因来实现的。这种负性调控靶基因的表达取决于miRNA与靶mRNA的3′UTRs互补的程度。若RISC中miRNAs与靶mRNA匹配完全,形成的复合体可利用AgO2蛋白降解靶mRNA;反之,若两者序列呈部分匹配,尤其是miRNAs的5′端2~8个被称为种子序列的核苷酸与靶mRNA匹配完好,可通过抑制靶mRNA翻译来沉默特定基因,此时相应靶mRNA的水平不受影响,但不能翻译为蛋白质[1]。

2 miRNA与心肌梗死

2.1 miRNA作为心肌梗死生物学标志物相关研究

2.1.1 miRNA-1 miRNA-1是肌肉及心肌组织中富含的一种 miRNA。Cheng等[2]在Triton X-100体外诱导的心肌坏死模型中发现,miRNA-1能释放入培养液中,且能稳定存在至少24h。在大鼠心肌梗死模型中,miRNA-1在心肌梗死后迅速表达,并在梗死后6h达到高峰,3d后降至基线水平。此研究进一步发现,血液中miRNA-1水平在心肌梗死患者中获得相似的结果,并与CK-MB成正相关。同样地,D′Alessandra等[3]的研究发现心肌梗死患者循环中的miRNA-1的上调与cTnI水平相关,具有相同的峰值时间。以上研究均提示miRNA-1可能作为急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)新的生化标记物。

2.1.2 miRNA-499 Adachi等[4]研究了 miRNA在急性冠脉综合征和充血性心衰时的变化规律,期望找到新的可用于诊断心肌损伤的标记物。该研究发现,miRNA-499对心肌有高度的特异性,并仅在AMI后表达明显升高,而在充血性心衰和正常心脏中几乎不表达。这意味着miRNA-499可预期同cTnI、CK-MB一样可对AMI做出诊断。

2.1.3 miRNA-208 Ji等[5]在异丙肾上腺素诱导的 AMI大鼠中发现,AMI后miRNA-208在心脏中明显升高,且升高的时间变化规律与cTnI相似。Wang等[6]通过对AMI模型大鼠和AMI患者心肌内miRNA表达规律的研究,发现相较miRNA-1、-133、-499,miRNA-208具有更高的心脏特异性,其在正常心肌中无表达。在AMI模型大鼠中,miRNA-208在1h内即可有高表达,3h时出现峰值,6~12h后逐渐下降,24h后消失。同样在AMI患者中,miRNA-208具有90.9%敏感性及100.0%特异性,且在症状出现的最初4h内敏感性更高。上述研究均提示miRNA-208可作为更具敏感性及特异性AMI的早期诊断的生物学指标。

2.1.4 miRNA-133和 miRNA-328 Wang和 Li[7]对心肌梗死患者的研究发现,miRNA-133及miRNA-328表达较对照组明显增高。且在心肌梗死后7d降至正常水平。并且上述2种miRNAs在快速型心律失常、缓慢型心律失常及无心律失常的心肌梗死患者中没有明显差异。因此,他们亦可能成为心肌梗死新的标记物。虽然,上述指标之间存在一定差异,但是,miRNA作为心肌梗死的标志物具有相当强的潜力。

2.2 miRNA与心肌梗死后心律失常 心律失常是心肌梗死的主要临床并发症,发生率几乎达到100%,但是目前关于miRNA与心肌梗死后心律失常的研究仍主要集中在miRNA-1上。

心肌梗死后,miRNA-1表达明显增高,其作用靶点为间隙连接蛋白43(connexion 43,GJA1)及钾离子通道亚基 Kir2.1(KCNJ2),通过增强对其转录后抑制作用,减慢电传导促进细胞膜电位去极化,最终增加了心肌梗死后心律失常的易感性[8]。Lu等[9]进一步证明在心肌梗死后心律失常发生过程中,miRNA-1过表达与β肾上腺素能受体-cAMP-蛋白激酶A(PKA)信号通路及血清反应因子(SRF)过表达相关。该信号通路及SRF活性增加,促使miRNA-1表达增多;而β受体阻断剂普萘洛尔能阻断此信号通路并抑制SRF的表达来下调miRNA-1。从而减少心肌梗死后心律失常的发生。Terentyev等[10]也在研究中发现心室肌细胞过表达miRNA-l可增加内向钙电流活动,促进肌浆网钙离子释放,细胞内钙稳态环境被破坏,可触发心律失常。Shan等[11]则从临床中药入手,发现丹参酮通过抑制SRF的表达,间接抑制miRNA-1的表达,维持了内向整流钾电流密度和Kir2.1蛋白的浓度,从而降低了缺血性心律失常的发生率。因此,miRNA-1有望成为心肌梗死后抗心律失常的治疗新靶点。

2.3 miRNA与心肌梗死后心室重构

2.3.1 miRNA-29 van Rooij等[12]最早报道 miRNA-29参与心肌梗死后纤维化的过程,研究发现小鼠左冠脉闭塞后,在梗死边缘区miRNA-29表达下调,较正常心肌低2倍左右。利用miRNA-29b寡核苷酸体内沉默miRNA-29后,多种胶原、原纤维蛋白和弹性蛋白表达明显增高,促进心肌纤维化;反之,体外转染miRNA-29b类似物后则明显抑制心肌纤维母细胞中的mRNA水平,从而抑制心肌纤维化。

2.3.2 miRNA-21 Roy等[13]研究发现,同源重失性磷酸张力蛋白基因(phosphatase and tensin homologue,PTEN)是在小鼠缺血/再灌注诱导的心脏重构的心脏成纤维细胞上的miRNA-21的靶基因,通过抑制PTEN的表达,促进Akt磷酸化,上调基质金属蛋白酶-2(MMP-2)的表达,从而促进心肌纤维化,心室重构。

2.4 miRNA与心肌梗死后血运重建

2.4.1 miRNA-126 Wang等[14]研究表明内皮细胞特异性的miRNA-126通过增加血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等血管生长因子信号,抑制 Spred-1表达而促进血管形成。若敲除miRNA-126基因,新生小鼠血管内皮细胞增殖、迁移受限,导致血管内膜不完整、血管形成障碍。van Solingen等[15]的主动脉移植实验进一步验证了miRNA-126对缺血诱导下血管新生的重要调控作用。

2.4.2 miRNA-92 Bonauer等[16]研究发现,在小鼠心肌梗死及后肢缺血的模型中,miRNA-92抑制血管形成的作用明显,若抑制其表达则能增加血管形成,改善左室功能、减少梗死面积、减少凋亡细胞数,促进缺血受损组织的功能恢复。

2.4.3 miRNA-21 Ji等[17]研究了大鼠颈动脉球囊血管成形术后miRNAs的基因表达谱,发现miRNA-21明显上调,在培养的平滑肌细胞中敲除miRNA-21,细胞增殖减少、细胞凋亡增加。表明在平滑肌细胞中miRNA-21具有促增殖和抗凋亡的作用。他们进一步证明在血管成形术后,miRNA-21是通过PTEN、Bcl-2介导细胞增殖和凋亡,从而促进和抑制血管壁新生内膜形成。由此可见,miRNA-21可能会在未来成为抗支架内再狭窄的新靶点。

2.5 miRNA与缺血再灌注

2.5.1 miRNA-1、miRNA-21和 miRNA-24 冠脉闭塞再通后,会引起缺血-再灌注损伤。Yin等[18]证实了在心肌梗死后,miRNA-1、miRNA-21和 miRNA-24表达上调,并有减少梗死灶范围的作用。这种现象可能是通过上调内皮一氧化氮合酶、HSP 70以及热休克基因转录因子1发挥作用[19]。也有研究发现miRNA-21可通过其作用靶点PDCD4发挥抗细胞凋亡作用从而保护心脏免于缺血-再灌注损伤[20]。

2.5.2 miRNA-320 近来在体内外活体研究中发现过表达miRNA-320可增强心肌细胞死亡和凋亡,增加梗死面积,缺血再灌注后其表达降低可以通过调控HSP320的合成保护受损心肌细胞的作用,包括抑制血小板聚集、释放血管活性物质以及加强心肌收缩功能等[21]。

2.5.3 miRNA-499 在缺血再灌注损伤模型中,Wang等[22]发现miRNA-499表达是下调的,calcineurin催化亚基的α、β亚型是miRNA-499的直接靶目标。miRNA-499通过抑制calcineurin介导的Drp1去磷酸化,抑制心肌细胞凋亡。

2.5.4 miRNA-204 Xiao等[23]发现,在缺血再灌注模型中,miRNA-204表达下调,而LC3-Ⅱ表达则明显增高。miRNA-204可能通过调控LC3-Ⅱ蛋白的表达实现对心肌细胞自噬作用的调节,以保护心肌避免缺血再灌注损伤。

2.5.5 miRNA-133 He等[24]研究中发现缺血再灌注导致miRNA-133在心肌细胞中低表达,但经缺血后处理后则表达增加,减少了缺血再灌注损伤所致的左室心肌梗死面积,同时降低了CK和LDH的水平。将miRNA-133类似物或者AMO-133a在缺血再灌注之前转入心肌中,前者使CASP9表达增加,抑制心肌凋亡的发生;后者反之。研究提示CASP9可能是miRNA-133在缺血再灌注调控中的潜在靶点。

3 miRNAs在心肌梗死中的临床应用及展望

3.1 miRNA作为诊断和预后的生物学指标 在AMI时心肌特异性的miRNA出现升高或者降低,因此其可以作为心肌损伤新的标志物。如miRNA-1,-499,-208,-133,-328等。其中最值得注意的是miRNA-208,在众多潜在的心肌损伤标志物中,其仅在心肌中表达,具有高度的特异性,和cTnI相比,能更快地反应AMI的发生,且不受其他非特异性损伤的干扰,也不受肾功能的影响[5],拥有巨大的应用前景。

3.2 miRNAs作为新的治疗靶点 miRNAs作为心肌梗死新的治疗靶点,主要是通过上调或者下调miRNAs的表达,调节相应靶基因和蛋白质的表达,减轻缺血性心肌损害,达到治疗目的。上调miRNA表达,主要通过miRNA模拟技术,采用人工合成的基因特异性miRNA(miRNA mimics,拟 miRNA),模拟体内miRNA的作用方式,对目的基因或信号通路进行封闭抑制,具有较高特异性。如Roy等[13]利用miRNA-21模拟技术有效抑制了PTEN-P13K-Akt-MMP2信号通路的表达,明显减少了缺血再灌注后心肌梗死的梗死面积。而下调miRNA表达,主要通过antagomirs技术。其将antagomirs(与胆固醇偶联的AMOs)注入小鼠体内,可有效而特异地沉默内源性miRNA。如antagomirs技术通过对miRNA-29的干预作用,能明显抑制心肌纤维化。近年来miRNA海绵、miRNA橡皮擦及miRNA面纱等新技术的相继出现,部分研究已证实其能有效地降低心肌梗死后相关miRNA的表达水平,具有良好的临床应用前景[25]。

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