中药对肾小球硬化大鼠MMP-9、TIMP-1及TGF-β1mRNA表达的影响
2011-06-11倪晨王贵均王倩赖小平
倪晨 王贵均 王倩 赖小平
肾小球硬化(glomerulosclerosis,GS)是肾小球疾病发展至终末期,肾功能衰竭的主要病理改变。其中细胞外基质(ECM)降解减少、过度积聚,是GS的重要发病机制[1,2]。在ECM降解调控系统中发挥重要作用的是基质金属蛋白酶MMP和基质金属蛋白酶抑制物TIMP[3](MMPs-TIMPs)系统,随着TIMP-1表达增强,MMP-9降解作用减弱,MMP-9/TIMP-1的比值失调,最终形成肾小球硬化。此外,细胞因子在GS的形成过程中也起着非常关键的作用,其中转化生长因子[4]TGF-β1的调控作用尤为重要。TGF-β1既能促进ECM合成增加,又能抑制ECM的降解,最终导致ECM聚积,形成肾小球硬化。本研究基于肾络癥积理论,采用祛瘀化痰、散结消癥的治疗方法,配伍川芎、鳖甲、海藻[6-8],考察祛瘀化痰、散结消癥中药复方对肾小球硬化大鼠肾功能的作用。
1 材料与方法
1.1 仪器
超净工作台(苏净集团苏州安泰空气技术有限公司),CO2恒温培养箱(美国harris公司),倒置显微镜(日本Nikon公司),酶联免疫检测仪(BIORAD smartspec 3000型),电子精密天平(上海精密科学仪器有限公司),荧光定量PCR仪(ABI 7300)、Effendorf 冷冻离心机。
1.2 试药
川芎、鳖甲、海藻,购自康美药业股份有限公司。经广州中医药大学中药学院中药鉴定教研室鉴定后使用。称取川芎、鳖甲、海藻各20 g,分别置于1000 ml圆底烧瓶中,以10倍量水回流提取两次,每次1.5小时,滤过,洗涤滤渣,合并两次过滤液和洗涤液,浓缩至1.5 g·ml-1、1.0 g·ml-1、0.5 g·ml-1,分别为高、中、低浓度药液,置于4℃备用。
盐酸阿霉素,浙江海正药业股份有限公司,批号:09015,临用前用生理盐水配制为1 mg·ml-1;福辛普利钠片,施贵宝制药有限公司,批号:H20090262,粉碎后用蒸馏水配制成0.33 g·ml-1的溶液。MMP-9酶联免疫吸附法检测试剂盒、TIMP-1酶联免疫吸附法检测试剂盒(美国RB公司)、First Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas公司)。
1.3 动物分组、造模与给药
SD大鼠,60只,雌雄各半,180~220 g,由广州中医药大学实验动物中心提供(粤检证字2009A028)。
随机分为空白对照组、模型组、福辛普利钠组、高、中、低浓度中药组等6组,每组10只。各组动物腹腔注射2%戊巴比妥钠30 mg·kg-1麻醉,摘取左肾[5],空白对照组假手术。
各组动物手术后7天,尾静脉注射阿霉素5 mg·kg-1,20天后再给阿霉素3 mg·kg-1造模,空白对照组注射等体积生理盐水。
各组于第2次注射阿霉素后1天,按1 ml·100g-1·d-1灌胃,空白对照组及模型组给同体积蒸馏水,福辛普利钠组给福辛普利钠,各中药组给相应浓度药液,共给药8周。
1.4 24小时尿蛋白定量检测
各组于第2、4、6、8周结束时收集24小时尿液,溴甲酚氯仿法测定24小时尿蛋白定量。
1.5 MMP-9、TIMP-1检测
各组动物于末次给药1小时后,断头取血,常规方法取血清,另开腹腔取肾脏。
MMP-9的检测:取上述各组血清,按 MMP-9 ELISA试剂盒要求操作,培养板各孔加100 μl Assay Diluent RD1-34,每孔加100 μl标准品、样品,孵育2小时,弃去上清,400 μl Buffer洗液·孔-1,清洗4次,加MMP-9二抗孵育1小时,弃去上清,400 μl Buffer洗液·孔-1,清洗4次。每孔加显色液200 μl,避光室温孵育30 分钟,加终止液终止反应,用酶标仪检测450 nm处的吸光度OD值。
TIMP-1的检测:取上述各组血清,按酶联免疫吸附法(ELISA)试剂盒要求操作,将TIMP-1 McAb分别滴加在培养板孔内,100 μl·孔-1,4℃过夜后弃去上清,用0.05%(V/V)Tween-20PBS(PBST)洗板3次,每次3分钟;拍干后加含15%小牛血清的PBS,200 μl·孔-1,4℃过夜后弃去上清,PBST洗涤3次,每次3分钟。将标准品、样品加于包被孔内,37℃孵育1小时,PBST洗板5次,拍干后加HRP-抗TIMP-1二抗100 μl·孔-1,37℃孵育30分钟,PBST洗板5次,彻底拍干后加入TMB显色剂,50 μl·孔-1,37℃孵育15分钟,加2 mol H2SO4 50 μl·孔-1终止反应,用酶标仪检测450 nm处的吸光度OD值。
1.6 实时荧光定量PCR检测细胞TGF-β1mRNA
1.6.1 总RNA提取
取100 mg肾脏组织,按试剂盒要求操作,加入TRIzol反复吹打裂解细胞,用氯仿、异丙醇、75%乙醇分离、纯化 RNA,最后用DEPC水溶解,紫外分光光度法检测总RNA浓度及纯度,置于-20℃备用。
1.6.2 逆转录反应
反应体系为20 μl,各组分终浓度分别为dNTP 1 mmol·L-1、Oligo(dT)18引物2.5 nmol·L-1、M-MlV逆转录酶10 U·μl-1、总RNA样品0.2 ng~200 ng,DEPC水加至20 μl;逆转录反应参数为70℃孵育30分钟,冰上放置2分钟,37℃孵育5分钟,42℃孵育60分钟,70℃孵育10分钟,所得产物cDNA用于实时荧光定量PCR。
1.6.3 实时荧光定量PCR
所用的目的基因引物及内参照GAPDH引物均委托 invitrogen 公司合成。引物序列:TGF-β1上游引物5’-tacagggctttcgcttcagt-3’,下游引物5’-gttggtatccagg gctctcc-3’,产物长度 209 bp;GAPDH上游引物5’-ctcccattcctccacctttg-3’,下游引物5’-ccaccaccctgttgctgtag-3’,产物长度 110 bp。反应体系为20 μl:2 μl cDNA,1 μl SYBR Green I 荧光染料,1 mmol dNTP,1μmol·L-1上、下游引物,5U·μl-1Taq酶,DEPC水加至20 μl,混匀。PCR反应条件:95℃预变性5分钟,95℃变性45秒,56℃退火45秒,72℃延伸20秒,热循环40次,72℃延伸5分钟。
1.6.4 实时荧光定量PCR数据分析方法
按照2-△△Ct相对定量方法分析,目的基因和参照基因扩增效率都接近100%,具有一致性。△Ct=Ct(目的基因)-Ct(内参基因),△△Ct=△Ct(处理组)-△Ct(空白对照组),取100倍2-△△Ct数值进行比较。
1.7 统计学方法
2 结果
2.1 各组大鼠24小时尿蛋白定量结果
各中药组均能减少肾小球硬化大鼠24小时尿蛋白(P< 0.05),见表1。
2.2 各组大鼠MMP-9、TIMP-1表达的比较
各中药组均能有效上调MMP-9的表达,下调TIMP-1的表达,提高MMP-9/ TIMP-1的比值(P< 0.05),其中中剂量组效果最为显著(P< 0.01),见表2。
2.3 各组大鼠TGF-β1 mRNA表达的比较
各中药组均能抑制肾小球硬化大鼠TGF-β1mRNA的表达(P< 0.01);其中以中剂量组效果最显著,见表3,图1。
表1 各组大鼠24小时尿蛋白定量比较
表2 各组大鼠MMP-9、TIMP-1表达的比较
表3 各组大鼠TGF-β1mRNA表达的比较
图1 各组大鼠TGF-β1mRNA表达的比较
3 讨论
细胞外基质ECM的降解过程中发挥重要作用的是MMPs-TIMPs系统,其中,MMP-9可降解ECM中主要成分,减少ECM沉积,而TIMP-1可抑制MMP-9的降解作用,因此,MMP-9表达降低或TIMP-1表达增高,均可使MMP-9/TIMP-1的比值失调,从而加速肾小球硬化的形成。转化生长因子TGF-β1在肾小球硬化的形成过程中也起着非常关键的作用,TGF-β1既能促进ECM合成增加,同时又抑制ECM的降解,最终导致ECM聚积,形成肾小球硬化。因此,本研究观察各药物组对肾小球硬化大鼠MMP-9、TIMP-1、TGF-β1mRNA的表达及MMP-9/TIMP-1比值的调节,评价各组中药对ECM降解调控系统的影响。
中国古代医籍中没有“肾小球硬化”的表述,但根据其发展过程中的临床表现及发病特点,该病可归属于 “水肿”、“虚劳”、“肾劳”、“癃闭”等病症范畴。该病络气郁滞[9],瘀血痰湿凝滞肾络而致“肾络癥积”,肾脏组织的病理改变,如细胞外基质积聚、血管拌闭塞、球囊粘连、局灶或节段性肾小球硬化等,都可归属于“肾络癥积”的范畴。
本实验采用单侧肾切除加注射阿霉素造模法,建立肾小球硬化大鼠模型,实验表现为蛋白尿和肾功能低下。实验选取福辛普利钠作为肾脏保护的阳性对照组,福辛普利钠属于血管紧张素转换酶抑制剂,通过抑制血管紧张素Ⅱ的生成、阻断肾素—血管紧张素—醛固酮系统作用,及抑制缓激肽降解、增强缓激肽效应;同时可以减少尿蛋白排泄等,拮抗肾小球硬化及肾间质纤维化而延缓肾损害进展。通过川芎、鳖甲、海藻相互配伍,针对肾络之“痰、瘀、癥积”,在祛瘀、化痰的同时,配伍散结消癥之品以增强消癥化积之力,以期“痰瘀同治、癥结并消”。实验结果提示该复方能减少肾小球硬化大鼠24小时尿蛋白(P<0.01),抑制TIMP-1的表达(P< 0.05),上调MMP-9活性(P< 0.05);中剂量组可同时下调TGF-β1mRNA表达(P< 0.01);可能通过对ECM系统的调控,产生对肾小球硬化大鼠肾功能的保护作用。 综上所述,“肾络癥积”理论指导下的祛瘀化痰、散结消癥中药复方,为中医药临床治疗肾小球硬化,提供新的思路,但仍需进一步研究。
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