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饥饿后黄颡鱼部分生理生化指标变化与体重变化的关系

2011-04-10

长江大学学报(自科版) 2011年33期
关键词:胰脏鱼体内脏

(安徽农业大学动物科技学院,安徽 合肥230036)

饥饿胁迫对鱼类的影响是一个重要的研究课题。饥饿可以影响鱼类生长、代谢及酶活性等,严重时甚至导致死亡[1]。黄颡鱼(PelteobagrusfulvidracoRichardson)是我国广泛养殖的名特鱼类,具有良好的经济效益,但目前探讨饥饿对黄颡鱼影响的研究还非常缺乏。孙红梅等[2]探讨了在群体养殖条件下饥饿对黄颗鱼血液指标及免疫机能的影响,但在个体水平上黄颡鱼对饥饿的反应有何特点目前还不清楚。本研究从个体水平探讨饥饿条件下黄颡鱼的体重变化与一些生理生化指标的关系,以期了解黄颡鱼适应饥饿胁迫的生理生态对策。

1 材料与方法

1.1 材料

试验鱼采自安徽淮南黄颡鱼良种场,健康无病,在实验室以消毒水蚯蚓暂养1周后用于试验。

1.2 方法

随机取试验鱼18尾,称量体重后分别放入18个40cm×20cm×30cm的玻璃水箱中,试验期间每周换水1次,以虹吸法取出老水,再注入镇放后的新水。将鱼饥饿6周后称重(精确到0.01g),测定体长(精确到0.01cm),取内脏及肝脏称重,肝脏保存于液氮中,用作生化分析。试验期间自然水温23.4~28.2℃,自然光照。

1.3 肝脏丙二醛(MDA)含量、超氧化物歧化酶(SOD)及三磷酸腺苷酶(ATP)酶活性的测定

3项指标均采用南京建成生物生物工程研究所试剂盒测定。MDA含量使用比色法测定;SOD酶活性用黄嘌呤氧化酶法测定,其定义为每毫克组织蛋白在1ml反应液中SOD抑制率达50%时所对应的SOD量为1个SOD活力单位(U);ATP酶活性定义为每小时每毫克组织蛋白组织中ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的所消耗的量为1个ATP酶活力单位。

1.4 指标计算及数据分析

按下述公式分别计算失重率、内脏指数、肝胰脏指数。

式中,Wt为鱼体终末湿重,g;W0为鱼体初始湿重,g;t为时间,d。

分别以初始体重及失重率为自变量,以测定的生理生化指标为因变量,以散点图及回归分析为依据,选择R2值高而且使用方便的模型为优化模型,供选择的模型有y=a+bx、y=axb、y=a+bln(x)、y=aex和y=a+b/x。用SPSS V13.0软件检验回归关系式的显著性,P<0.05为显著。

2 结果与分析

2.1 初始体重与鱼体部分生理生化指标的关系

由图1及表1可知,黄颡鱼的初始体重与内脏指数、肝胰脏指数、MDA含量及SOD、ATP酶活性之间无显著关系(P>0.05),而与失重率显著负相关(P<0.05)。

图1 黄颡鱼初始体重与失重率、内脏指数、肝胰脏指数、MDA含量以及SOD、ATP酶活性的关系

2.2 失重率与鱼体内脏指数、肝胰脏指数、肝脏MDA含量以及SOD、ATP酶活性的关系

由图2及表2可知,失重率越高,内脏指数及SOD活性越低,MDA含量越高,呈显著相关(P<0.05);失重率与肝胰脏指数及ATP酶活性之间无显著相关性(P>0.05)。

表1 黄颡鱼失重率、内脏指数、肝胰脏指数、MDA含量以及SOD、ATP酶活性与鱼体初始体重的回归关系

图2 黄颡鱼失重率与鱼体内脏指数、肝胰脏指数、MDA含量以及SOD、ATP酶活性的关系

表2 黄颡鱼失重率与鱼体内脏指数、肝胰脏指数、MDA含量以及SOD、ATP酶活性的回归关系

3 讨论

鱼类在摄食条件下,初始体重越小,生长率越高。本研究中,黄颡鱼的初始体重越小,失重率越高,与正向生长的趋势相同。

初始体重与内脏指数无显著相关性,而失重率越高,内脏指数越小,这可能是由于鱼体内脏本身减轻导致,也可能是失重率高的个体内脏脂肪消耗较多,或者是这2种原因共同导致。

MDA是自由基引发的脂质过氧化物,可造成组织损伤[3-4]。中华鲟饥饿4周后,其血清中MDA含量没有显著下降[5],韦新兰等[6]的研究结果表明,饥饿后斑点叉尾鮰MDA含量与与失重率无显著相关性,本研究结果显示,饥饿时黄颡鱼失重越快,肝脏MDA含量越高,鱼体免疫受到的损害越严重。这些研究结果的不同,可能与鱼的种类不同有关。

SOD是生物体内一种重要的抗氧化酶,能够清除超氧阴离子自由基,保护机体免受损害[7-8]。异育银鲫饥饿8d后血清中SOD活性显著降低[9],中华鲟在饥饿4周的时间内血清中SOD活性先上升后下降,黄颡鱼在饥饿0~18d内,血清中SOD活性没有显著变化,饥饿时间延长到24d,其血清中SOD活性显著下降[2]。这些研究表明,SOD活性受到饥饿时间的影响。本研究结果则显示,饥饿时失重速度越快,肝脏中SOD活性越低,鱼体免疫受到的损害越严重。

ATP酶能将ATP催化水解为二磷酸腺苷(ADP)和磷酸根离子,这是释放能量的反应[10]。本研究结果显示,失重率与ATP酶活无显著相关性,而斑点叉尾鮰的失重率越高,ATP酶活性越大[6]。其结果不同,可能与鱼的种类不同有关。

[1]谢小军,邓 利,张 波.饥饿对鱼类生理生态学影响的研究进展 [J].水生生物学报,1998,22(2):181-188.

[2]孙红梅,黄 权,丛 波.饥饿对黄颡鱼血液中几种免疫相关因子的影响 [J].大连水产学院学报,2006,21(4):307-310.

[3]Geige P G,Lin F,Girotti A W.Selenoperoxidase medisted cyto Protection against the damaging effects of tert-butlhydoperoxide in leukae cells [J].Free Radic Biol MED,1993,14:251-266.

[4]孔祥会,王桂忠.低温驯化对锯缘青蟹鳃的抗氧化防护、ATPase及膜脂肪酸组成变化 [J].水生生物学报,2007,31(1):67-70.

[5]刘松岩.环境胁迫对中华鲟体内自由基水平和抗氧化酶活力的影响 [D].武汉:华中农业大学,2006:13-14.

[6]韦新兰,姚 峰,黄国林,等.饥饿后斑点叉尾鮰部分生理生化指标变化与体重变化的关系 [J].长江大学学报(自然科学版),2011,8(5):241-243.

[7]Sugiura S H,Dong F M,Hardy R W.Effects of dietary supplements on the availability of minerals in fish meal;preliminary observations[J].Aquaculture,1998,160:283-303.

[8]王 雷,李光友,毛远兴.口服免疫药物对养殖中国对虾病害防治作用的研究 [J].海洋与湖沼,1994,25(5):486-488.

[9]董学兴,吕林兰,黄金田,等.饥饿后再投喂对异育银鲫血液生理和非特异性免疫指标的影响 [J].中国农学通报,2011,27(23):76-79.

[10]杨秀萍.动物生理学 [M].北京:高等教育出版社,2002:206-207.

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