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miR-335 调控Survivin和NF-κB表达对B细胞淋巴瘤细胞侵袭、迁移和凋亡的影响①

2022-08-30邢丽娜郭晓楠河北医科大学第二医院血液内科石家庄050051

中国免疫学杂志 2022年13期
关键词:迁移率淋巴瘤试剂盒

邢丽娜 田 甜 王 颖 郭晓楠 (河北医科大学第二医院血液内科,石家庄 050051)

B 细胞淋巴瘤是来源于成熟B 细胞的恶性增生性疾病,其发病率居恶性肿瘤第五位[1]。临床上对B 细胞淋巴瘤的诊断治疗主要以化疗和放疗为主,但其具有易发生转移和复发的特点,导致病死率居高不下[2]。Survivin 蛋白是凋亡抑制蛋白,是目前发现最强的凋亡抑制基因。研究表明,淋巴瘤的转移和复发与Survivin 蛋白的表达密切相关,Survivin 蛋白主要通过抑制Caspase-3 和Caspase-7 活性从而抑制细胞凋亡,在肿瘤细胞的转移中发挥重要作用[3-4]。NF-κB 是一种参与肿瘤细胞增殖和凋亡的重要核转录因子,其活性被抑制会引起肿瘤细胞凋亡。miRNA 通过调控肿瘤相关基因,与其靶基因mRNA特定位点碱基互补配对,形成转录复合物,抑制相关蛋白表达,发挥抑癌作用。研究发现:miR-335 在多种肿瘤细胞的增殖、侵袭和转移过程中发挥作用,如前列腺癌细胞、膀胱癌细胞和肝癌细胞[5-7]。目前国内外尚无针对miR-335在B 细胞淋巴瘤细胞中表达情况及作用机制的相关研究报道。本研究通过探讨miR-335 在B 细胞淋巴瘤细胞中过表达对B 细胞淋巴瘤细胞Survivin 蛋白的表达水平及侵袭、迁移和凋亡能力的影响,分析其可能机制。

1 材料与方法

1.1 材料 B 细胞淋巴瘤细胞株SU-DHL-4 购自中国科学院上海细胞库,置于37 ℃、CO2体积分数为5%的培养箱,用含10%胎牛血清的RPMI1640 培养基传代培养;RPMI1640 培养基、胎牛血清购自杭州四季青公司;RNA 提取试剂、TRIzol 试剂购自 Invit‑rogen公司;所有引物均由上海生工生物工程技术服务有限公司合成;逆转录试剂盒、PCR 扩增试剂盒购自美国Invitrogen 公司;BCA 蛋白浓度测定试剂、鼠抗人Survivin 单克隆抗体和HRP 标记的山羊抗兔IgG 购自美国Abeam 公司;鼠抗人 NF-κB p65单克隆抗体购自美国Santa Cruz 公司;Transwell 检测小室购自上海生博生物医药科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 细胞转染与分组 取对数生长期SU-DHL-4细胞,以0.25%胰酶消化,接种于96孔板,待细胞生长至80%融合时,置于无血清培养基12 h 后转染。转染分为对照组(不做任何处理)、空转染组(转染空载体)、过表达组(转染miR-335),转染均严格按照试剂盒说明书操作。

1.2.2 RT-PCR 检测miR-335 表达水平 采用RTPCR 检测miR-335 表达水平,取上述3 组细胞转染48 h,采用TRIzol法提取总RNA,逆转录试剂盒反转录为cDNA。参照GenBank 中的基因序列,利用Primer premier 6.0 软件设计目的基因miR-335 的RT-PCR 引物,以 cDNA 为模板,应用 PCR 扩增仪进行扩增,操作严格按照PCR 试剂盒说明书进行。miR-335 正向引物:5'-CGTCCTCGTCAAGAGCAATAAC-3';反向引物:5'-TATGCTTGTTCTCGTCTCT‑GTGTC-3';内参 β-actin 正向引物:5'-CACGATG‑GAGGGGCCGGACTCATC-3';反向引物:5'-TAAAGACCTCTATGCCAACACAGT-3'。 反 应 条 件 :25 ℃30 min,42 ℃ 30 min,85 ℃ 5 min。采用 2−ΔΔCt法计算miR-335的相对表达量。

1.2.3 Western blot 检测 Survivin 和 NF-κB 蛋白表达 取上述3 组细胞转染48 h,加入适量细胞裂解液提取总蛋白,BCA 试剂盒检测提取蛋白的浓度,采用10%SDS-PAGE 分离,半干法PVDF 转染,5%脱脂奶粉封闭,加入Survivin 一抗(1∶500)、NF-κB 一抗(1∶1 000)和β-actin 抗体(1∶1 000),4 ℃过夜,洗膜后加入HRP 标记的羊抗鼠IgG(1∶5 000),室温孵育1 h,洗膜后采用增强化学发光法(ECL)显色,以β-actin 为内参,目的蛋白条带灰度值与内参条带灰度值的比值反映各蛋白表达,公式如下:蛋白表达水平=目的蛋白条带灰度值/内参条带灰度值。

1.2.4 划痕实验检测各组细胞的迁移能力 取上述3组细胞转染48 h,悬液以3×104个/孔分别接种至96 孔板(100 µl),每组设 5 个复孔,37 ℃培养24 h,至细胞达到90%以上融合度,使用划痕仪对准96 孔板的下端中央部位,向上轻推形成划痕。使用RPMI1640 培养基轻轻漂洗,于37 ℃、5%CO2培养箱中培养,0 h、24 h 时在荧光显微镜下观察拍照,计算各组细胞迁移率。

1.2.5 Transwell 检测细胞侵袭能力 Transwell 小室内膜加入Matrigel 胶并置于24 孔板,待胶凝固后实验。取3 组转染48 h 的细胞,并调整细胞浓度为1×105个/ml,以 200 µl/孔将细胞悬液加入 Transwell小室,加入含10%小牛血清的RPMI1640 培养基800 µl,37 ℃培养24 h,取出小室,用棉签擦拭内膜上的细胞,预冷甲醇固定30 min,弃甲醇,1%结晶紫染色20 min,倒置显微镜下随机观察5 个视野,并计穿膜细胞数,实验重复6次取平均值。

1.2.6 流式细胞仪检测细胞凋亡 取上述3 组细胞转染48 h,加入预冷PBS洗涤细胞,采用胰蛋白酶消化细胞,调整细胞浓度为1×106个/ml,离心收集细胞,经Annexin V-FITC/PI 染色后,置于流式细胞仪检测各组细胞凋亡率。实验步骤严格按照细胞凋亡试剂盒的操作。

1.3 统计学分析 采用SPSS20.0 统计学软件,所有数据符合正态分布,以表示,多组比较采用单因素方差分析(ANOVA),两组间比较采用独立t检验,以P<0.05表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组B 细胞淋巴瘤细胞miR-335 表达水平比较 与对照组相比,空转染组miR-335 表达水平差异无统计学意义(P>0.05),过表达组miR-335 表达水平明显升高(P<0.05);与空转染组相比,过表达组miR-335表达水平明显升高(P<0.05),见图1。

图1 各组B细胞淋巴瘤细胞miR-335表达水平比较Fig.1 Comparison of expression level of miR-335 in B cell lymphoma cells in each group

2.2 miR-335 过表达对 Survivin 和 NF-κB 蛋白表达的影响 与对照组相比,空转染组Survivin和NF-κB蛋白表达水平差异无统计学意义(P>0.05),过表达组 Survivin 和 NF-κB 蛋白表达水平明显降低(P<0.05);与空转染组相比,过表达组Survivin和NF-κB蛋白表达水平明显降低(P<0.05),见图2。

图2 各组B 细胞淋巴瘤细胞Survivin 和NF-κB 蛋白表达水平比较Fig.2 Comparison of expression levels of Survivin and NF-κB protein in B cell lymphoma cells in each group

2.3 miR-335 过表达对细胞迁移和侵袭能力的影响 与对照组相比,空转染组细胞迁移率、侵袭细胞数差异无统计学意义(P>0.05),过表达组细胞迁移率和侵袭细胞数明显降低(P<0.05);与空转染组相比,过表达组细胞迁移率和侵袭细胞数明显降低(P<0.05),见图3、4。

图3 各组B细胞淋巴瘤细胞迁移率比较Fig.3 Comparison of cell mobility of B cell lymphoma cells in each group

图4 各组B细胞淋巴瘤侵袭细胞数比较Fig.4 Comparison of invasion numbers of B cell lymphoma cells in each group

2.4 miR-335 过表达对细胞凋亡的影响 与对照组相比,空转染组细胞凋亡率差异无统计学意义(P>0.05),过表达组细胞凋亡率明显升高(P<0.05);与空转染组相比,过表达组细胞凋亡率明显升高(P<0.05),见图5。

图5 各组B细胞淋巴瘤细胞凋亡率比较Fig.5 Comparison of apoptosis rate of B cell lymphoma cells in each group

3 讨论

B 细胞淋巴瘤是目前常见的成人淋巴瘤,大多数患者在接受治疗后效果较好,但仍有1/3 患者出现治疗无效和复发的情况。近年来,生物靶向治疗成为肿瘤治疗的新思路,尤其是利用基因靶向治疗[8]。miRNA 作为重要的生物体基因调控分子,其在肿瘤治疗中的应用已成为生物领域研究的热点。miRNA是一种由19~25个核苷酸组成的非编码单链RNA,于细胞核中生成,具有高度保守性,成熟的miRNA 结合到与其互补的靶基因mRNA 位点继而调控其靶基因表达,参与细胞的增殖、凋亡等生命过程[9]。如 miR-193b-5p 可通过靶向 CD44v6 在乳腺癌中发挥抑癌功能[10];miR-145 通过靶向 HCT116 抑制结肠癌细胞的增殖、侵袭、凋亡[11]。研究表明,miRNA 可通过抑制其靶基因Survivin 影响癌细胞的多种生物学行为,是膀胱癌潜在的治疗靶点[12-13]。

Survivin 基因是1997 年发现的抑制基因,基因构成包含3个内含子和4个外显子,是目前发现最强的凋亡抑制基因。Survivin 基因的表达产物Survivin蛋白是凋亡抑制蛋白家族的最小成员,在绝大多数正常组织中不表达。研究表明,在恶性肿瘤组织中,Survivin 蛋白呈高表达水平,如直肠癌、乳腺癌、小细胞肺癌等[14-16]。Survivin 参与了肿瘤细胞的恶变和抗凋亡的生理过程,具有抑制细胞凋亡和调控有丝分裂两个主要生理学功能,当Survivin 位于线粒体内时,机体表现为抑制细胞迁移,当其位于胞浆内时,表现为调节间期微管的稳定性,进而参与调节细胞周期[17-18]。Survivin 在恶性肿瘤组织中处于失衡状态,是抗肿瘤治疗的一个重要突破点[19-20]。NF-κB 是调控细胞凋亡的细胞因子,抑制 NF-κB 表达可促进肿瘤细胞凋亡。此外,NF-κB 参与Survivin转录过程:Survivin 可上调IKKp 启动子的转录活性,提高IKKp在体内的表达水平,促进NF-κB活化,两者有着密切联系[21]。本研究显示:B 细胞淋巴瘤细胞过表达 miR-335 后,Survivin 和 NF-κB 蛋白表达水平降低,细胞凋亡率增加,说明过表达miR-335可通过下调Survivin 蛋白表达,抑制NF-κB 蛋白表达诱导细胞凋亡。此外,细胞迁移率和侵袭细胞数明显降低,提示miR-335 对抑制B 细胞淋巴瘤细胞迁移和侵袭具有一定作用。

综上所述,上调B 细胞淋巴瘤细胞miR-335 表达可通过下调Survivin 表达,抑制NF-κB 蛋白表达,诱导细胞凋亡,并抑制细胞迁移和侵袭能力,能够为B细胞淋巴瘤的生物靶向治疗提供理论依据。

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