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慢性盆腔炎模型大鼠中miR-224-3P及TGF-β/Smads信号通路相关分子的表达水平与子宫组织炎症相关性*

2022-06-13杨丽红王娟娟丁向辉吉玉洁

解剖学杂志 2022年2期
关键词:盆腔炎引物通路

杨丽红 王娟娟 丁向辉 吉玉洁

(中国人民解放军陆军第八十一集团军医院,张家口 075000)

慢性盆腔炎是女性内生殖器及其周围结缔组织、盆腔腹膜的慢性炎症,常为急性盆腔炎未彻底治疗,或急性盆腔炎的病程迁延及反复发作。 转化生长因子-β(transforming growth factor,TGF-β)和Smad蛋白(drosophila mothers against decapentaplegic protein,Smad) 参与了盆腔炎的发生发展,是盆腔炎调控的重要分子[1]。miRNAs在真核生物中表达具有组织特异性和时序性,决定组织和细胞的功能特异性,在细胞生长和机体发育调节过程中起多种作用,研究表明miR-224与组织炎症具有显著的调控关系,并可通过TGF-β/Smad信号通路调控动脉粥样硬化斑块和血管重塑,但miR-224在盆腔炎中的作用及机制尚不清晰[2]。因此本研究将通过机械损伤及接种混合菌构建大鼠慢性盆腔炎模型,探究miR-224-3P及TGF-β/Smads信号通路在慢性盆腔炎模型大鼠模型表达及相关性。

1 材料和方法

1.1 动物

8~10周龄雌性SPF级SD大鼠,由北京维通利华实验动物中心提供。

1.2 药品、试剂

水合氯醛购自天津市申泰化学试剂有限公司;混合菌液购自无锡赛维科技公司;Rat TNF-α ELISA Kit(RAB0479),购于美国Sigma公司,Rat NF-κB ELISA Kit(201803)购于惠佳生物科技有限公司;逆转录试剂盒(6110A)购于日本TaKaRa公司;荧光定量PCR试剂盒(RT0411-01)购于美国Biomiga公司;引物由上海生工合成;TGF-β(ab205150)、Smad3 (ab40854),Smad3(ab40854)和二抗(ab150113)抗体购于美国Abcam公司。

1.3 大鼠分组及饲养条件

40只8~10周龄雌性SD大鼠于SPF级鼠房饲养,室温调节在25℃±2℃,相对湿度40%~65%,12 h/12 h昼夜交替照明,自由摄取食物和饮用水。适应性饲养1周后,随机分为2组,每组20只。

1.4 大鼠慢性盆腔炎模型的建立

大鼠称重后按0.4 mL/100 g 10%水合氯醛行腹腔注射麻醉。菌液配置:金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、乙型溶血型链球菌,按照1∶2∶1混合,用0.9%的NaCl配置终浓度为2×109/mL菌液混合液。用水合氯醛麻醉大鼠后,将大鼠固定,无菌条件下腹部中央切1 cm切口,固定并暴露大鼠双侧子宫,机械损伤子宫内膜组织,并分别向双侧子宫腔注入0.1 mL混合菌液,建立慢性盆腔炎模型[3]。

1.5 采血方式及ELISA检测

大鼠采用毛细管眼眶采血,每只大鼠取1 mL。用大鼠肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor,TNF-α)、 核因子κB(nuclear factor κB,NFκB) ELISA检测试剂盒,检测血清样本中TNF-α、NF-κB含量水平,每组设置3个复孔,操作步骤严格按照说明书进行[4]。

1.6 qPCR检测

大鼠眼眶取血后取子宫组织,用TRIzol法提取总mRNA,并立刻反转录,所有操作在冰上进行并避免RNA酶污染,反转录后进行qPCR分析,相对表达量采用2-△△CT计算[5]。miR-29c-3p引物,F:GCTGGTTTCATATGGTGG,R:GAACATG TCTGCGTATCTC。TGF-β引物,F:AGCAACAAT TCCTGGCGTTACCT,R:CCTGTATTCCGTCTCC TTGGTTCA。Smad3引物,F:GAAGTCCTCGGA ACTGCCTACCT,R:ACTGTGCCATAGTCACC TGGAAGA。β-actin引物,F:GAGACCTTCAACA CCCCAGCC,R:AATGTCACGCACGAT TTCCC。

1.7 免疫印迹检测

采用RIPA蛋白裂解液提取大鼠子宫组织细胞总蛋白,进行SDS-PAGE 电泳80 v 15 min,120 v 2 h,PVDF膜转膜120 v 2.5 h,TBST 漂洗3次,使用5%脱脂奶粉封闭,TBST漂洗3次每次10 min,加入一抗、二抗孵育后,TBST漂洗3次,每次10 min,ECL 显色,发光仪曝光、拍照[6]。

1.8 统计学处理

采用 SPSS 22.0软件进行统计学分析,实验独立重复3次,计量资料以±s表示,t检验,相关性采用双因素方差分析,P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 慢性盆腔炎大鼠模型构建及其子宫炎症水平的组织学评价

对照组大鼠宫腔正常,宫壁组织结构清晰,上皮细胞整齐排列,各层无充血血管,炎症细胞无浸润。实验组宫壁组织结构不清晰,各层分界不明显,上皮细胞变性,可见炎性细胞浸润;子宫平滑肌纤维组织增生、粘连,间质充血、水肿,出现典型的慢性盆腔炎表征(图1)。

图1 大鼠子宫(A1、B1)及H-E染色(A2、B2)

2.2 慢性盆腔炎大鼠外周血炎症因子的表达水平变化

ELISA结果显示盆腔炎组大鼠外周血TNF-α与NF-κB水平显著高于对照组,差异具有统计学意义(P<0.05,P<0.01)(表1)。

表1 慢性盆腔炎对大鼠血浆炎症因子的影响(±s,pg/mL)

表1 慢性盆腔炎对大鼠血浆炎症因子的影响(±s,pg/mL)

*P<0.05,**P<0.01 vs 对照组

组别 TNF-α NF-κB对照组 107.08±11.48 87.54±9.43实验组 113.06±8.65* 103.62±3.91**

2.3 慢性盆腔炎大鼠子宫组织中miR-224-3P,TGF-β和Smad3的mRNA表达水平

与对照组相比,实验组大鼠miR-224-3P表达水平显著下降,TGF-β和Smad3 mRNA表达水平显著上 升(P<0.05),miR-224-3P与TGF-β mRNA呈 显著正相关(r=0.867,P<0.01),miR-224-3P与Smad3 mRNA呈显著正相关(r=0.826,P<0.01)(表2)。

表2 慢性盆腔炎大鼠子宫组织miR-224-3P、TGF-β和Smad3 mRNA的表达(±s)

表2 慢性盆腔炎大鼠子宫组织miR-224-3P、TGF-β和Smad3 mRNA的表达(±s)

*P<0.05,**P<0.01 vs对照组

组别 miR-224-3P TGF-β mRNA Smad3 mRNA对照组 2.05±0.62 1.34±0.30 0.98±0.06实验组 2.89±0.36* 2.04±0.51** 2.03±0.69**

2.4 慢性盆腔炎大鼠子宫组织TGF-β、Smad3及p-Smad3的蛋白表达水平

与对照组相比,实验组大鼠子宫组织TGF-β、Smad3和p-Smad3的蛋白表达水平显著上升,相对定量结果进一步证实这种趋势,差异具有统计学意义(P<0.01)(图2)。

图2 大鼠子宫组织TGF-β、Smad3及p-Smad3的蛋白表达水平比较

3 讨论

盆腔炎性是女性上生殖道的一组感染性疾病,其中包括子宫内膜炎、输卵管炎、输卵管卵巢脓肿、盆腔腹膜炎[7]。盆腔炎症时可表现为局部一个部位,也可表现为同时累及几个部位,以输卵管炎、卵巢炎最为常见。盆腔炎性疾病在初潮前、无性生活和绝经后妇女很少发生,即使发生也常常是邻近器官炎症的扩散,而在性活跃期、有月经的妇女中盆腔炎性疾病高发,盆腔炎性疾病若未能得到及时、彻底治疗,可导致输卵管妊娠、慢性盆腔痛、炎性反复发作,甚至不孕,严重影响妇女的生殖健康[8-10]。本研究通过机械损伤及接种混合菌构建大鼠慢性盆腔炎模型,分离大鼠附件组织,发现盆腔炎大鼠子宫组织明显慢性炎症表征,子宫组织出现出血、黏连等恶性病变,腺体明显减少,子宫平滑肌纤维组织增生、粘连,上皮细胞变性、脱落、坏死,宫内膜缺失,可见炎性细胞浸润。

非编码RNA(non-coding RNA)是指不编码蛋白质的RNA。其中包括rRNA、tRNA、snRNA,snoRNA 和microRNA 等多种已知功能的RNA,以及未知功能的RNA[11]。这些RNA的共同特点是都能从基因组上转录而来,但并不转录翻译成蛋白质,在RNA调控水平上就能行使各自的生物学功能。microRNAs (miRNAs)是小型、高度保守的RNA分子,通过与它们的碱基配对调节其同源mRNA的表达,已成为发育、细胞增殖、分化和细胞周期的重要调控分子[12]。本研究结果显示盆腔炎大鼠中miR-224-3P显著下调,并且与TGF-β/Smads信号通路呈现显著的正相关,提示miR-224-3P、TGF-β/Smads信号通路在慢性盆腔炎发病中发挥重要作用。

TGF-β主要在炎症、组织修复和胚胎发育等方面发挥作用,但对细胞的生长、分化和免疫功能也都有重要的调节作用[13]。Smads家族蛋白可以在将TGF-β信号从细胞表面受体传导至细胞核的过程中起到关键性作用,且不同的Smad介导不同的TGF-β家族成员的信号转导。TGF-β作为配体形成的受体复合物,激活Smads进入核内,共同激活或抑制它们调节的靶基因的转录[16]。本研究结果表明,在大鼠慢性盆腔炎过程中,TGF-β、Smad3在转录和蛋白水平均出现了高表达的变化,同时p-Smad3表达也随之上升,提示miR-224-3P在慢性盆腔炎中发挥作用可能与TGF-β、Smad3通路的磷酸化相关。

综上,本研究表明慢性盆腔炎模型大鼠子宫组织中miR-224-3P表达与TGF-β、Smad3呈显著正相关,其机制可能与TGF-β/Smad3信号通路的磷酸化相关。

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